Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Баллистической трансформации флуоресцентного Tagged гена в оппортунистических грибковых возбудителя

10K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/52666

⸱

19 марта 2015 г.

 ,  ,  , 

В этой статье

Краткое содержание

Баллистической трансформации является метод, используемый для генерации стабильной интеграции ДНК в геном оппортунистических neoformans Cryptococcus патоген через гомологичной рекомбинации. Покажем баллистической трансформации в конструкции, имеющей ацетат ген, кодирующий слитый киназы в флуоресцентной метки mCherry в C. neoformans.

Аннотация

Базидиального Cryptococcus neoformans, инвазивных патогенных микроорганизмов центральной нервной системы, является наиболее частой причиной грибкового менингита во всем мире, в результате чего более 625 000 человек в год по всему миру. Хотя электропорации была разработана для преобразования плазмид в Cryptococcus, только биолистическую доставка обеспечивает эффективное средство для преобразования линейной ДНК, которые могут быть интегрированы в геном путем гомологичной рекомбинации.

Ацетат было показано, что основным продуктом ферментации при криптококковой инфекции, но значение этого, пока не известно. Бактериальные путь состоит из ферментов, ксилулозо-5-фосфат / фруктозо-6-фосфат phosphoketolase (Xfp) и ацетат киназа (ACK) является одним из трех возможных путей ацетата производства в С neoformans. Здесь мы демонстрируем баллистической трансформации в конструкции,,который ген, кодирующий Ack слит с флуоресцентной меткой mCherry, в С. neoformans. Мы затем подтвердите интеграции слияния ACK -mCherry в локус ACK.

Введение

Cryptococcus neoformans, инвазивный условно-патогенный микроорганизм центральной нервной системы, является наиболее частой причиной грибкового менингита, приводящего к более чем 625 000 смертей в год во всем мире 1. Было показано, что ацетат является основным продуктом ферментации во время криптококковой инфекции 2,3,4, а гены, кодирующие ферменты из трех предполагаемых путей, продуцирующих ацетат, активируются во время инфекции 5. Это говорит о том, что производство и транспортировка ацетата могут быть необходимой и обязательной частью патогенного процесса; Однако значение этого до сих пор не понято. Одним из возможных путей производства ацетата является ксилулоза-5-фосфат/фруктоза-6-фосфат-фосфокетолаза (Xfp) - ацетаткиназа (Ack), путь, ранее считавшийся присутствующим только в бактериях, но недавно идентифицированный как у эуаскомицетов, так и у базидиомицетовых грибов, включая C. neoformans 6.

Чтобы определить локализацию этих ферментов этого пути в клетке, конструкция, несущая ген устойчивости к неомицину вниз по потоку слияния гена ACK с флуоресцентной меткой mCherry (ACK:mCherry:Neo), будет введена в C. neoformans с использованием хорошо зарекомендовавшего себя метода биолистической трансформации 7,8. Хотя электропорация является эффективным методом трансформации плазмид, которые будут поддерживаться в качестве эписом, в Cryptococcus 9, она не полезна для создания стабильных гомологичных трансформантов 8. Только биологическая доставка с помощью генной пушки обеспечивает эффективные средства для трансформации линейных ДНК, которые будут интегрированы в геном путем гомологичной рекомбинации. Например, Edman et al. показали, что из трансформантов, полученных в результате электропорации плазмидного селективного маркера URA5 в мутанты C. neoformansura5, только от 0,001 до 0,1% трансформантов были стабильными. Chang et al. достигли эффективности стабильного преобразования всего 0,25% с использованием электропорации для восстановления производства капсул у акапсулярного мутанта 10. В отличие от электропорации, было показано, что биолистическая трансформация приводит к стабильной эффективности трансформации от 2 до 50% в зависимости от гена, который изменяется 7,8,11.

Этот визуальный эксперимент обеспечит пошаговую демонстрацию биолистической трансформации линейной конструкции ACK:mCherry:Neo DNA в C. neoformans, а также опишет, как подтвердить его правильную интеграцию через гомологичную рекомбинацию в локус ack. Показанный здесь протокол является модификацией метода, разработанного в лаборатории Perfect 8.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

ПРИМЕЧАНИЕ: Общая схема этого протокола указано на рисунке 1.

1. C. neoformans Подготовка

  1. Для каждой реакции трансформации, вырастить 2-3 мл O / N культуру C. neoformans в YPD среде при 30 ° С встряхивании при 250 оборотах в минуту.
  2. Центрифуга O / N культуру в течение 5 мин при 900 х г при 10 ° С и отбросить супернатант.
  3. Ресуспендируют каждый осадок клеток в 300 мкл дрожжей пептон декстроза (YPD) среде.
  4. Используя стеклянные шарики, аккуратно распространяется 300 мкл промытой клеточной суспензии на YPD агаре, содержащем 1 М сорбит.
  5. Разрешить пластин высохнуть при комнатной температуре в течение 3-4 ч.

2. Золото микроносителю Подготовка

  1. Ресуспендируют 0,25 г 0,6 мкм золотым бисером в 1 мл DDh 2 O, центрифуги в течение 1 мин при 900 мкг для осаждения бусы, и удалить супернатант.
  2. Ресуспендируют золотые бусины в 1 мл 100% -ного этанола.
  3. Распределить шарики в 4 пробирки, 250 мкл каждого из них и добавить 750 мкл 100% -ного этанола.
  4. Хранить золото шарик аликвоты при 4 ° С.

3. Подготовка ДНК

  1. Подготовка оранжевые диски macrocarrier биолистическую, погружая их в 100% этаноле с использованием щипцов. Место диски в большом чашку Петри, содержащую drierite высохнуть (убедитесь, что drierite не касается дисков).
  2. После высыхания, нажмите macrocarrier диски в держатели серебро дисков (ранее протирать 100% этанола).
  3. Vortex золотым бисером (полученного, как в шаге 2) и аликвоту 12 мкл в 1,5 мл микроцентрифужных трубки, одну трубку в трансформации.
  4. Добавить в каждую пробирку с тем: 2 мкг ДНК (предпочтительно 2 мкл 1 мкг / мкл ДНК) 10 мкл 2,5 М CaCl 2, и 2 мкл 1 М спермидина свободного основания.
  5. Установка отрицательный контроль, как на стадии 3,4, но без ДНК.
  6. Vortex каждая трубка и инкубировать при комнатной температуре в течение5 мин. Аккуратно вылить каждую пробирку иногда ресуспендировать осевшие шарики во время инкубации.
  7. Побочные трубы на 225 мкг в течение 30 сек для осаждения ДНК-покрытием золотым бисером. Осторожно удалите супернатант (с помощью пипетки или аспирации) и выбросьте.
  8. Ресуспендируйте шарики полностью в 600 мкл 100% этанола, медленно пипетки вверх и вниз.
  9. Спин трубы на 225 мкг в течение 30 сек для осаждения шариков без упаковки. Осторожно снимите и выбросьте супернатант.
  10. Ресуспендируют ДНК покрытием золотые шарики в 8 мкл 100% этанола, медленно пипетированием вверх и вниз.
  11. Пипетки ДНК покрытием золотые шарики на центре баллистической диска диаметром в 1 см и дать высохнуть.
    Примечание: сушили золотой круг видно на центре баллистической диска указывает, что достаточной концентрации золота шариков присутствует.
    ПРИМЕЧАНИЕ: macrocarrier загруженных дисков с помощью ДНК-покрытием золотым бисером готовы для использования с генной пушки.

4. Operating в генной пушки

  1. Включите вакуумный насос.
  2. Включите газообразного гелия, повернув ручку против часовой стрелки до давления примерно 2200 фунтов на квадратный дюйм достигается на манометр.
  3. Включите генной пушки, щелкая красный выключатель слева.
  4. Будьте уверены, что скорость потока для вакуума и вентиляционных настраиваются таким образом вакуум достигнет 28 дюймов ртутного столба в течение 15 сек.
  5. Будьте уверены, расстояние между разрывным диском и macrocarrier примерно 3/8 дюйма.
  6. Очистите всю камеру, вытирая с этанолом.
  7. Погрузите разрывные мембраны в 100% этанола. Дайте высохнуть на стерильную поверхность (например, чашка Петри).
  8. Используйте динамометрический ключ, чтобы ослабить фиксатор разрыв диска. Вставьте чистую разрывного диска в держатель. Винт держателя разрывной диск на место и затяните динамометрическим ключом, поворачивая его один раз вправо.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Разрыв диски будут заменены после каждого выстрела.
  9. Погрузитесь-йе сетка фильтра в 100% -ном этаноле. Дайте высохнуть на стерильную поверхность (например, чашка Петри).
  10. После высыхания, поместите экран мыть сетки на белый пластик с монтажной панелью. Поместите macrocarrier диска сторону держатель ДНК вниз в диск камеры. Винт на серебряной крышкой и поместите монтажную пластину в высоком слот.
    ПРИМЕЧАНИЕ: сетчатый экран будет заменен после каждого выстрела.
  11. Поместите YPD агаровую пластину, содержащую 1 М сорбит на нижней пластине.
  12. Завершение отсека и зафиксируйте на месте.
  13. Нажмите и удерживайте среднюю красный переключатель вверх заниматься вакуум и позволить вакуум, чтобы достигнуть 28 дюймов ртутного столба. После того, как надлежащий уровень вакуума достигается, переместите этот переключатель в нижнее положение. Когда все будет готово, нажмите и удерживайте красную кнопку справа, чтобы стрелять. Когда разрыв диска появляется, сразу же отпустите кнопку пожара и нажмите среднюю красный переключатель в среднем положении, чтобы выразить камеру до 0 фунтов на квадратный дюйм.
  14. Очистите разрыв диска мусор и выключите генной пушки. Затем выключите heliuм газа, повернув ручку по часовой стрелке и, наконец, выключите вакуумный насос.

5. Покрытие трансформированных клеток

  1. Разрешить преобразование пластины, чтобы сидеть при комнатной температуре в течение 4 часов, чтобы клетки для восстановления.
  2. Пипеток 700 мкл YPD на тарелку. Используйте сотовый скребок, чтобы мягко очистить клетки прочь агара и пипетки жидкости в стерильный 1,5 мл пробирке. Повторите этот шаг, чтобы убедиться, что все клетки были извлечены из пластины.
  3. Гранул клетки при 225 мкг в течение 30 сек. Снимите и выбросьте супернатант.
  4. Ресуспендируют осадок в 500 мкл YPD.
  5. Внесите 100 мкл клеточной суспензии на центре + плит YPD антибиотиков и распространяется, используя стеклянные бусы.
  6. Оставьте перевернутые тарелки при комнатной температуре в течение 3-4 дней. Как появляются колонии, патч на новой YPD + антибиотиков пластин.

6. Геномная выделения ДНК для ПЦР

ПРИМЕЧАНИЕ: Это модифицированная версия с использованием реагентас из комплекта очистки ДНК (табл материалов).

  1. Выращивают культуры в 5 мл каждого из С neoformans трансформанты в YPD жидкости при 30 ° C встряхивании при 250 оборотах в минуту O / N.
  2. Гранул 3 мл клеток при 900 мкг, и ресуспендируют в 600 мкл ядер решения лизиса.
  3. Добавить суспензии в новой 1,5 мл микроцентрифужных трубки с 200 мкл 0,5 мм кислоты промывают стеклянные шарики.
  4. Однородный в течение 45 секунд в мини beadbeater при температуре окружающей среды, прохладном трубки на льду, и повторить.
  5. Разрешить образца оседать на льду в течение 2 мин и передавать супернатант в новую пробирку 1,5 мл. Добавить 200 мкл раствора осаждения белка в каждую пробирку, (100 мкл на каждые 600 мкл супернатанта восстановленного) и вихрь энергично в течение 20 сек.
  6. Разрешить образцы поселиться на льду в течение 5 мин и центрифуге при 11000 мкг в течение 3 мин.
  7. Передача супернатант в чистую пробирку, содержащую 1,5 мл 300 мкл RT изопропанола. Аккуратно перемешать инверсии.
  8. Центрифуга образцы на 11000 мкг в течение 2 мин, осторожно удалить супернатант, и слейте трубы на бумажные полотенца.
  9. Добавить 300 мкл RT 70% этанола в каждую пробирку и осторожно инвертируют, чтобы промыть осадок.
  10. Центрифуга образцов при 11000 мкг в течение 2 мин и осторожно удалите всю этанола.
  11. Слейте трубки на чистые бумажные полотенца, и позволяют гранулы высохнуть на воздухе в течение 10-15 мин.
  12. Добавить 50 мкл регидратации ДНК раствора и 1,5 мкл раствора РНКазы на каждую гранулу и вихря.
  13. Центрифуга образцы в течение 5 секунд, чтобы удалить всю жидкость из колпачка.
  14. Инкубируйте образцы при 37 ° С в течение 15 мин.
  15. Увлажняет ДНК путем инкубации образцов при 65 ° С в течение 1 часа.
  16. Количественная ДНК спектрофотометрически путем измерения оптической плотности при 260 нм (260 считывания 1,0 эквивалентно ~ 50 мкг / мл двухцепочечной ДНК), и использовать до 200 нг в каждой реакции ПЦР.

7. РНК Изоляция дляРевертазам-ПЦР.

  1. Использование очистки РНК комплект (смотрите таблицу материалов), следовать инструкциям производителя, чтобы изолировать РНК из клеток дрожжей при использовании minibeadbeater.
  2. Количественная концентрации РНК путем измерения оптической плотности при 260 нм (260 считывания 1,0 эквивалентно ~ 40 мкг / мл одноцепочечной РНК).
  3. Использование комплекта RT-PCR (смотрите таблицу материалов), следовать инструкциям производителя, чтобы установить RT-PCR реакции с примерно 1 мкг РНК. Для результатов, полученных в этом исследовании, использование праймеров, перечисленных в таблице 1.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Успешный баллистической трансформации С. neoformans можно получить, пройдя по этой схеме протокола (рисунок 1). С баллистической трансформации, успешно стрелять из покрытых золотом шариков обозначено золотое кольцо видимой на пластине после выстрела ДНК (Фигура 2А). Колонии должны появляться пределах от 4 до 5 дней, когда оставляют при комнатной температуре после посева клеток восстановленные из сорбита пластин YPD + 1M на селективной среде. Преобразование 2 мкг ДНК должно прив...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Используя этот протокол, можно осуществить биолистическую трансформацию, при которой линейная ДНК интегрируется в желаемый локус в геноме Cryptococcus neoformans путем гомологичной рекомбинации. Определенные шаги в протоколе могут оказать существенное влияние на эффективность/результативность преобразования. Для успешной трансформации крайне важно, чтобы ДНК, используемая в побеге, имела концентрацию не менее 1 мкг. Тем не менее, объем ДНК, добавляемой к золотым бусинам, может быть увеличен с вероятностью того, ...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Нам нечего раскрывать.

Благодарности

Эта работа была поддержана награды от Национального научного фонда (премии # 0920274) и Южная Каролина опытная станция проекта SC-1700340. Эта статья isTechnical Вклад No. 6283 из опытной станции Университет Клемсона. Авторы благодарят доктора Лукаш Kozubowski за полезные советы в развитии этого итогового протокола и д-р Шерил Ingram-Смит, Кэти Гленн, и Грейс Kisirkoi их критическое прочтение рукописи.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
0,6 μ m Золотые бусиныBio-Rad165-2262http://www.bio-rad.com
Безспермадиновая основаSigma- AldrichS0266https://www.sigmaaldrich.com
G418 - Сульфат (Неомицин)Золото БиотехнологияG-418-10www.goldbio.com
ГигромицинЗолото БиотехнологияH-270-1www.goldbio.com
1350 фунтов на квадратный дюйм Разрывные дискиBio-Rad165-2330http://www.bio-rad.com
Остановочные экраныBio-Rad165-2336http://www.bio-rad.com
Макроносители дискиBio-Rad165-2335http://www.bio-rad.com
YPD BrothBecton Dickinson & Co.242820www.bd.com
АгарБектон Дикинсон и Ко.214530www.bd.com
SorbitolFisher ScientificBP439http://www.fishersci.com
PDS-1000/He SystemBio-Rad165-2257http://www.bio-rad.com
МикроскопZeissAxiohttp://www.zeiss.com/microscopy
KOD One Step PCR KitEMD Millipore71086-4http://www.emdmillipore.com
One Step RT-PCR KitQiagen210212www.qiagen.com
Wizard Набор для очистки геномной ДНКPromegaA1120www.promega.com
RNeasy Mini KitQiagen74104www.qiagen.com
Mini Beadbeater - 1BioSpecs3110BXhttp://www.biospec.com
Microfuge 18Centrifuge Beckman CoulterF241.5Pwww.beckmancoulter.com
Микропланшетный спектрофотометрBioTekEPOCHwww.biotek.com

Ссылки

  1. Price, M. S., et al. Cryptococcusneoformans requires a functional glycolytic pathway for disease but not persistence in the host. MBio. 2, e00103-e00111 (2011).
  2. Bubb, W. A., et al. Heteronuclear NMR studies of metabolites produced by Cryptococcusneoformans in culture media: identification of possible virulence factors. Magn Reson Med. 42, 442-453 (1999).
  3. Himmelreich, U., et al. Identification of metabolites of importance in the pathogenesis of pulmonary cryptococcoma using nuclear magnetic resonance spectroscopy. Microbes Infect. 5, 285-290 (2003).
  4. Wright, L., et al. Metabolites released by Cryptococcusneoformans var. neoformans and var. gattii differentially affect human neutrophil function. Microbes Infect. 4, 1427-1438 (2002).
  5. Hu, G., Cheng, P. Y., Sham, A., Perfect, J. R., Kronstad, J. W. Metabolic adaptation in Cryptococcusneoformans during early murine pulmonary infection. Mol Microbiol. 69, 1456-1475 (2008).
  6. Ingram-Smith, C., Martin, S. R., Smith, K. S. Acetate kinase: not just a bacterial enzyme. Trends Microbiol. 14, 249-253 (2006).
  7. Davidson, R. C., et al. Gene disruption by biolistic transformation in serotype D strains of Cryptococcus neoformans. Fungal Genet Biol: FG & B. 29, 38-48 (2000).
  8. Toffaletti, D. L., Rude, T. H., Johnston, S. A., Durack, D. T., Perfect, J. R. Gene transfer in Cryptococcusneoformans by use of biolistic delivery of DNA. J. Bacteriol. 175, 1405-1411 (1993).
  9. Edman, J. C., Kwon-Chung, K. J. Isolation of the URA5 gene from Cryptococcusneoformans var. neoformans and its use as a selective marker for transformation. Mol Cell Biol. 10, 4538-4544 (1990).
  10. Chang, Y. C., Kwon-Chung, K. J. Complementation of a capsule-deficient mutation of Cryptococcus neoformans restores its virulence. Mol Cell Biol. 14, 4912-4919 (1994).
  11. Del Poeta, M., et al. Topoisomerase I is essential in Cryptococcusneoformans: role In pathobiology and as an antifungal target. Genetics. 152, 167-178 (1999).
  12. McClelland, C. M., Chang, Y. C., Kwon-Chung, K. J. High frequency transformation of Cryptococcusneoformans and Cryptococcusgattii by Agrobacteriumtumefaciens. Fungal Genet Biol:FG & B. 42, 904-913 (2005).
  13. Gan, W. B., Grutzendler, J., Wong, W. T., Wong, R. O., Lichtman, J. W. Multicolor 'DiOlistic' labeling of the nervous system using lipophilic dye combinations. Neuron. 27, 219-225 (2000).
  14. Nicola, A. M., Frases, S., Casadevall, A. Lipophilic dye staining of Cryptococcusneoformans extracellular vesicles and capsule. Eukaryot Cell. 8, 1373-1380 (2009).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Больше статей

Генная пушкафлуоресцентная меткагомологичная рекомбинацияфлуоресцентная микроскопияПЦР-анализзолотые микроносителидавление гелияагар YPD