September 12th, 2025
В этом исследовании представлен метод 3D-визуализации с использованием целых тканей кишечника и многофотонной микроскопии для количественного определения секретируемой слизи, что позволяет проводить точный объемный анализ и визуализацию динамики слизи в ответ на такие стимулы, как карбамоилхолин хлорид.
Наши исследования сосредоточены на механизмах микробной инъекции в слизистые ткани, подчёркивая ключевую роль слизи в модулировании этих взаимодействий. Традиционная двумерная количественная оценка слизи пропускает пространственные и объёмные детали. Наш протокол позволяет проводить точный 3D-анализ, выявляя структурные и распределительные изменения в результате молекулярных вмешательств, упущенных в существующих методах.
Этот протокол сочетает гормональную визуализацию с 3D-количественной оценкой, обеспечивая надёжные воспроизводимые измерения архитектуры кишечной слизи, применимые к различным экспериментальным условиям, а также молекулярные вмешательства, превосходящие традиционную двумерную оценку. Для начала поместите анестезированную мышь от шести до восьми недель на грелку, чтобы поддерживать температуру тела. Продезинфицируйте кожную поверхность мыши спиртом и сделайте разрез в левой нижней части живота, чтобы обнажить слепую кость при сохранении анестезии.
Теперь определите подвздошную или проксимальную кишку. Положите кишечную петлю на стерильную марлю. Прополосните стерильным PBS и закрепите оба конца артериальными зажимами, чтобы создать замкнутую петлю длиной три сантиметра.
Под наркозом введите не более 200 микролитров стерильного реагента PBS или карбамоилхолина хлорида в связанную кишечную петлю. После 30 минут лечения извлеките кишечную петлю у усыпленного животного. С помощью щипцов держите кишечную петлю и аккуратно прополосните её в стерильном PBS.
Разрежьте кишечную петлю вдоль небольшой неразрезанной части и снова прополосните ткань стерильным PBS. Расплющите ткань в шестисантиметровой тарелке и разрежьте оставшуюся порцию. Используйте сегменты медной проволоки, чтобы закрепить её на основании агарозы.
Теперь добавьте 10 миллилитров раствора 4% параформальдегида, чтобы зафиксировать ткань на 12–24 часа. После инкубации удалите раствор параформальдегида и промыйте ткань не менее трёх раз PBS, чтобы удалить остатки параформальдегида. Затем погрузите ткань в 10 миллилитров блокирующего буфера, состоящего из PBS, дополненного 0,4% тритона X-100 и 3% BSA, и храните при 4 градусах Цельсия в течение 12–24 часов.
Уберите блокирующий буфер. Окрашивайте ткань раствором красителя, содержащим зародыши пшеницы агглютинин и фаллоидин. В тонких и толстой тканях, обработанных PBS, WGA-положительная слизь преимущественно локализовалась внутри кубковых клеток на поверхности эпителия.
После обработки карбамойлхолином хлоридом количество WGA-положительной слизи в просвете кишечника заметно увеличилось как в тонком кишечнике, так и в толстой кишке, но слизь распределялась спорадически, а не образовывала непрерывный слой. Объём слизи, связанной с GGA-положительными клетками, значительно снизился после обработки карбамоилхолином хлоридом как в тонком кишечнике, так и в толстой кишке, что указывает на активную секрецию. Все объёмы слизи, объём слизи, в тканях, обработанных PBS, находились менее 1 000 кубических микрометров.
WGA-положительные вещества объёмом более 1 000 кубических микрометров классифицировались как секретируемая слизь в просвете. Лечение карбамоилхолином хлоридом увеличило общий объём секретируемой слизи примерно в пять–двадцать раз как в тонком кишечнике, так и в тканях толстой кишки.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Это исследование представляет новый протокол для 3D-визуализации кишечного слизи с использованием целостных тканей и многофотонной микроскопии. Он позволяет проводить точный объемный анализ и визуализацию динамики слизи в ответ на различные стимулы.
Accurate three-dimensional quantification of intestinal mucus addresses a critical gap in discovery-stage gastrointestinal research by enabling absolute volumetric and spatial analysis of mucus secretion. This capability enhances predictive confidence in evaluating mucosal barrier function and the impact of molecular interventions, supporting risk-adjusted decisions in early target validation and mechanistic de-risking. The protocol's reproducibility and quantitative outputs position it as a foundational tool for pipeline advancement in mucosal biology and immunology portfolios.
This protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis testing, quantitative readouts, and mechanistic de-risking in gastrointestinal research workflows.