Denne protokollen er et utdrag fra Reimels og Pfleger, Metoder for å undersøke lymfekjertel og hemocytter i Drosophila Larver, J. Vis. Exp. (2016).
1. Sirkulerende hemocyttkonsentrasjon
- For å oppnå larver av omtrent samme utviklingsstadium for denne analysen, begrens eggsamlingen ved å la kvinner legge egg i en fast tidsperiode på 2 - 6 timer.
- Samle larver i dissekering av tallerkenbrønner fylt med 1x fosfatbufret saltvann (PBS).
- For hver larve, plasser 10 μl 1x PBS i et mikrosenterrør på is og 10 μl 1x PBS på en ren dissekeringspute. Plasser dissekeringsputen på en opplyst stereomikroskopbase.
- Tørk en individuell larve ved å plassere den på en vevsserviett før du overfører den til en PBS-dråpe på disseksjonsputen.
- Bruk et par tang, riv forsiktig opp og inverter forsiktig kutiklen for å frigjøre hemolymfen.
MERK: Pass på at du ikke skraper eller jab neglebåndet, da dette potensielt kan frigjøre sessile hemocytter.
- Bruk en pipet, samle hemolymfen fra dissekeringsputen. Unngå å samle larvrester som den fete kroppen.
- Tilsett hemolymfen i et mikrocentrifugerør og bland ved å pipettere opp og ned.
MERK: Flere prøver kan samles på en gang og holdes på is i opptil en time.
- Valgfritt: Bland Trypan blå med hemolymfprøven i like deler for å farge og utelukke døde celler. Tell celler innen 3 minutter etter å ha lagt til Trypan blå fordi det er giftig for celler.
- Bland prøven ved å pipettere opp og ned før du laster 10 μl inn i et hemocytometerkammer.
- Hvis du bruker en automatisert celleteller, angir du passende parametere for cellestørrelse og sirkularitet. Angi for eksempel en minimum cellestørrelse på 2 μm, en maksimal cellestørrelse på 22 μm og en sirkularitet på 75 - 80% rundhet for å oppdage normale, runde hemocytter. Eksperimenter med forskjellige parametere for å oppdage større og spindelformede hemocytter, for eksempel lamellocytter. Alternativt kan du bruke et hemocytometer til å telle hemocytter manuelt.