17 июня 2025 г.
Здесь мы представляем протокол забора и обработки биопсии конъюнктивы для выявления пемфигоида слизистой оболочки.
Мы пытаемся увеличить использование биопсии конъюнктивы для диагностики пемфигоида слизистой оболочки, который является хроническим рубцовым конъюнктивитом, и при отсутствии лечения может привести к слепоте. Прямое иммунофлюоресцентное окрашивание биопсии конъюнктивы для отложения иммунного комплекса в мембране пациента является диагностическим методом ММП, но не проводится во многих центрах по всему миру. В данной методике описаны приемы забора биопсии конъюнктивы и использование оптимальной температуры среза среды, заполненной картриджами для переноса проб и подготовки крови, что сокращает трудоемкость работы с образцом.
Для начала запланируйте биопсию обоих глаз пациента с подозрением на пемфигоид под местной или местной анестезией с использованием операционного микроскопа. Получите информированное согласие пациента и четко объясните возможные побочные эффекты, включая кровотечение, рубцевание и потенциальную необходимость начала приема местных стероидов после операции. Перед взятием биопсии подготовьте картриджи, очистив их обычным физиологическим раствором и заполнив оптимальной температурой разреза, или средой ОКТ отдельно для каждого глаза.
Теперь поместите зеркало в выбранный глаз, правый или левый. После местного применения пропаракаина, если пациент все еще испытывает боль, введите 0,2 миллилитра 2%-ного лидокаина субконъюнктивально с помощью 1 миллилитра туберкулинового шприца. После поднятия конъюнктивы со склеры с помощью щипцов конечностей выполните линейное иссечение размером примерно 4-5 миллиметров в длину и 2-3 миллиметра в ширину с помощью ножниц Уэсткотта.
Немедленно перенесите всю биопсию в среду с оптимальной температурой резки. Заморозьте внедренные образцы с помощью жидкого азота или сухого льда. Затем храните их при температуре 80 градусов Цельсия в течение ночи.
Разрежьте замороженную ткань на ломтики толщиной 4-6 микрометров с помощью криостата, поддерживаемого при температуре от 20 до 25 градусов Цельсия. Установите срезы на положительно заряженные предметные стекла микроскопа с полилизиновым покрытием, чтобы обеспечить адгезию. Затем заверните горки в алюминиевую фольгу перед хранением при температуре 80 градусов Цельсия до окрашивания.
Разморозьте горки при комнатной температуре в течение 10 минут. Затем зафиксируйте ткань в 100% холодном ацетоне еще на 10 минут, чтобы сохранить антигены и свести к минимуму повреждение тканей. Теперь промойте предметные стекла с помощью OBS три раза, каждый в течение пяти минут, чтобы удалить остаточную среду ОКТ и ацетон.
Нанесите на предметные стекла разведенные конъюгированные антитела, анти-IgG, анти-IgA, анти-IgM и анти-IgC3. Не применяйте антитела для предметного стекла отрицательного контроля. Теперь выдержите предметные стекла во влажной камере при температуре 37 градусов Цельсия в течение 45-60 минут.
Затем промойте предметные стекла PBS три раза по пять минут каждый, чтобы удалить несвязанные антитела. Противоморочное покрытие монтажной средой, содержащей DAPI для ядерной визуализации. Наконец, наденьте на каждую горку защитную пластину и дайте им застыть в течение 20 минут.
Изучите предметные стекла с помощью флуоресцентного микроскопа, оснащенного соответствующими фильтрами, в том числе зеленым фильтром возбуждения на 488 нанометрах для обнаружения флуорофора. Базальная мембрана была подтверждена при биопсии конъюнктивы с использованием окрашивания PAS, проявляясь в виде непрерывной ярко-розовой полосы у основания эпителия. Прямая иммунофлуоресцентная положительность визуализировалась в виде ярко-зеленой флуоресценции вдоль базальной мембраны.
Прямые иммунофлуоресцентные положительные биопсии показали флуоресценцию иммуноглобулинов IgM, IgA и IgG, в то время как отрицательные биопсии отсутствовали флуоресцентно. Положительный контроль показал сильную зеленую флуоресценцию на базальной мембране.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье представлен протокол забора и обработки биоптата конъюнктивы для диагностики слизисто-пемфигоидного заболевания (СПЗ) — серьезного состояния, которое при отсутствии лечения может привести к слепоте.
Прямая иммунофлуоресценция (ПИФ) биоптата конъюнктивы является определяющим диагностическим инструментом при слизисто-пемфигоидном заболевании (СПЗ) — патологии с высокой степенью неудовлетворенной медицинской потребности из-за риска необратимой слепоты. Стандартизированные протоколы биопсии и ПИФ обеспечивают надежное обнаружение иммунных комплексов, что способствует раннему вмешательству и снижает диагностическую неопределенность в офтальмологических и иммунопатологических исследованиях. Внедрение этих методов повышает прогностическую уверенность в критической точке диагностики, что позволяет определять дальнейшие терапевтические стратегии и приоритизировать портфель лечебных мероприятий.
Данный протокол проведения биопсии и DIF (прямой иммунофлуоресценции) объединяет диагностический и исследовательский этапы, обеспечивая информационную поддержку как клинических, так и доклинических исследовательских циклов.