24 февраля 2026 г.
Этот протокол подробно описывает передовые применения визуализации и управление совместными ресурсами системы лазерно-сканирующего конфокального микроскопа, интегрированной с мультиплексированным детектором массива для высокоразрешающей клеточной и субклеточной визуализации. Рабочий процесс позволяет мультимодальное изображение от конфокального до сверхразрешения (~120 нм) на одной платформе, делая визуализацию наномасштабов более доступной.
Наши исследования сосредоточены на разработке доступных методов сверхразрешающей визуализации динамических субклеточных структур, преодолевая дифракционные пределы традиционной микроскопии. Метод сверхразрешения охватывает фототоксичность, сложную работу и специализированную подготовку. Этот протокол снижает эти барьеры с помощью конфокального мультиплексного обнаружения.
Для начала включите основной блок микроскопа, лазерный пусковой модуль, светодиодный источник света и управляющий компьютер. Запускайте операционное ПО микроскопа. С основного интерфейса выберите GFP, затем отключите отражённый свет.
Перейдите к панели приобретений. В выпадающем меню объектива выберите соответствующую объективную линзу. Для живой клеточной визуализации за 45–60 минут до съёмки активируйте камеру окружающей среды и систему активной стабилизации фокуса.
После стабилизации системы проверьте устойчивость с помощью датчиков камеры. Нанесите иммерсионное масло на переднюю линзу объектива, не появляя пузырей. Поместите подготовленный образец на стадию микроскопа.
Аккуратно поднимайте его, пока крышка не соприкоснется с погружным маслом. Далее откройте программное обеспечение для приобретения. Перейдите на вкладку «Приобретение» и выберите «создать новый эксперимент».
Теперь добавьте изображения для используемых флуорофоров. Для каждой дорожки установите диаметр конфокального отверстия на один воздушный блок. Для оптимизации мощности лазера выберите первый канал и переключитесь в режим живого сканирования.
Установите начальную мощность лазера на низкое, затем установить усиление детектора на умеренный уровень в его линейном диапазоне. После этого постепенно увеличивайте мощность лазера, пока целевые структуры не станут чётко видимы на фоне на живом изображении. Настройте размер пикселя с помощью кнопки выборки Nyquist для автоматического расчёта.
Далее установите время пикселя. Теперь выберите режим последовательного сканирования между дорожками, чтобы минимизировать перекрёстные контакты. Нажмите Snap, чтобы получить одно изображение.
Сохраните изображение с соответствующими метаданными. Для согласованных настроек между оптическими секциями убедитесь, что все параметры изображения настроены на одной оптимальной фокальной плоскости перед определением Z-стека. Откройте вкладку Acquisition и выберите режим Z-stack.
Определите объём интереса, используя быстрый живой скан, чтобы сначала сосредоточиться на самой нижней структуре, затем нажмите Set Last или Bottom. Аккуратно настройте фокус до самой верхней интересующей структуры и нажмите Set First или Top. Программа затем отображает общую глубину.
Размер Z-стека установлен так, чтобы соответствовать критерию выборки Найквиста. Используйте кнопку «Оптимальный» для автоматического расчёта. После настройки параметров изображения для каждого канала увеличьте мощность лазера или небольшое усиление для слабых сигналов по сравнению с одним двумерным изображением.
Начните сбор, чтобы собрать весь стек изображений. Для визуализации используйте встроенный модуль обработки микроскопа. Генерируйте проекции максимальной интенсивности для просмотра всех сигналов в фокусе на одном двумерном изображении.
Затем выполните рендеринг объёмов с использованием встроенных алгоритмов программного обеспечения для генерации трёхмерного представления. Регулируйте яркость, прозрачность и освещение по мере необходимости. Затем генерируйте ортогональные сечения XZ и YZ для проверки осевой протяжности и регистрации.
Многоцветная флуоресцентная визуализация фиксированных клеток COS-7 показала, что ядра, митохондрии и микротрубочки были чётко маркированы с минимальным перекрытием, что подтверждало эффективное последовательное сканирование и оптимизированное обнаружение. Проекция максимальной интенсивности интегрирует сигналы во всех оптических секциях, подчёркивая пространственное распределение флуоресцентно маркированных структур. Трёхмерная реконструкция обеспечивает глубинный обзор архитектуры образца.
Таймлапс-визуализация живых клеток гепатита 3B с митохондриями, отмеченными EGFP, сравнивается между режимами. Конфокальные кадры между временными точками показывают чёткие структуры, но постепенную потерю сигнала. Стандартные кадры с супер-разрешением или SR показывают более высокое разрешение, но со временем увеличивается фотоотбеливание.
Быстрые изображения с суперразрешением или SR-4Y сохраняют стабильную флуоресценцию даже в более поздних временных точках. График средней интенсивности флуоресценции EGFP за 100 временных точек показывает, что режим SR-4Y поддерживал наиболее стабильный сигнал. Производительность визуализации в фиксированных ячейках COS-7 сравнивалась между режимами, и режимы с суперразрешением обеспечивали более чёткие структурные детали, чем конфокальные.
Измерение функции точечного разбора с помощью 100-нанометровых флуоресцентных шариков показало, что Airyscan SR с последующей деконволюцией соединения улучшает как боковое, так и осевое разрешение по сравнению с Airyscan SR. Этот протокол позволяет исследовать морфологию органелл, динамику цитоскелетов и колокализацию молекул как в фиксированных, так и в живых клетках с разрешением примерно 120 нанометров. Самым важным аспектом этого протокола является тщательная подготовка образцов с использованием высококачественного крышного стекла и оптимизированное окрашивание для обеспечения целостности сигнала при сверхразрешенной обработке.
Следуя этой процедуре, исследователи могут проводить количественный анализ изображений, например, измерять отношение сигнал/шум или колокализацию, используя специализированное программное обеспечение, такое как ImageJ.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном протоколе продемонстрирован метод для применения в передовых задачах визуализации с использованием лазерного сканирующего конфокального микроскопа, интегрированного с мультиплексным матричным детектором. Он обеспечивает возможность мультимодальной визуализации — от конфокального режима до сверхразрешения (~120 nm), что делает получение клеточных изображений высокого разрешения более доступным.
Конфокальная микроскопия сверхвысокого разрешения с мультиплексным детектированием позволяет осуществлять наноразмерную визуализацию субклеточных структур, одновременно снижая фототоксичность и эксплуатационную сложность. Данный протокол поддерживает высокопроизводительные количественные рабочие процессы визуализации, необходимые для раннего поиска, валидации мишеней и снижения механистических рисков в биофармацевтических исследованиях и разработках (R&D). Интегрированная платформа и общая модель управления обеспечивают масштабируемую и воспроизводимую визуализацию для различных исследовательских групп и портфельных проектов.
Данный протокол объединяет этапы первичного поиска, скрининга и трансляционных исследований, предоставляя унифицированный рабочий процесс визуализации — от конфокального режима до режимов сверхвысокого разрешения.