3 апреля 2026 г.
Здесь мы представляем протокол получения высококачественных одноклеточных суспензий из целых роговиц мышей посредством последовательного расщепления с помощью коллагеназы А и трипсина. Этот метод даёт жизнеспособные одиночные клетки с высокой целостностью РНК, что делает их совместимыми с последующим применением, такими как секвенирование одноклеточной РНК и потоковый цитометрy.
Этот протокол в первую очередь вводит метод получения высококачественных отдельных клеток из целых роговиц мышей. Наш метод — жизнеспособные одиночные клетки с высокой целостностью РНК, что делает их совместимыми с последующим применением, такими как одиночные клетки на толстом тонком и потоковом диаметре. Для начала поместите усыпленную самку C57BL6 возрастом от шести до восьми недель на стерильный стол для вскрытия.
После промывания закрытых век с помощью PBS используйте офтальмологические ножницы, чтобы сделать разрез вдоль заднего полюса глазного яблока и аккуратно поместите изолированный глаз в чашку Петри с ледяной дополнительной гормональной эпителиальной средой. После трёхкратного промывания глазного яблока 1XPBS с добавлением 5% пенициллина стрептомицина, используйте офтальмологические ножницы и щипцы, чтобы сделать разрез от задней части роговицы к лимбу. Аккуратно отсоедините роговицу от склеры и конъюнктивы вдоль лимбальной границы, затем с помощью двух пар щипцов полностью удалите хрусталик и радужку.
После трёхкратного промывания ткани роговицы в PBS перенесите чистую ткань в новую трубку. Добавьте один миллилитр по пять миллиграмм на миллилитр раствора коллагеназы А и измельчите ткань на фрагменты размером примерно 0,5 на 0,5 миллиметра с помощью офтальмологических ножниц. Инкубировать трубку с фрагментами роговицы раствором коллагеназы А в инкубаторе клеточной культуры при 37 градусах Цельсия в течение одного часа.
Осматривайте ткани каждые 10 минут во время пищеварения. Когда крупные фрагменты ткани не остаются, центрифугуйте образец при 300 G в течение пяти минут при комнатной температуре, затем аккуратно аспирируйте супернатант. Далее суспензируйте гранулу в 200 микролитрах раствора ЭДТА 0,25% трипсина.
Поместите трубку в инкубатор для клеточной культуры, установленный на 37 градусов Цельсия, на 10 минут, чтобы переварить оставшиеся фрагменты ткани. Наконец, используйте пипетку P1000 с широким наконечником для аккуратного тритурирования смеси и получения суспензии с одной ячейкой. Центрифугуйте суспензию клетки, как было показано ранее, и снова суспензуйте клеточную гранулу в PBS с содержанием 0,04% BSA.
При подсчёте изолированных клеток роговицы с помощью гемоцитометра было установлено, что из восьми роговиц было получено всего 1,05 умножить на 10 на мощность пяти клеток со средней жизнеспособностью клеток 94,6% и соотношением одной клетки более 96,3%, что подтверждает пригодность суспензии для последующих приложений. Иммунофлуоресцентный анализ показал, что суспензия клеток состоит из 83,5% пан-CK-положительных эпителиальных клеток, 13,5% кератокан-положительных стромальных клеток и примерно 3% клеток отрицательных по обоим маркерам. РНК, извлеченная из суспензии одной клетки, демонстрировала высокий уровень целостности РНК около 8,8 и соотношение рибосомных РНК 28S на 18S примерно 2,15, что подтверждает отличное качество РНК.
После получения отдельных клеток можно охарактеризовать функцию роговицы и исследование поверхностных отметок. Это связано с изучением взаимодействия между клетками. Одной из сложностей в этом методе является фактическое отделение роговицы от других тканей.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье представлен надежный протокол выделения высококачественных суспензий одиночных клеток из целых роговиц мыши. Метод сочетает в себе точную диссекцию тканей с последовательным ферментативным перевариванием, что позволяет получать жизнеспособные одиночные клетки, подходящие для последующего применения, такого как секвенирование РНК одиночных клеток (scRNA-seq) и проточная цитометрия. Данный протокол обеспечивает получение большого количества клеток, отличную жизнеспособность и сохранение целостности РНК, что способствует детальному анализу клеточной гетерогенности роговицы.
Высококачественные суспензии единичных клеток роговицы мыши необходимы для развития офтальмологических исследований на этапе поиска и обеспечения высокоразрешающего клеточного профилирования. Данный протокол решает критическую проблему подготовки жизнеспособных единичных клеток с сохранной РНК из плотной ткани глаза, что напрямую влияет на достоверность последующего анализа единичных клеток. Качественная подготовка клеток повышает прогностическую уверенность при валидации мишеней и поддерживает трансляционную преемственность между этапами поиска и доклиническими исследованиями.
Данный протокол объединяет этапы раннего поиска и доклинических исследований, обеспечивая плавный переход от диссоциации тканей к анализу на уровне единичных клеток и последующим функциональным исследованиям.