11 июля 2025 г.
Представленный здесь протокол призван помочь пользователям в компьютерной обработке последовательностей генов субъединицы I цитохром-с-оксидазы (COI), полученных от жуков, таким образом, чтобы гипотеза кластеризации видов, называемая молекулярными операционными таксономическими единицами (MOTU), могла быть сгенерирована из ДНК.
Стремясь ускорить обнаружение видов в МЕГА разнообразных тропиках, этот протокол направлен на создание гипотезы кластеризации видов у водных и прибрежных жуков с использованием набора компьютерного анализа.
Этот конвейер смесей, в котором использовалась последовательность ДНК COI, привел к большему количеству доказательств разграничения видов для плотного жука из рода Anisostena, который ранее был построен только с использованием морфологических данных.
Этот протокол направлен на устранение таксономического препятствия, заключающегося в том, что открытие видов с помощью таксономии, основанной на морфологии, которая считается золотым стандартом в систематике насекомых, часто отнимает много времени и сбивает с толку малоизученных, но МЕГА разнообразных и очень неприметных водных жуков.
[Эммануэль] Этот конвейер генерирует молекулярные акцессорные гипотезы, называемые MOTU, независимо от того, соответствует ли последовательность известным видам в соответствии с указанными последовательностями, или же они не открыты или не описаны.
Таким образом, вместо того, чтобы препарировать и сравнивать сотни гениталийных структур жуков одновременно, конвейер обеспечивает предварительную кластеризацию, по которой образцы могут быть тщательно изучены на предмет конспецифичности.
[Рассказчик] Для начала запустите MEGA X и загрузите последовательности ДНК для выравнивания. Откройте интерфейс трассы, выбрав линию, затем нажмите «Редактировать» или «Построить трассу» и выберите «Создать новую трассу». Нажмите OK, чтобы подтвердить выбор, и выберите DNA в качестве типа данных. Наведите указатель мыши на вкладку редактирования. Нажмите на кнопку "Вставить последовательность" из файла. Перейдите в соответствующий каталог и выберите файлы последовательности для загрузки в MEGA. Теперь нажмите на выравнивание, затем выберите align by ClustalW, чтобы выровнять последовательности с использованием настроек по умолчанию, и нажмите OK, чтобы продолжить. Для ручного редактирования последовательностей удалите все вставки, щелкнув по вставленным основаниям или позициям и нажав клавишу Delete на клавиатуре. Затем исправьте удаления, нажав на черешок, представляющий отсутствующую базу, удалив ее и введя предполагаемую базу. Затем найдите самую раннюю позицию, где все последовательности содержат символ. Нажмите на пустое поле в заголовке строки сразу слева от этой позиции и перетащите, чтобы выбрать все лишние начальные позиции. Нажмите Delete, чтобы обрезать их. Затем найдите последнее выровненное положение и нажмите на поле справа от этой точки. Нажмите Delete еще раз, чтобы обрезать конец. Теперь выберите все последовательности и перейдите на вкладку «Транслируемые белковые последовательности». При появлении запроса проверьте генетический код как митохондриальный беспозвоночный. Если генетический код отличается, нажмите «нет», и появится меню, позволяющее поставить галочку в поле для митохондриального генетического кода беспозвоночных. Если стоп-кодоны, отмеченные звездочкой в выравнивании, появляются по всему столбцу, нажмите на последовательности ДНК и удалите первую позицию для всех последовательностей. Снова нажмите на последовательности ДНК, затем сохраните выравнивание в формате .mos или .mosx. Чтобы начать разграничение с помощью модуля TaxonDNA, откройте программное обеспечение TaxonDNA. Нажмите на импорт, затем выберите FASTA и загрузите файл выравнивания в формате FASTA. Теперь нажмите на модули, затем выберите кластер. Установите пороговое значение на 3% и установите флажок с надписью «Генерировать индивидуальную информацию по каждому кластеру». Нажмите на кнопку «Создать кластеры» сейчас, чтобы начать кластеризацию и сохранить результаты, сделав скриншот. Для разграничения с помощью метода Kimura 2-Parameter откройте MEGA и нажмите на файл, затем выберите открыть файл или сессию. Нажмите на расстояние. Выберите Вычислить попарные расстояния и подтвердите файл .meg для разграничения. Наведите курсор на поле рядом с моделью или методом и нажмите стрелку, чтобы развернуть раскрывающееся меню. Выберите модель Kimura 2-Parameter и нажмите OK, чтобы запустить программу. Откройте окно вывода данных для просмотра результатов. Нажмите на файл, затем выберите экспорт и печать расстояний, чтобы сохранить результат. Откройте собранный вид с помощью автоматического разбиения на разделы или как можно скорее на веб-сервере. Нажмите на оранжевое поле с надписью «Выберите файл» и загрузите файл .fasta. Прокрутите вниз и нажмите «Перейти». Чтобы скачать результат кластеризации, нажмите на список строки с самым низким баллом ASAP и самым высоким рангом P-значения. Далее, чтобы начать оценку дерева, откройте MEGA и нажмите на данные. Затем выберите «Открыть файл или сеанс», чтобы загрузить файл .meg. Нажмите на модели, затем выберите «Найти лучшие модели ДНК и белков» или ML, чтобы определить наиболее подходящую модель замещения. Нажмите кнопку «ОК» в меню настроек анализа. Теперь, чтобы создать дерево, нажмите на филогенез, затем выберите «Построить и протестировать дерево максимального правдоподобия». Используйте наиболее подходящую модель замещения, нажав на поле рядом с моделью или методом и выбрав подходящую модель из выпадающего меню. В разделе Тест на филогенез нажмите на поле рядом с тестом филогенеза, затем выберите метод bootstrap из выпадающего меню. Нажмите на поле рядом с числом бутстреп-репликаций. Введите 1 000 и нажмите OK, чтобы запустить анализ. Как только откроется окно, содержащее результирующее дерево, сохраните сеанс в виде файла .mts или .mtsx. Также сохраните выходные данные в виде файла .newick и экспортируйте дерево как изображение .png. Сведения о разграничении на основе PTP см. на веб-сервере PTP. Нажмите на кнопку «Выбрать файл» и загрузите дерево в формате Newick. Под моим деревом выбрано укорененное. В поле под названиями таксонов внешней группы введите внешнюю группу, введя имя наконечника таксона. Затем, в разделе «Решение с максимальным правдоподобием», нажмите «Скачать результаты разграничения», чтобы сохранить выходные данные PTP ML. Аналогичным образом, в решении с наибольшей байесовской поддержкой нажмите «Скачать результаты разграничения», чтобы сохранить выходные данные PTP BI. Чтобы узнать об ограничении MPTP на основе MPTP, посетите веб-сервер MPTP. Загрузите файл Newick, перетащив его на серый квадрат или кликнув по квадрату. Как только данные будут загружены, нажмите «Перейти к выбору группы». На странице спецификации внешней группы выберите внешнюю группу, установив флажок рядом с метками таксонов экземпляров внешней группы. Затем нажмите на выбор модели, выберите MPTP и нажмите на параметры визуализации. На странице параметров визуализации примите настройки по умолчанию. Нажмите «Отправить». Щелкните правой кнопкой мыши файлы в разделе «Загружаемые файлы» и выберите «Сохранить как», чтобы сохранить результаты. Теперь, чтобы сгенерировать молекулярные операционные таксономические единицы или MOTU, откройте дерево с помощью программы для редактирования фотографий или PowerPoint. Создайте столбец, представляющий результаты каждого подхода к разграничению молекулярных видов. Если все подходы дают идентичные результаты для данного молекулярного кластера, обозначьте кластер как MOTU на основе консенсуса. На этом рисунке представлены результаты генного дерева с максимальным правдоподобием и молекулярной кластеризации для жуков-боранусов на основе 3-простых последовательностей COI и шести методов разграничения. Все методы последовательно идентифицировали четыре MOTUS: Byrrhinus negrosensis, Byrrhinus villarini Byrrhinus A и Byrrhinus B с идентичной кластеризацией по методам. Byrrhinus negrosensis и Byrrhinus villarini были четко разделены, несмотря на то, что происходят из одних и тех же мест. Последовательности из четырех провинций были сгруппированы в Byrrhinus A, не демонстрируя сильной географической структуры. На этом рисунке показана кластеризация жуков Anisostena в четыре MOTU, включая Anisostena angatbuhay, Anisostena auxilium, Anisostena A и Anisostena B с полным согласованием методов. Anisostena auxilium географически перекрывалась с Anisostena A и Anisostena B, что указывает на то, что география сама по себе не объясняет молекулярную дивергенцию.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
Данный протокол содержит рекомендации по компьютерной обработке последовательностей гена первой субъединицы цитохром-с-оксидазы (COI) водных и прибрежных жуков, что способствует идентификации молекулярных операционных таксономических единиц (MOTU). Целью данного метода является ускорение процесса открытия новых видов в таксономически сложных тропических регионах и улучшение разграничения видов на основе генетических данных.
Ускорение разграничения видов в гипердиверсифицированных и малоизученных таксонах имеет решающее значение для поиска новых лекарственных средств на основе биоразнообразия и оценки экологических рисков. Данный конвейер использует кластеризацию на основе ДНК для создания молекулярных операционных таксономических единиц (MOTU), предоставляя масштабируемое решение для быстрой проверки гипотез на ранних этапах идентификации мишеней. Этот подход повышает прогностическую достоверность при выборе биологических систем и поддерживает принятие решений по формированию портфеля в тех случаях, когда таксономическая неопределенность препятствует трансляционным исследованиям.
Данный конвейер генерации MOTU располагается на стыке этапов первичного поиска и идентификации перспективных соединений, обеспечивая базовую биологическую ясность для последующего скрининга и трансляционных рабочих процессов.