Summary
当社は、分割インテイン媒介タンパク質ヒドロゲルの合成を提示する。このヒドロゲルのビルディングブロックは、それぞれが分割インテインの架橋剤及び半分となる三量体タンパク質のサブユニットを含む二つのタンパク質の共重合体である。二つのタンパク質の共重合体の混合は、ヒドロゲルに自己組織化ペプチドユニットを得インテイントランススプライシング反応をトリガします。このヒドロゲルは、有機溶媒に対応して、高度なpHおよび温度安定性であり、簡単に機能的な球状タンパク質が組み込まれています。
Abstract
当社は、分割インテイン触媒によるタンパク質トランススプライシング反応によって媒介性の高い安定なタンパク質ヒドロゲルの合成を提示する。このヒドロゲルのビルディングブロックは、それぞれが分割インテインの架橋剤及び半分となる三量体タンパク質のサブユニットを含む二つのタンパク質のブロックコポリマーである。親水性の高いランダムコイルは、保水性ブロックコポリマーの1つに挿入される。 2タンパク質のブロックコポリマーの混合は両端に架橋剤とペプチドユニットを得インテイントランススプライシング反応をトリガするヒドロゲルに急速に自己集合。このヒドロゲルは、酸性および塩基性の両方の条件下で、50°Cまでの温度で、有機溶媒中で非常に安定である。せん断誘発の破裂後のヒドロゲルは、急速な改革。ヒドロゲルビルディングブロックに「ドッキングステーションペプチド」の組み込みは、「ドッキングタンパク「タグ化標的タンパク質の簡便な取り込みを可能にする。ヒドロゲルは、組織培養増殖培地と互換性のある20 kDaの分子の拡散をサポートし、生物活性球状タンパク質の固定化を可能にする。有機溶媒適合性、生体触媒としてインテイン媒介タンパク質ヒドロゲルの適用は、西洋ワサビペルオキシダーゼ酵素をカプセル化し、その活性を確証することによって実証された。
Introduction
タンパク質の全く作らヒドロゲルは大幅に組織工学、薬物送達およびbiofabrication 1のように多様な分野を進める可能性を運ぶ。彼らは、生体適合性と非侵襲的に生体活性球状タンパク質の取り込みをサポートするための可能性を含め、従来の合成高分子ヒドロゲルを上回る利点を提供します。
本研究では、分割インテイン媒介タンパク質トランス-スプライシング反応およびタンパク質固定足場（ 図1）としてのその適用を介して形成された新規タンパク質、ヒドロゲルの開発を記載している。このヒドロゲルのためのビルディングブロックは、各々が（INおよびIC）を分割インテインおよび多量体タンパク質の架橋サブユニットのN-またはC-末端断片を含む二つのタンパク質のブロックコポリマーである。のDnaEはインテノストックパンクチ （NPU）から<ホリコシパイロコッカスから2,3インテ分割し、小さなトリマータンパク質（12 kDa）のCutAとして使用された/全角>は架橋タンパク質4,5として使用した。異なる架橋剤は高度に架橋されたタンパク質ネットワーク（ハイドロゲル）の形成を導く、インテイン触媒によるトランス - スプライシング反応を介して接合されている。 NPUのインテインは、その高速な反応速度（T 1/2 = 63秒）、高トランススプライシング利回り（近い80％） の2,3の選ばれた。 CutAタンパク質は、その高い安定性のために、架橋剤として選ばれた。 CutAトリマーは、近い150℃の変性温度を持っているし、できるだけ多くのM 5として塩酸グアニジン4,6を含む溶液中で三量体四次構造を保持する。異なる架橋剤間のサブユニット交換は、物理的なハイドロゲル表面侵食7の主要な原因であることから、CutA非常に強い間、サブユニットの相互作用は、より安定したヒドロゲルにつながるようなサブユニットの交換を阻止する必要があります。これらのビルディングブロックの一つは、水を容易にするために、中間ブロックとして親水性の高いS-ペプチド断片を含むリテンション8。
2ヒドロゲルのビルディングブロックの混合は、両末端に架橋剤と、より長いポリペプチド鎖を生成し、フラグメントインテインINとICの間のトランス-スプライシング反応を開始する。複数のそのような分子単位の架橋剤は、高度に架橋されたヒドロゲル網目構造（ 図1A）を形成し 、互いに相互作用する。特定の「ドッキングステーションペプチド」（DSP）「ドッキングタンパク質」（DP）の安定な固定化を容易にするために、ヒドロゲル構成要素の1つに組み込まれているタグ化標的タンパク質へのヒドロゲル。のみならず、ヒドロゲルアセンブリを媒介するインテイン分割の使用は、タンパク質、ヒドロゲル合成のための追加の柔軟性を提供するだけでなく、標的タンパク質前ヒドロゲル形成にロードされるように、全体ヒドロゲルを通して標的タンパク質の高密度で均一な充填を可能にする。
インテイン媒介タンパク質ハイドロゲルは非常に安定である室温で3ヶ月後のリトル·ツー·検出可能な浸食と、水溶液中のBLE。安定性のpH（6-10）および温度（4-50℃）の広い範囲内に保持し、ヒドロゲルはまた、有機溶媒と適合性である。緑色蛍光タンパク質（GFP）、西洋ワサビペルオキシダーゼ（HRP）：このヒドロゲルは2つの球状タンパク質の固定化のために使用される。後者のタンパク質を捕捉するヒドロゲルを有機溶媒に生体触媒を実行するために使用される。
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Protocol
1。プラスミド構築
注：すべての遺伝子は、製造業者の仕様に従ってのPhusion高忠実度DNAポリメラーゼを使用する標準的なPCR反応条件下で増幅した。クローニングに用いたプライマーは以前に記載されている9。全ての構築物を表1に示す。
- CutA-NpuN（N、表1）を生成する。
- PCRは、適切なプライマーを用いて、それぞれのプラスミドたpET30-CutA-TIP1 10とKanR-IntRBS-NpuNC-CFNの11からCutAとNpuN遺伝子を増幅。
- 適当な制限酵素でこれらの断片を消化し 、順次、T7プロモーターおよびN（図2A）を生成するC-末端タグの間6xHistidineいるpET26Bベクターにこれらのフラグメントを挿入する。
- NpuC-S-CutA（C、表1）を生成する。
- PCRはNpuC、CutAとSフラグメンテーションを増幅適切なプライマーを用いて、それぞれプラスミドKanR-IntRBS-NpuNC-CFNの11、たpET30-CutA-TIP1 10とpQE9交流10 ATRP 12からT [AG 3（PEG）] 10。
- 適当な制限酵素でこれらの断片を消化し 、順次、T7プロモーターおよびC（図2B）を生成するC-末端との間の6xHistidineいるpET26Bベクターにこれらのフラグメントを挿入する。
- ：NpuC-S-SH3 LIG-CutA（C-SH3のLIG、 表1）を生成する
- PCRは、フラグメントのSH3 LIG-CutAを生成するのSH3 LIG（PPPALPPKRRR）と柔軟なリンカー（GGGGS）2を含むプライマーを使用してCutAを増幅する。
- フラグメントSH3 LIG-CutAとCからCutA遺伝子を交換してください。
- SH3-GFP（ 表1）を生成する。
- 使用してプラスミドpJD757 13からSH3遺伝子を増幅適切なプライマー。
- GFP遺伝子にこの断片を融合し、T7プロモーター（ 図2C）およびC末端6xHistidineタグとの間にいるpET26Bベクターに挿入します。
2。タンパク質の発現
- 適当な発現プラスミドで化学的にコンピ大腸菌 BL21（DE3）の50μlのを変換します。
- 形質転換後、連続的にこれらの細胞を希釈し、ルリア - ベルターニ（LB）上にプレート/ 50μg/ mlのカナマイシンを含む寒天プレート。
- 〜15時間、37℃で形質転換された細胞を含むプレートをインキュベートする。
- インキュベーションの後、50〜100個のコロニーが含まれているプレートをピックアップし、LBブロス5mlに全てのコロニーを懸濁します。
- 転送サスペンションカナマイシン（50μg/ mlの）を含む1LのLBブロスに、250rpmで振盪しながら37℃で細胞を増殖させる。 600ナノメートル（OD 600）での吸光度をモニターする。 OD 600〜0.8までの文化を育てる。
- C及びC-SH3 LIGのために、培養（最終濃度1mM）にイソプロピルβ-D-1-チオガラクトピラノシド（IPTG）を加えることでタンパク質発現を誘導し、250rpmで振盪しながら4時間37℃で培養物をインキュベートする。
- NおよびSH3-GFPについては、約5分間、氷水浴中で培養フラスコを浸漬することにより培養物を〜18℃に冷却する。文化（1mMの最終濃度）にIPTGを添加することにより、タンパク質の発現を誘導し、250rpmで振とうしながら14〜18時間、18℃で培養液を、。
- タンパク質発現の後、ペレットを収集するために、4℃で20分間、6,000×gで培養物を遠心分離する。使用するまで-80℃で保存した細胞ペレット。
3。タンパク質精製
- Nの精製（変性条件）
- 湿ったペレットを10ミリリットル/ gで、緩衝液A（ 表2）に再懸濁細胞ペレット。
- Immers氷水浴中でペレット懸濁液を電子と（1秒パルスおよび1分6秒の休止とアンプ10、）超音波処理により細胞を破壊する。
- 4℃で20分間16,000×gで溶解液を遠心分離
- 上清を捨てる。バッファDA（8 M尿素を含有する）及び遠心分離機で4℃で20分間16,000 xgで懸濁液中にペレットを再懸濁
- 以前にバッファDAで平衡化した5ミリリットルのNi-ニトリロ三酢酸（NTA）カラムに通して上清を渡します。
- 45 mMイミダゾールを補ったバッファーDAの30ミリリットルでカラムを洗浄します。 150 mMイミダゾールを補充した緩衝液20mlのDAを使用して精製したタンパク質を溶出させる。
- 3.1.7.1または3.1.7.2で与えられ、次のいずれかの方法により、<1 mmのタンパク質試料中の尿素濃度を低下させる。
- <20 kDaのカットオフを有するチューブを用いて4℃で一晩DPBS緩衝液（ 表2）でタンパク質を透析する。
- 遠心分離器は、30＆＃中のタンパク質を精製した160; 2,800 xgでkDaの限外濾過スピンカラム、4°Cにまで体積1 ml未満である。タンパク質試料を希釈するために列に14ミリリットルのDPBSバッファーを追加します。遠心分離/希釈は3回以上繰り返し繰り返します。
- バッファー交換した後、精製したタンパク質（最終2mM）をにジチオスレイトール（DTT）を追加し、2800×gで30kDaの限外ろ過スピンカラム、4℃を通して遠心分離により〜100 mg / mlのにタンパク質を濃縮
- 使用するまで-80℃で濃縮されたタンパク質や店舗を分取。
- CおよびC-SH3 LIGの精製（ネイティブ条件）
- 10ミリリットル/湿ったペレットのgで1Xプロテアーゼ阻害剤カクテルを補充した緩衝液Bに再懸濁細胞ペレット（pH6.0）である（ 表2）。標的タンパク質のタンパク質分解を最小にするために、酸性緩衝液を使用する。
- 3.1.2に記載のように超音波処理により細胞懸濁液を破壊する。遠心分離機のLys4℃で20分間16,000×gで食べたし、上清を保持します。
- 以前にバッファーBで平衡化した5mlのNi-NTAカラムを通して可溶性溶解を渡す
- 緩衝液Bで洗浄カラムは、45 mMイミダゾールを補充し、および150 mMイミダゾールを補充した緩衝液Bを20mlの標的タンパク質を溶出させる。
- Cの場合は、3.2.6に進みます。 C-SH3のLIGについては、3.2.5.3と3.2.5.1ステップで与えられている部分的に分解されたタンパク質を除去するために追加のイオン交換精製工程を行う
- 3.1.7で説明した手順に従って、<1 mmのLIG C-SH3中のNaCl濃度を低下させる。
- 予めリン酸ナトリウム緩衝液（50mM、pH7.0）で平衡化させた5mlの陰イオン交換ビーズアガロースマトリックスカラムに標的タンパク質をロードする。
- 溶出液は、10mMトリス-HCl pH8.0のbuffeを含有する溶液の勾配を実行して、カラムからタンパク質を標的とする1 M NaClを補充した同じ緩衝液を含有する溶液にrであるドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動（SDS-PAGE）に基づいて、最高純度のタンパク質溶出プール試料中にサンプルを採取する。
- 3.1.7に記載のように、DPBSバッファー中に精製されたタンパク質を緩衝液交換。
- 精製されたタンパク質（最終濃度2 mM）をにDTTを追加し、3.1.8で説明したように〜100 mg / mlの30kDaの限外ろ過スピンカラムを使用してタンパク質を濃縮。分量とストアが使用するまで-80℃でタンパク質を濃縮した。
- SH3-GFPの精製
- 10ミリリットル/湿ったペレットのgの緩衝液Aを使用して再懸濁細胞ペレット。
- 3.1.2で説明したように超音波処理によりペレットサスペンションを混乱させる。
- 遠心4℃で20分間16,000 xgで溶解物および上清を回収する。
- 以前で平衡化した5mlのNi-NTAカラムを通して上清（可溶性溶解）を渡す緩衝液A
- 緩衝液A 30mlで洗浄カラムは、45 mMイミダゾールを補った。緩衝液A 20mlの溶出を用いて精製したタンパク質を150 mMイミダゾールを補充した。
- 緩衝液は、3.1.7で述べたものと同様のアプローチを用いてDPBS緩衝液中に精製されたタンパク質を交換し、〜150mgのタンパク質を濃縮/ mlの3.1.8に記載されるように30kDaの限外濾過スピンカラムを用いて。
- 使用するまで-80℃で精製タンパク質をアリコートし、保存します。
- CutAを含む精製サンプルのSDS-PAGE分析
- 〜1 mMのNaCl濃度を減少させるために二重蒸留水に各精製タンパク質を希釈する。このNaCl濃度で、CutA三量体タンパク質のほとんどは、SDS-PAGEゲル上で単量体として実行する。
- 95℃でインキュベートした2×SDSサンプル緩衝液（0.5 Mトリス - 塩酸、pH 6.8、20％グリセロール、10％/ vのSDS、0.1％w / vブロモフェノールブルー、2％β-メルカプトエタノールw）を有する試料を混合5分間。
- SAMを読み込む12％SDS-PAGEゲル上にples。 〜50分間、200Vの定電圧で電気泳動を行う。
- 標準プロトコル（ 図1C）は、次のクマシーブリリアントブルーR250で染色することにより、ゲル中のタンパク質を観察します。
4。ヒドロゲル形成
注：特に断りのない限り、本研究で作成したサンプルのヒドロゲルは、各ヒドロゲルビルディングブロックの1.6 mMのが含まれています。このタンパク質濃度は柔らかく、安定したヒドロゲルが得られる。注意：アジ化ナトリウム（NaN 3を ） は、細菌汚染を防ぐために、w / vの最終濃度0.5％にヒドロゲルに添加される。のNaN 3は、非常に毒性があり、化学物質等安全データシートに示されているように、細心の注意を払って取り扱わなければならない。
- 100μlのサンプルヒドロゲル中に1.6 mMの最終濃度を達成するために必要な濃縮タンパク質のそれぞれについて体積を計算する。たとえば、次のように
Nの濃度：100 mg / mlの
Nの分子量：26.3 kDaの（ 表1を参照してください）
所望の体積：100μlの所望の濃度：1.6 mMの
- 100μlのハイドロゲル（1.6 mm）を作るために、C言語を混在させる（XμL、容量4.1に従って計算）5％のNaN 3（10μL）で、100のDTT（5μL）とN（YμL、音量に応じて算出4.1）2を10mlのガラスバイアルの内部。
- 最終容量100μlを達成するために、バイアルに（Y）μL - - X（85）と、手動ピペットチップを使用して旋回運動を経由してすべてのコンポーネントを混在させるDPBSバッファーを追加します。注意：ソリューションは、混合時に非常に粘稠になる。
- 気泡を除去するために8,000×gで2分間混合物を遠心分離する。
- 室温で混合物をインキュベートインテイントランス -スプライシング反応が完了に到達させるために一晩温度。逆さにチューブを回して、ハイドロゲル形成を確認してください。ハイドロゲルが形成されるとタンパク質が流れない。
- 3.4（ 図1C）で説明したように、ステップ4.2の前にし、SDS-PAGEゲル上でステップ4.5の後に採取した試料（0.5μLずつ）チェックして、インテトランススプライシング収量を推定する。
5。ドッキングタンパク質（DP）とドッキングステーションを経由して、GFPの固定化ペプチド（DSP）の相互作用
- 50μlのGFP-官能化ヒドロゲル（1.2 mm）を作るために1.7での1:1のモル比で、（4.1に従って計算、XμL）C-SH3のLIGを組み合わせて、SH3-GFP（YμL、4.1に従って計算） mlマイクロ遠心チューブ30分間室温で混合物をインキュベートする。
- X - - <5％のNaN 3（5μL）、100のDTT（2.5μL）、（42.5の追加同じチューブにEM> Y）μlのDPBS。 N及びC-SH3 LIGの1:1モル比を達成するためにN（yの μlの4.1に従って計算）を添加する。旋回運動によりピペットチップを用いて試料を混合する。
- 2分間8,000×gで遠心分離し、混合物を暗所で室温で一晩混合物をインキュベートする。インキュベーション中にSH3-GFPフォームをカプセル化ヒドロゲル。
6。有機溶媒中の酵素反応のための固定化の足場として1.6 mMのハイドロゲルの使用
- モデル酵素として、HRPを使用してください。 DPBS中のHRP（28 mg / mlのか、0.63ミリモル）のストック溶液を準備します。
- HRPを捕捉30μlのハイドロゲル（1.6 mm）を作るために、C内の HRP（2μL）、5％のNaN 3（3μL）およびDTT（100 mMと1.5μL）と（XμL、4.1に従って計算）を組み合わせ1.7ミリリットルの遠心管。
- N（Yを追加する</ em>の4.1に従って計算μL、）とDPBS（23.5 - X - Y）μL。旋回運動をピペットチップで混ぜる。
- 2分間8,000×gで遠心分離し、混合物を室温で一晩インキュベートする。
注意：以下の活性アッセイに用いジェンツは非常に有毒である。対応する化学物質等安全データシートにより、特定の安全勧告を使用してください。 - 酵素反応は、N、N-ジメチル-p-フェニレンジアミン（5.8 mM）を、n-ヘプタン14中のフェノール（5.8ミリモル）およびtert-ブチルヒドロペルオキシド（2.9ミリモル）を含有する反応カクテル1mlのヒドロゲルを沈める。手動ヒドロゲルおよび溶媒の接触面積を増加させるためにピペットチップを用いてゲルを破壊する。
- プレートリーダー（ 図5）で546 nmでの異なる時点で採取した試料の吸光度を測定することにより、HRP生成物、インドフェノール系色素を検出する。 </ OL>
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Representative Results
インテイン媒介タンパク質ヒドロゲルを形成するための模式図を図1Aに提示される。ヒドロゲルのビルディングブロックは、タンパク質がCutA-NpuN（N）およびNpuC-S-CutA（C）（ 図1A、表1）コポリマーである。 NpuN / Cノストックパンクチ（NPU）からインテ自然に分割のDnaEのN-/C-fragmentsです。 CutAはパイロコッカスホリコシ 4,5から安定した三量体タンパク質である。 （ 図1Aおよび1C）：連結産物（CutA-S-CutA J） -還元剤DTTの存在下で、精製されたNとCの混合は、第3のタンパク質の形成を誘導する。個別に、ヒドロゲルビルディングブロックNとCは、粘性流体（ 図1B）が存在する。 NとCの混合は、ヒドロゲル15,16（ 図1B）の形成を示す反転後ガラスバイアルの底に保持されている透明の半固体材料を得18,19。
このインテイン媒介タンパク質ヒドロゲル（1.6 mM）を高い溶液安定性を示す。少しツーなしDPBSバッファー中で22℃で21日後に架橋ヒドロゲル足場の損失がある、DPBSバッファに放出されたタンパク質の総量はわずかに100と仮定してスプライシングされたインテヒドロゲルからの理論量を（超えるとトランス-スプライシング効率インテイン％）（ 図3A）。デンシトメトリーは、ヒドロゲルの形成の間に、 トランス -スプライシング反応が（ 図1C）〜80％効率的であったことを明らかにした。 SDS-PAGEゲル分析侵食架橋ヒドロゲル足場の損失が最小であることを確認する、ヒドロゲルの周囲の緩衝液（ 図3B、バンドJ）中に存在した唯一のトランス -スプライス産物の微量ことを示した。ハイドロゲルの周囲のバッファ内の主要なタンパク質存在するインテスプライシングされています。浸食の肉眼で見える兆候は観察されなかった3ヶ月を超える（ 図3A入口 ）に室温で水溶液中に浸漬静置ヒドロゲル。ヒドロゲルは、37℃（ 図3C）で、両方の酸性および塩基性の緩衝液（ 図3D）にも非常に安定している。
タンパク質の固定化を容易にするために、タンパク質対およびそのペプチドリガンドは、ヒドロゲル足場内に目的のタンパク質のドッキングのために使用した。我々は、に組み込むためのドッキングステーションペプチド（DSP）のような、目的のタンパク質、およびそのリガンド（SH3のLIG）への融合のためのドッキングタンパク質（DP）のようなアダプタータンパク質CRKからSH3タンパク質のSrc相同性3ドメインを選択したヒドロゲル足場。この相互作用のペアがあるため、比較的小さな分子サイズ（SH3用56 AAとのSH3 LIG用11 AA）と高い親和性（K dは =0.1μM）17,18を選択されました。 SH3のLIGは、C-SH3 LIGを形成するためにNpuCとCutAの間に挿入した（ 表1）。 SH3タンパク質は、SH3-GFPを形成するために、モデル標的球状タンパク質、緑色蛍光タンパク質（GFP）のN末端に融合した。プロトコル（セクション5、 図4A）に記載された方法は、1.2mMのトランス -スプライスヒドロゲル骨格ビルディングブロックおよび1.2mMのGFPを含有するハイドロゲルが得られる。 GFP-含有ヒドロゲルは、DPBSバッファー中、21日後〜35％の総タンパク質損失でGFP（ 図4B）を欠くヒドロゲルに類似した安定性を示した。エロージョン·バッファ中に存在するタンパク質の大部分は、切断されたインテインであった。 SH3のLIGを含むヒドロゲルからSH3-GFPの浸出率は、3週間後〜SH3のLIG（同じ時間に 、 図4Cの> 70％のタンパク質の損失）を欠くヒドロゲルからのものより著しく小さい30％である。ヒドロゲル中の固定化されたSH3-GFPは紫外線下で点灯します。 図4Dは、ドッキングステーションpeptiを含むヒドロゲルに見られるようにSH3のLIGを欠いたハイドロゲルは、本質的に非蛍光なるがデのSH3 LIGは、3週間後にGFP蛍光の大部分を保持している。これは、より高い親和性DP / DSP対の使用は、さらに固定化されたタンパク質の浸出速度を減少させることができることが期待される。
この実験では、GFPを標的タンパク質として使用したが、任意のDP-タグ化タンパク質は、好都合には、このヒドロゲル中に固定化することができる。このように、インテイン媒介タンパク質ヒドロゲルは、タンパク質固定化のための一般的な足場を提供する必要があります。固定化されたGFPの密度は、この研究で実証〜ヒドロゲルの33モル％である。複数のDSPヒドロゲルビルディングブロックに組み込まれる場合、より高い固定化密度は、潜在的に達成することができる。
次に、HRP酵素は、有機溶媒に生体触媒を支持する能力を実証するために、タンパク質、ヒドロゲルに組み込まれた。酵素活性は、酸化的カップリングをモニターすることによって測定した
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図1。インテイン媒介タンパク質ハイドロゲル 。 （A）両末端架橋タンパク質と拡張タンパク質鎖（J）の形成をトリガインテイントランス -スプライシング反応の回路図である。架橋剤の複数のJ鎖タンパク質からのタンパク質と非共有的に会合し、インテイン媒介タンパク質連結の際に、ヒドロゲルの特性を有する高度に架橋されたタンパク質ネットワークの形成を誘導する。 NpuN / C：N-/C-fragmentインテイン。 （B）精製されたNの混合およびC（8.3％w / v）の高度に架橋されたヒドロゲルネットワーク（1.6mMのJ）の形成をもたらす。前と混合後、精製N及びCビルディングブロック（C）SDS-PAGE分析を示す。 「N + C」は、1.6 mMのハイドロゲルから直接採取したサンプルに対応しています。 "*"インテインのC-末端切断siが表すド反応生成物。各バンドの強度は、「数量One」ソフトウェアにおいて「トレースモジュールを用いて定量した。バンド強度はモル当量を得るために、タンパク質分子量で割った。 トランススプライシング効率（〜80％）同一車線内の製品J及び未反応N / Cの量から計算した。アメリカ化学会のジャーナルから許可を得て転載。（DOI：10.1021/ja401075s） 拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。
図2。タンパク質構築物のプラスミドマップ 。 （A）CutA-NpuN、（B）NpuC-S-CutA及び（C）SH3-GFP（<強い>表1）T7プロモーターの制御下にいるpET26Bベクターにクローニングした。 拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。
図3。 DPBS中インテイン媒介タンパク質ヒドロゲルの安定性。22℃で、1.6 mMのハイドロゲルの（A）の侵食プロファイル点線が切断されたインテインの理論的質量を示す。入口は、室温で3ヶ月後にDPBS中邪魔されずにハイドロゲルを示しています。ヒドロゲルの周囲の緩衝液（B）SDS-PAGE分析を示す。ヒドロゲルは（A）中に浸漬されたバッファの全てのサンプルをプールし（合計7.5ml）溶液および10kDの限外濾過を介して75倍に濃縮した前ゲルローディングに対する膜のJ： トランス-スプライス産物Nインテ：未CutA-NpuN NpuN：N-インテイン断片をスプライシング。未反応のCおよびスプライシングNpuCは、それぞれ少量と小型サイズのためのゲル（4 kDaの）には表示されません。アスタリスクは、正体不明のバンドを示している。異なる温度でインキュベートしたヒドロゲルの（C）侵食プロファイル。 （D）2異なるpHでインキュベートヒドロゲルの侵食プロファイル。アメリカ化学会のジャーナルから許可を得て転載。（DOI：10.1021/ja401075s） 拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。
図4。インテイン仲介ヒドロゲルは、機能的な球状タンパク質の固定化をサポートしています。モデル球状タンパク質として、GFPを用いたタンパク質固定化の（A）の回路図。 DSP-含有ヒドロゲルビルディングブロックは、第一ビルディングブロックへの標的タンパク質ローディングのためDP-融合した標的タンパク質と混合される。相補的インテイン断片を含有するヒドロゲルビルディングブロックは、固定化されたGFPを有するヒドロゲルを得た混合物に添加される。 （B）SH3-GFPの1:1のモル比を含有するヒドロゲルの総タンパク質浸食プロファイル。点線はスプライシングインテインの理論質量を表しています。エラーバーは、2つの独立した実験の標準偏差を表す。 （C）DSPとないヒドロゲルからSH3-GFPのプロファイルを浸出。 （D）GFPの画像は直ちにヒドロゲル形成後および21日後にUV曝露下でヒドロゲルを含む。 DOIアメリカ化学会誌（から許可を得て転載：10.1021/ja401075s） 拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。
図5。西洋ワサビペルオキシダーゼ（HRP）に捕捉されたインテイントリガータンパク質ハイドロゲルは、有機溶剤、n-ヘプタン中のHRP触媒反応を促進する。有機溶媒中で、HRPにより触媒（A）のモデル反応。 （B）小さな断片に破壊し、10分および30分（左）とDPBS緩衝液中の非固定化HRPの同量（右）との対照実験のための反応カクテル中でインキュベートされた後、カプセル化されたHRPを含有するハイドロゲルの写真。 （C）製品の形成は、546 nmでの吸光度によってモニターした。アメリカ西部のジャーナルから許可を得て適応化学会することができます。（DOI：10.1021/ja401075s）は拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。
表1。本研究で使用したタンパク質構築物。
| 省略名 | タンパク質配列 | MW（kDa）の |
| CutA-NpuN（N） | CutA-EAC-（GGGGS）2-AS-NpuN-HHHHHH | 26.3 |
| NpuC-S-CutA（C） | NpuC-CFNKLYRDPMG - [（社）3、PEG] 10 -ARMPYV-C UTA- HHHHHH | 26.1 |
| NpuC-S-SH3のLIG - CutA（C-SH3のLIG） | NpuC-CFNKLYRDPMG - [（社）3、PEG] 10 -ARMPYVGS- PPPALPPKRRR - （GGGGS）2-AS-CutA-HHHHHH | 28.3 |
| SH3-GFP | SH3-KL-（GGGGS）2-AS-GFP-HHHHHH | 34.5 |
（：10.1021/ja401075s DOI）アメリカ化学会のジャーナルから許可を得て転載。
表2。バッファー成分。
| バッファA | 500mMのNaCl、10mMトリス-HCl、pH8.0 |
| バッファDA | 500mMのNaCl、8M尿素、10mMトリス-HCl、pH8.0 |
| 緩衝液B | 500mMのNaCl、50mMのNaPOi液、pH6.0 |
| DPBS | ダルベッコのPBS、137.9のNaCl、2.7mMのKCl、1.5mMのKH 2 PO 4、8.1のNa 2 HPO 4、pH7.4中 |
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Discussion
本研究では、安定性の高いインテイン媒介タンパク質ヒドロゲルの合成を示した。分割の使用は、条件付きインテインつの液相の成分の混合に対応して形成されるヒドロゲルを可能にする。具体的には、分割インテイン共有結合ターンでヒドロゲルに自己アセンブル単位を架橋することにより隣接されるポリペプチドユニットを得、 トランス -スプライシング反応を介して2つの液相のビルディングブロックを連結する。ヒドロゲルの混合により誘導される形成は、クロマトグラフィー精製カラムのゲル媒介詰まりが発生する可能性が単一成分のタンパク質ヒドロゲルの合成における技術的な問題をバイパスします。さらに、余分な化学誘導物質および/または物理的なトリガーを必要とせずに、生理学的条件下でヒドロゲルを形成する。
インテイン媒介ヒドロゲルは、酸性および塩基性の両方のバッファであり、生理学的な温度で高い安定性を保持します。ヒドロゲルはw iを形成することができるより良好な機械的安定性を有する番目は、それぞれの個々のビルディングブロックの0.8mMの（データは図示せず）のような小さな、より高いタンパク質濃度（〜1.6 mM）を収率ヒドロゲル。ヒドロゲルの高い安定性は、架橋剤としての1の使用）非常に安定した三量体タンパク質、CutA、に起因する、および2）インテイン異なる共有結合架橋剤を接合する。 SDS-PAGEゲルの濃度測定分析は、入力されたタンパク質の80％が正常に分割インテイン-触媒トランス-スプライシング反応を受け〜たことを示した。
ヒドロゲル形成のために、個々のビルディングブロックは、第一〜100ミリグラム/ mlに濃縮する。例えば、DTTなどの還元剤は、分子間ジスルフィド結合の形成を防止するために、タンパク質濃度段階の間に存在する必要がある。還元剤の非存在下で、濃縮された個々のヒドロゲルビルディングブロックは、時にはヒドロゲル様材料を形成することができる。緩衝液中及び/又は存在下で浸漬した場合しかし、このゲル状材料は、急速に溶解還元剤。
最大の安定性を有するヒドロゲルを得るためには、2つのヒドロゲル構築ブロックのモル比が1:1であることを確認することが重要である。余分なビルディングブロックは、架橋されず、ヒドロゲルの機械的特性に影響を与えることができる。濃縮したタンパク質を等分し、凍結融解の繰り返しを最小限にするために個々に格納する必要がある。
また、有機溶媒と互換性の生体触媒としてインテイン媒介タンパク質ヒドロゲルの使用を実証した。具体的には、HRPが製品に基板の基板と、正常な変換を含むn-ヘプタンに浸漬した酵素を組み込むヒドロゲルが観察された。タンパク質ヒドロゲルは、ヒドロゲルの高度に水和環境によって提供される有機溶剤媒介変性から保護する可能性が高い有機溶媒中の生体触媒のための効果的な足場として機能します。
目の限界の一つ酵素固定化技術がドッキングペプチド（DP）を用いて標的タンパク質を融合する必要があることである。この変形は、いくつかの標的タンパク質の活性および溶解度に影響を与え、従って、DP-タグ化タンパク質構築物のケースバイケースの最適化を必要とし得る。また、タグ付けされたタンパク質の少量のドッキングステーションペプチド（DSP）を含む1週間後にヒドロゲルをから浸出。固定化されたタンパク質の安定性は、DSP / DP対の親和性によって影響を受ける。より良好な固定化効率を達成するために、より高い親和性DSP / DP対が必要となる。低いプラトー貯蔵弾性率（100〜200キロパスカル）9による最後に、このヒドロゲルを呈する比較的弱い機械的特性。プラトー貯蔵弾性率は、架橋剤及び中間ブロック19の両方の構造に影響される。現在のヒドロゲルにおいて、三量体タンパク質は、架橋剤として使用した。より高い多量体状態で架橋タンパク質の使用は、潜在的ヒドロゲルプラトー目を増加させることができるオラージ弾性率とその機械的性質。
要約すると、我々は条件付きで2液相タンパク質のビルディングブロック、インテ分割の半分を含む各の混合時に形成し新たなタンパク質ヒドロゲルの合成と評価を報告する。インテイン媒介タンパク質のヒドロゲルは、合成酵素反応、有機合成、注射薬物送達、および組織工学における応用の可能性を有望な新素材を表しています。
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Disclosures
競合する経済的利益は存在しません。
Acknowledgments
著者らは、プラスミドKanR-IntRBS-NpuNC-CFNは11の彼の種類のギフト用プラスミドpQE9交流10 ATRP 12、博士トム·ミューア（プリンストン大学）の彼の種類のギフトのためのデビッドTirrell（カリフォルニア工科大学）を承認したいと思いますプラスミドの彼の種類のギフトpJD757 13用プラスミドたpET30-CutA-TIP1 10、博士ジェイD.キースリング（UCバークレー）の彼の種類のギフトのための博士武久松田（テクノロジー、白山、石川県の金沢工業大学） 。この作品は、全米科学財団キャリア、米国空軍YIPとノーマン·ハックマン先進研究プログラムによって部分的にサポートされていました。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Phusion High Fidelity DNA polymerase |
New England BioLabs | M0530S |
|
| Competent Escherichia coli BL21 (DE3) |
New England BioLabs | C2527I |
|
| Luria Bertani |
VWR | 90003-350 |
|
| Bacto Agar Media |
VWR | ||
Kanamycin sulfate |
VWR | ||
| IPTG |
VWR | EM-5820 |
|
| Imidazole |
VWR | EM-5720 |
|
| Urea |
VWR | EM-9510 |
|
| Dithiothreitol (DTT) |
Fisher | BP172-5 |
|
| Protease Inhibitor cocktail |
Roche Applied Science | 11836153001 |
|
| DPBS |
VWR | 82020-066 |
|
| Brilliant Blue R |
Acros Organics | A0297990 |
|
| Sodium Azide |
Fisher | AC190380050 |
Caution, highly toxic |
| Horseradish peroxidase |
Sigma | P8125-5KU |
|
N,N-dimethyl-p-phenylene diamine |
Fisher | AC408460250 |
Caution, highly toxic |
| phenol |
Fisher | AC149340500 |
Caution, highly toxic |
tert-butyl hydroperoxide |
Fisher | AC180340050 |
Caution, highly toxic |
| n-heptane |
Acros Organics | 120340010 |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Shaker/Incubator |
Fisher Scientific | Max Q 6000 |
|
| Centrifuge |
Sorvall | RC 6 |
|
| Sonicator |
QSonica | Misonix 200 |
|
| Ultrafiltration Tubes |
Amicon Ultra | UFC903024 |
|
| Ni Sepharose High Performance HisTrap column |
GE Healthcare Life Sciences | 17-5248-01 |
|
| HiTrap SP Sepharose FF ion exchange column |
GE Healthcare Life Sciences | 17-5156-01 |
|
| Plate reader |
Molecular Devices | SpectraMax Gemini EM |
References
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