10 апреля 2026 г.
Мы описываем метод физического сужения для получения мини-эмбрионов из 1-клеточных эмбрионов Xenopus laevis .
Наше исследование изучает, как размер клетки регулирует раннюю активацию эмбрионального генома, физически генерируя миниатюрные эмбрионы в начале раннего развития. Существующие методы, такие как прямая оценка размера влияния на активацию генома, решают эту проблему, напрямую изменяя размер одного клеточного эмбриона. Для начала подготовьте волосяные узлы для суждения эмбрионов, разрезав тонкие волосы примерно на пять сантиметров.
С помощью пинцета вставьте один кончик волоса в кончик P10 на глубине около одного сантиметра. Затем возьмите воск на ложке и нагрейте, чтобы воск расплавился. Быстро окуньте наконечник P10, прикреплённый к волосам, в воск и дайте ему высохнуть одну минуту.
Убедитесь, что волосы фиксированы на конце кончика P10. Используйте пинцет, чтобы аккуратно завязать волосы сверху. Отрегулируйте размер петли примерно на 1,5 миллиметра.
Подстричь свисающие волосы. Для начала получите эмбрионы Xenopus, полученные с помощью стандартных процедур экстракорпорального оплодотворения и микроинъекционные с пятью этанол-уридином для маркировки зарождающихся транскриптов. Далее добавьте 15 миллилитров среды с градиентом 3% плотности, содержащей 0,5x MMR, в заранее подготовленную 60-миллиметровую чашку Петри, покрытую агарозой.
Через час после оплодотворения перенесите эмбрионы в чашку Петри. Под стереомикроскопом используйте пинцет, чтобы повернуть эмбрион примерно на 45–60 градусов для доступа к растительному полюсу. Держите эмбрион пинцетом, а в другой руке аккуратно проколите вегетационный столб иглой 30 калибра.
Поместите волосяной узел на кончике P10 над эмбрионом так, чтобы посох животного полюса был заключен внутри волосяного узла. Регулируйте положение узла в зависимости от размера мини-эмбриона. Используя наконечник пипетки P10 и пинцет, потяните концы узлов в противоположные стороны, чтобы затягивать его вокруг эмбриона между животным и растительным полюсами.
Аккуратно нажмите на эмбрион и выпустите немного цитоплазмы. Затем разрежьте волосяной узел там, где он крепится к кончику P10. После получения необходимого количества мини-эмбрионов оставьте их в градиентной среде с плотностью 3% примерно один-два часа.
Затем, используя пипетку P1000, удаляют среду, не беспокоя эмбрионы, и добавляют 15 миллилитров 0,1x MMR. Когда эмбрионы достигнут нужных стадий, удалите волосяные узлы. Микроскопическое изображение эмбрионов, полученных через 8,5 часа после оплодотворения, показало, что объём некоторых мини-эмбрионов составлял примерно треть от объёма контрольных, что говорит о том, что ранние эмбрионы Xenopus можно манипулировать для создания мини-эмбрионов.
Самая важная задача при выполнении этого протокола — связать только один клеточный эмбрион для создания мини-эмбрионов. Мини-эмбрионы, полученные по этому протоколу, могут использоваться для визуализации и секвенирования для механистических исследований. Будущие исследования могут изучить, как размер эмбриона и клеток регулирует раннее развитие и лежащие в основе механизмы.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
Ранний эмбриогенез характеризуется быстрым уменьшением размера клеток при постоянном объеме эмбриона, что изменяет нуклеоцитоплазматическое отношение (N:C), регулирующее ключевые процессы развития. В данной статье описан метод создания мини-эмбрионов путем перевязывания одноклеточных эмбрионов Xenopus laevis узлами из волоса для уменьшения объема цитоплазмы и увеличения отношения N:C. Такие мини-эмбрионы инициируют раннюю активацию зиготического генома (ZGA) вследствие уменьшения размера клеток, что предоставляет инструмент для изучения зависимых от размера механизмов развития.
Физическое манипулирование эмбрионами Xenopus для создания мини-эмбрионов позволяет напрямую исследовать, как размер клеток и нуклеоцитоплазматическое (N:C) отношение регулируют механизмы раннего развития. Этот подход обеспечивает контролируемую систему для механистической оценки рисков регуляторных путей, опосредованных размером, что повышает прогностическую достоверность на этапах раннего поиска и валидации мишеней. Адаптивность данного метода к различным эмбриональным системам расширяет его значимость для биологии развития и трансляционных исследований.
Этот метод применяется на стыке этапов первичного поиска и доклинических исследований, позволяя проводить исследования на основе гипотез: от изучения механизмов действия до разработки трансляционных моделей.