Abstract
Gravidanza è caratterizzata dalla infiltrazione di leucociti nei tessuti riproduttivi e all'interfaccia materno-fetale (basalis decidua e decidua parietalis). Questa interfaccia è il sito anatomico di contatto tra materna e tessuti fetali; Pertanto, è un sito immunologica di azione durante la gravidanza. Leucociti infiltranti all'interfaccia materno-fetale svolgono un ruolo centrale in impianto, manutenzione di gravidanza, e la tempistica di consegna. Pertanto, caratterizzazioni fenotipiche e funzionali di questi leucociti forniranno informazioni sui meccanismi che portano a disturbi della gravidanza. Diversi protocolli sono stati descritti per isolare leucociti infiltranti dai basalis decidua e parietalis decidua; Tuttavia, la mancanza di uniformità nei reagenti, enzimi, e tempi di incubazione rende difficile confrontare questi risultati. Descritto qui è un nuovo approccio che combina l'uso di dolci diss meccanici ed enzimaticitecniche ociation per preservare la vitalità e l'integrità dei marcatori extracellulari e intracellulari nei leucociti isolati dai tessuti umani all'interfaccia materno-fetale. A parte immunofenotipizzazione, coltura cellulare, e lo smistamento delle cellule, le future applicazioni di questo protocollo sono numerose e varie. Seguendo questo protocollo, i leucociti isolati possono essere utilizzati per determinare la metilazione del DNA, l'espressione di geni bersaglio, in funzionalità vitro leucociti (cioè, fagocitosi, citotossicità, la proliferazione delle cellule T, e plasticità, ecc), e la produzione di specie reattive dell'ossigeno all'interfaccia materno-fetale. Inoltre, utilizzando il protocollo descritto, questo laboratorio è stato in grado di descrivere nuove e rare leucociti all'interfaccia materno-fetale.
Introduction
La gravidanza è caratterizzato da tre fasi distinte, immunologiche: 1) impianto e placentazione precoce associata ad una risposta pro-infiammatoria (cioè, l'impianto assomiglia un 'ferita aperta'); 2) il secondo trimestre e la maggior parte del terzo trimestre di gravidanza, quando omeostasi immunitaria è ottenuta attraverso uno stato prevalentemente antinfiammatoria all'interfaccia materno-fetale; e 3) il parto, uno stato pro-infiammatorio 1-7. Le cellule immunitarie svolgono un ruolo importante nella regolazione della risposta infiammatoria all'interfaccia materno-fetale in cui la loro abbondanza e il cambiamento di localizzazione durante la gravidanza 6-9.
Negli esseri umani, l'interfaccia materno-fetale rappresenta un'area di contatto diretto tra materna (decidua) e fetale (corion o trofoblasto) tessuti. Questa interfaccia comprende: 1) la decidua parietalis che riveste la cavità uterina non coperto dalla placenta ed è in giustapposizioneal laeve corion; e 2) i basale decidua, che si trova nel piatto basale della placenta dove viene invasa da trophoblasts interstiziali 10 (Figura 1). L'intimità di queste aree di contatto crea le condizioni per l'esposizione fetale antigenica materno 11-13 sistema immunitario. Non sorprendentemente, leucociti comprendono fino al 30-40% delle cellule deciduali 8,9,14,15 in aggiunta alle cellule stromali tipici tipo e cellule ghiandolari 8,14,16. Il ruolo dei leucociti all'interfaccia materno-fetale comprende più processi che includono la limitazione del trofoblasto dell'invasione 17, rimodellamento delle arterie spirali 18,19, mantenimento della tolleranza materno 12,20, e l'avvio del lavoro 21-26. Leucociti sia del adattativa e arti innate del sistema immunitario, cioè, le cellule T, macrofagi, neutrofili, cellule B, cellule dendritiche e cellule NK, sono state identificate nei tessuti deciduali, e loroproporzioni e lo stato di attivazione hanno dimostrato di variare spazialmente e temporalmente durante la gestazione 6-10,12,14,24,27-30. Perturbazioni nella popolazione e / o la funzione dei leucociti sono associati con aborto spontaneo 31, preeclampsia 32, ritardo di crescita intrauterino 32,33, e parto pretermine 7,24. Pertanto, lo studio delle caratteristiche fenotipiche e funzionali di leucociti all'interfaccia materno-fetale umano faciliterà la delucidazione delle vie immunologiche disregolato nei disturbi della gravidanza.
Uno degli strumenti più potenti utilizzati per determinare il fenotipo e proprietà funzionali dei leucociti è citometria a flusso, la tecnologia che consente l'analisi quantitativa di più parametri contemporaneamente 34-36. Per analizzare leucociti mediante citometria di flusso, è richiesto l'isolamento dei leucociti in una cella singola sospensione. Pertanto, un metodo per separare infiltrazione leukocytes dall'interfaccia materno-fetale è necessario per studiare la loro fenotipiche e funzionali.
Diversi metodi sono stati descritti per isolare leucociti dall'interfaccia materno-fetale umano 10,14,25,27,37-39. Mentre alcuni si applicano disaggregazione meccanica 10,25,27,38, altri usano digestione enzimatica 37,40 per la dissociazione dei tessuti. Perché disaggregazione meccanica produce una resa inferiore e ridotto la vitalità 41, e la dissociazione enzimatica può influenzare la vitalità e superficie cellulare marcatore ritenzione 42, il metodo qui descritto combina dolce dissociazione meccanica con enzimatica pretrattamento per aumentare la resa dei leucociti isolati, senza compromettere la vitalità cellulare. Una simile combinazione di metodi è stato dimostrato per essere efficace nell'isolamento dei leucociti dai tessuti deciduali all'interfaccia materno-fetale 39. Pertanto, il protocollo qui descritto comporta mechadisaggregazione nica con un dissociatore tessuto automatico che aumenta la coerenza risparmiando tempo e fatica rispetto a macinazione tradizionale con bisturi contrapposti, lame di rasoio o forbici chirurgiche 10,28. L'enzima scelto per la dissociazione dei tessuti era Accutase. A differenza di uso comune collagenasi 43, dispasi 44, e 45 tripsina, Accutase (una soluzione distacco cellulare) combina proteolitici generale e le attività che contribuiscono al collagenolitica efficiente dissociazione ma delicato 46,47. Dopo la dissociazione, i leucociti sono arricchiti dalla popolazione totale delle cellule deciduali di gradiente di densità centrifugazione. Vari mezzi gradiente di densità sono stati precedentemente utilizzati, il più comune dei quali sono Percoll (una sospensione di particelle di silice colloidale) 48 e Ficoll (un polimero di saccarosio con un elevato peso molecolare sintetica) 49. L'efficienza superiore di isolamento dal polimero saccarosio è stata previously mostrato 50, e il protocollo descritto qui ulteriormente dimostra che questo supporto gradiente di densità produce una sufficientemente elevata purezza dei leucociti mononucleari.
Pertanto, il protocollo qui descritto combina la disaggregazione tessuto meccanico con dissociatore automatica tessuto, la digestione enzimatica con una soluzione distacco cellulare, e la separazione dei leucociti con un supporto gradiente di densità (1.077 + 0.001 g / ml) per isolare leucociti da tessuti deciduali umani. Questo protocollo è stato dimostrato per preservare antigeni di superficie cellulare con la vitalità cellulare. I leucociti isolati possono essere utilizzati per molteplici applicazioni che includono immunofenotipizzazione con citometria di flusso e studi funzionali in vitro.
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Protocol
Questo protocollo è appropriato per leucociti isolamento dai basalis decidua e parietalis decidua in preparazione per immunofenotipizzazione mediante citometria di flusso. Inoltre, le cellule isolate possono essere utilizzati per la separazione delle cellule, colture cellulari, isolamento dell'RNA, e citologia. Prima di lavorare con i campioni di cui al presente protocollo, l'approvazione etica umana deve essere ottenuto dal Research Comitato Etico Locale e Institutional Review Boards. La raccolta e l'utilizzazione di campioni umani a fini di ricerca sono state approvate dai Institutional Review Board dell'Istituto Nazionale Eunice Kennedy Shriver delle saluti infantili e dello sviluppo umano (NICHD), National Institutes of Health (NIH), Dipartimento di Salute e Servizi Umani (DHHS , Bethesda, MD, USA) e Wayne State University (Detroit, MI, USA). Il consenso informato scritto è stato ottenuto da tutte le donne incinte prima della raccolta di campioni di tessuto.
NOTA: Mentre si lavora con sangue animale, cellule o di pericoloAgenti OU come indicato in questo protocollo, è fondamentale che una corretta biosicurezza e le azioni di sicurezza di laboratorio essere seguite.
1. La dissezione dei tessuti umani deciduali
NOTA: La piastra basale è la base sottostante e attaccato alla placenta e rappresenta la superficie materno. Le membrane chorioamniotic comprendono sacco amniotico e il corion. La piastra basale comprende i basale decidua e il corion include i parietalis decidua (Figura 1).
- Decidua Basalis
- Sezionare un pezzo della piastra basale da un cotiledone della placenta (Figure 1A e 1B).
- Mettere su un tagliere sterile con i villi placentari rivolti verso l'alto. Il lato mostrando la villi della placenta è di solito rosso sanguinante con il tessuto peloso in apparenza. La piastra basale è liscia e pallida di colore rosso.
- Utilizzare taglienti, forbici a punta fine e pinze per rimuovere il villtessuti e vasi sanguigni unità organizzative. Mantenere il tessuto imbevuto di 1x PBS (Ca 2+ - e Mg 2+ - libera) durante il processo (Figura 1C). Raccogliere 2-3 di questi pezzi e risciacquare accuratamente con 1x PBS per rimuovere il sangue (Figura 1D).
- Decidua parietalis
- Sezionare un pezzo di membrane chorioamniotic (circa 10 cm x 10 cm, Figura 1E). Mettere sul tabellone con il corion rivolto verso l'alto. Il lato corionica contiene coaguli di sangue e di solito è giallo chiaro a colori.
- Utilizzare pinze a punta fine per rimuovere il maggior numero di coaguli di sangue il più possibile (Figura 1E). Sciacquare la membrana in sterili 1x PBS per pulire il sangue in eccesso dalla membrana fino a quando la 1x PBS è pulita.
- Utilizzare un raschietto cellulare usa e getta sterili per raschiare delicatamente lo strato deciduali dalla membrana. Applicare sterile 1x PBS sul membrane mentre il completamento di questo processo (Figura 1F). Raccogliere i tessuti deciduali e metterli in un tubo di plastica da 50 ml con sterile 1x PBS (Figura 1G).
2. meccanica disaggregazione e digestione enzimatica
- Lavare il tessuto sezionato dai basale decidua (dal punto 1.1.3) o il parietalis decidua (dal punto 1.2.3) con sterile 1x PBS in un tubo di plastica da 50 ml. Raccogliere pellets tessuto mediante centrifugazione a 300 xg per 5 minuti a temperatura ambiente.
- Aspirare il surnatante che si trova sopra il precipitato di tessuto con attenzione senza disturbare il pellet.
NOTA: A questo punto, il pellet sono molto allentati perché contengono globuli rossi. Se il volume del pellet è circa o inferiore a 3 ml, risospendere il pellet in 6 ml di soluzione di distacco cellulare pre-riscaldato a 37 ° C. Se il pellet è più grande di 3 ml di volume, aggiungere più soluzione distacco cellulare (aggiungere circa 2 volte °e volume dei campioni di tessuto). - Trasferire i tessuti omogeneizzati (basale decidua + soluzione o decidua distacco delle cellule parietalis + soluzione distacco cellulare) per un tubo C.
- Posizionare il tubo C nel dissociatore automatica ed eseguire il programma corrispondente.
NOTA: Il programma per i basale decidua corre per 17 secondi con 668 colpi totali per correre. Il programma per i parietalis decidua corre per 37 secondi con 235 colpi totali per correre. Questi programmi sono stati personalizzati per isolare leucociti dalle basale decidua oi parietalis decidua con una buona resa e la vitalità cellulare. - Dopo la disgregazione meccanica dei tessuti, digerire i tessuti con una soluzione distacco cellulare disponibile in commercio come accutase; (Un cocktail che contiene enzimi proteolitici e collagenolitica) per 45 min a 37 ° C con agitazione.
3. Isolamento di leucociti
- Dopo l'incubazione, aggiungere 10 ml di PBS 1x al DigeBustione miscela e farla passare attraverso un colino cella di 100 micron in un tubo di plastica da 50 ml. A seconda della viscosità della miscela di digestione, uno potrebbe essere necessario utilizzare diversi filtri cellulari per una miscela.
- Riempire il tubo con 1x PBS e centrifugare a 300 xg per 5 minuti a temperatura ambiente. Rimuovere la PBS 1x sopra i pellet cellulari attentamente e risospendere il pellet con 5 ml di tampone FACS ghiacciato.
NOTA: per studiare i polimorfonucleati e leucociti mononucleari insieme, andare al passo 6.1; per studiare i leucociti mononucleari, passare alla Fase 3.3. - Aggiungere 5 ml di 20% supporti gradiente di densità (1.077 + 0.001 g / ml) in una provetta di plastica da 15 ml e lentamente sovrapporre la sospensione cellulare in cima al supporto gradiente di densità. Mentre stratificazione del campione, è importante non mescolare i media gradiente di densità con la sospensione cellulare.
- Centrifugare con un rotore oscillante a 500 xg per 30 min a 4 ° C, senza il freno. E 'molto importante disattivare il freno per evitare di mescolare le cellule e lOsing il gradiente. I leucociti si trovano nell'interfaccia tra il supporto gradiente di densità e il buffer FACS.
- Rimuovere lo strato superiore che contiene il buffer e cellule detriti FACS molto attentamente con una pipetta. La banda all'interfaccia contiene le cellule mononucleate deciduali e una porzione di leucociti polimorfonucleati.
- Trasferire le cellule all'interfaccia completamente in un tubo di plastica da 15 ml. Aggiungere almeno 3 volte più volume di tampone FACS.
- Centrifugare a 300 xg per 5 minuti per pelletizzare cellule. Aspirare il surnatante e lavare le cellule con tampone FACS. Pelletizzare le cellule con un'altra centrifugazione a 300 xg per 5 minuti a temperatura ambiente.
NOTA: Per eseguire la coltura cellulare, vedere il passaggio 4. Per eseguire l'ordinamento delle cellule, vedere il passaggio 5. Per effettuare immunofenotipizzazione, vedere il passaggio 6.
4. Le domande - Colture cellulari
- Risospendere le cellule a partire dal punto 3.7 in 1 ml di terreno di coltura RPMI 1640. Contare le cellule vitali using un contatore di cellule automatico o un emocitometro e una soluzione trypan blu 0,4%.
- Aggiungere la quantità di terreno di coltura RPMI per effettuare una concentrazione cellulare di 1 x 10 6 cellule / ml. Le cellule sono ora pronti per la cultura.
5. Applicazioni - Isolamento dei macrofagi per colture cellulari primarie
- Per isolare cellule CD14 +, magneticamente etichettare le cellule dal punto 3.7 con microsfere CD14 (20 perline microlitri per 10 7 cellule), incubare per 15 min a 4 ° C, e CD14 + cellule separato da altri tipi di cellule, applicando un campo magnetico. Dopo 2 lavaggi con tampone e la rimozione del campo magnetico MACS, eluire le cellule CD14 + magneticamente a nuovo con tampone MACS.
- Dopo la centrifugazione, risospendere il pellet cellulare in RPMI 1640. terreno di coltura le cellule sono pronte per la placcatura (Figura 2).
6. Applicazioni - immunofenotipizzazione
- Per utilizzare le cellule per immunophenotyping, risospendere le cellule a partire dal punto 3.7 in 1 ml di PBS 1x. Contare le cellule vitali mediante un contatore di cellule automatico o un emocitometro e una soluzione trypan blu 0,4%.
- Etichettare le cellule con un colorante vitalità fissabile (Figura 3). Lavare le cellule due volte con tampone FACS e risospendere le cellule in tampone macchia. Incubare con un bloccante FcR per 15 minuti a 4 ° C.
- Aggiungere anticorpi coniugati a fluorocromi extracellulari. Ad esempio, in questo protocollo, utilizzare anti-CD3, anticorpi anti-CD19, anti-CD14, anti-CD15 e anti-CD56 (Tabella 1). Incubare per 30 minuti a 4 ° C al buio.
- Dopo 2 lavaggi con 1x PBS, le cellule saranno analizzate in 500 ml di buffer di macchia con un citofluorimetro. Una rappresentazione della strategia gating utilizzato per analizzare i leucociti sub-popolazioni presenti nei tessuti deciduali è mostrato in Figura 4.
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Representative Results
. La dissezione dei tessuti umani all'interfaccia materno-fetale (basalis decidua e decidua parietalis) è mostrato in Figura 1 Questa procedura prevede la dissezione della piastra basale, che comprende le basale decidua (Figura 1A - D). Il basalis decidua è ottenuto rimuovendo villi placentare (lato fetale) dalla piastra basale (Figura 1C). Il parietalis decidua viene raccolto raschiando delicatamente la membrana corionica (Figura 1E - F). La Figura 2 mostra la morfologia di macrofagi isolati (CD14 +) raccolti dai parietalis decidua in una gravidanza a termine con l'ordinamento delle cellule magnetiche. Isolato macrofagi mantenuta la capacità di rilasciare citochine dopo 3 giorni di coltura (dati non mostrati). La resa di cellule vitali isolati dai basalis decidua e parietalis decidua è mostrato in figura 3, ed è superiore al 90% in entrambi.
Figura 1. umano materno-fetale di interfaccia:. Placenta e le membrane chorioamniotic (A) Piastra basale è sezionato dalla placenta; (B) piastra basale è separata dalla villi placentare; (C) placentare villi viene tagliato dalla piastra basale compresi i basale decidua; (D) decidua basa lis è risciacquato in 1x PBS; (E) un frammento della membrana corionica è ottenuto e coaguli di sangue vengono rimossi delicatamente; (F) decidua parietalis è raschiato delicatamente; e (G) parietalis decidua (linea tratteggiata) è separata dalla membrana coriali. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.
Figura 2. macrofagi deciduali nella cultura. I macrofagi (cellule CD14 +) sono stati isolati dalle parietalis decidua a termine la gravidanza. I macrofagi sono stati placcati in camera di diapositive di plastica con RPMI1640 + 10% FBS + 1% penicillina-streptomicina + 50 ng / ml MCSF. Le foto sono state prese al momento del piastramento (A) e dopo 3 giorni in coltura (C).3 / 52863fig3large.jpg "target =" _ blank "> Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.
Figura 3. vitalità cellulare totale. La vitalità delle cellule totali isolati dai basale decidua e il parietalis decidua è stato determinato seguendo gradiente di densità utilizzando un colorante vitalità risolvibile (passo 6.2). La vitalità di cellule isolate è> 95% a seconda della colorazione vitalità cellulare Live / Dead. Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.
Figura 4. strategia di gating per leucociti decidual sottopopolazioni. I leucociti sono stati recintato con FSC e SSC. Cellule vive sono state poi gated secondo cancello redditività (Live). Cellule vitali sono state suddivise in neutrophils (CD15 +) e macrofagi (CD14 +). La popolazione CD14-CD15- è stato poi ulteriormente suddiviso in cellule NK (CD3-CD56 +), le cellule NKT (CD3 + CD56 +), le cellule T (CD3 +) e cellule B (CD19 +). Cliccate qui per vedere una versione più grande di questo figura.
. Figura 5. leucociti sotto-popolazioni nei tessuti deciduali neutrofili (CD15 +) e macrofagi (CD14 +) sono stati gated all'interno del cancello redditività; Le cellule T (CD3 +) e le cellule B (CD19 +) sono stati gated all'interno del cancello CD14-CD15-. Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura.
Figura 6. Rare leucociti sottopopolazioni nella decidtessuti manuale. cellule NK (CD56 +) e le cellule NKT (CD56 + CD3 +) sono stati gated all'interno del cancello CD14-CD15-. Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura.
| Lista Antibody | Azienda | Catalog No. |
| BD Pharmingen anti-umano CD56-PE-Cy7 | BD Biosciences | 557.747 |
| BD Horizon anti-umano CD15-BV605 | BD Biosciences | 562.980 |
| BD Horizon anti-umano CD14-BUV395 | BD Biosciences | 563.561 |
| BD Horizon anti-umano CD19-BUV737 | BD Biosciences | 564.303 |
| Brilliant Violet 650 anti-CD3 anticorpo umano | Biolegend | 317.323 |
Tabella 1. Elenco degli anticorpi utilizzato per leucociti sottoinsieme immunofenotipizzazione
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Discussion
Caratterizzazione delle proprietà funzionali e fenotipiche di leucociti infiltranti all'interfaccia materno-fetale umano è essenziale per la comprensione dei meccanismi immunitari che portano a disturbi della gravidanza. Diverse tecniche sono state descritte per isolare leucociti dall'interfaccia materno-fetale durante la gravidanza umana 10,14,25,28,37,42,43. Tuttavia, ciascuna di queste tecniche è distinta, utilizza enzimi o combinazioni di enzimi diversi, richiede diversi tempi di dissociazione, non specifica quantità di tessuto, e, soprattutto, non specifica sempre la vitalità delle cellule isolate. Il protocollo qui descritto permette l'isolamento di infiltrazione leucociti all'interfaccia materno-fetale umano (basalis decidua e decidua parietalis) con conseguente alto rendimento di vitalità e fornisce informazioni dettagliate sulle reagenti commerciali, la preparazione di buffer, le quantità di tessuto, e tempi di incubazione validated nel nostro laboratorio.
La prima fase critica del processo di isolamento dei leucociti è la dissociazione dei tessuti; questa fase prevede disgregazione meccanica e / o la dissociazione enzimatica. Desegregazione meccanica viene eseguita con successo raschiando il corion quando isolare il parietalis decidua (Figura 1F) e dal taglio dei villi della placenta dalla piastra basale quando isolare i basale decidua (Figura 1C) 10,28. Pertanto, il protocollo qui descritto comprende sia procedure come passi iniziali. Tuttavia, è importante considerare che la piastra basale (tessuti materni) e villi placentale (tessuti fetali) sono intimamente legati, che può causare la contaminazione di leucociti fetali quando isolando leucociti di basalis decidua. Per evitare la contaminazione del feto, il protocollo raccomanda qui lavaggio della piastra basale rifilato due o tre volte (Figura 1D). A seguito di raschiatura cella o tagliodal basale decidua o parietalis decidua, un ulteriore passo per disaggregazione tessuto meccanico è stato raccomandato 39. Si raccomanda Questo passo perché i leucociti infiltranti all'interfaccia molecole di adesione cellulare espresso materno-fetali che fermamente li attribuiscono alla matrice extracellulare 6,7. Pertanto, il protocollo qui descritto prevede la disaggregazione meccanica con un dissociatore tessuto automatico che aumenta la coerenza risparmiando tempo e fatica rispetto a macinazione tradizionale con bisturi, lame di rasoio o forbici chirurgiche 10,28.
Un secondo passo fondamentale nel processo di dissociazione dei tessuti è la dissociazione enzimatica. Enzimi unico e una combinazione di diversi enzimi sono stati utilizzati per isolare leucociti infiltranti dai basale decidua e decidua parietalis 10,14,25,28,37,42,43. In molti casi, tali enzimi preparati conformemente a una certa concentrazione a mano nel laboratory può essere soggetto ad errore umano. Qui, invece, un ready-to-use collagenasi purificata / cocktail proteasi neutra, Accutase, è stato implementato in laboratorio; come un enzima commerciale, è stato dimostrato di fornire risultati affidabili in coltura cellulare 51. Accutase (una soluzione distacco cellulare) è conosciuta per staccare efficacemente macrofagi da piastre di coltura senza raschiare e, soprattutto, senza perdere di superficie antigeni 51. Questo enzima preparato è stato anche utilizzato per elaborare la digestione dei tessuti del sistema nervoso umani e animali, con conseguente cellule isolate che rimangono vitali sostenibile per un lungo periodo che, nel tempo, consente loro coltura cellulare 52. Inoltre, questa soluzione conserva anche CD24 antigenicità in cellule isolate da tessuti del sistema nervoso centrale 52. Rispetto al Liberase-1, un altro cocktail di collagenasi e proteasi neutra, né Accutase nè Liberase-1 generare aggregati DNA libero; tuttavia, è Accutase gEntler di Liberase-1 durante la dissociazione dei tessuti 52. A causa di questo, Accutase non si dissocia aggregati di cellule dopo la digestione 52. Per superare questa limitazione, il protocollo qui descritto comprende la disaggregazione tessuto automatico dei basalis decidua e decidua parietalis prima dissociazione del tessuto con la soluzione. Accutase ha anche dimostrato la sua superiorità di tripsina nella conservazione di CD44, un gambo cancro marcatore superficie cellulare 53. Gli studi di laboratorio hanno costantemente nostra notato che la soluzione distaccamento preserva gli antigeni di superficie. Infatti, le differenze tra i disturbi di gravidanza e la gravidanza normale sono stati trovati l'espressione di diversi marcatori extracellulari e intracellulari in macrofagi (+ cellule CD14), neutrofili (CD15 + cellule), cellule T (CD3 + cellule), e le cellule B (CD19 + cellule), tra cui CD80, CD86, CD163, CD209, ICAM3, CD45RO, CD45RA, CXCR3, CCR7, CCR6, CD4, CD8, CD25, FOXP3, CD24, CD38, CD27, CD38, CD43, CD23, IgM, IgD, CD5, T-bet, GATA-3, e RORγt, e rilascio di citochine. Pertanto, il protocollo qui descritto è ottimale per immunofenotipizzazione dei leucociti infiltrazione all'interfaccia materno fetale umano come mostrato nei risultati rappresentativi.
Un importante vantaggio del protocollo qui descritto è che permette l'isolamento di leucociti con un alto rendimento di cellule vitali. I dati mostrano che rappresentante> 90% delle cellule isolate sono vitali. Questo è di grande importanza in quanto questo protocollo ha consentito lo studio delle proprietà funzionali delle cellule isolate da tessuti umani all'interfaccia materno-fetale. Ad esempio, le culture dei macrofagi deciduali e lo studio di rilascio di citochine sotto stimolazione sono stati condotti utilizzando questo protocollo.
Per ottenere risultati di successo che utilizzano il protocollo descritto, è importante considerare i seguenti fattori: 1) collecti tessutoin deve essere eseguita entro 1-2 ore dopo la consegna, e questi tessuti deve essere posto in un contenitore con 1x PBS a 4 ° C per preservare la vitalità delle cellule isolate; 2) disaggregazione tessuto meccanica deve essere effettuata utilizzando un omogeneizzatore automatica a volte convalidati, come descritto in questo protocollo; 3) la durata di incubazione con la soluzione distacco cellulare deve essere inferiore a 1 ora dalla sua attività dopo questo tempo diminuisce; 4) la temperatura di incubazione con la soluzione distacco cellulare deve essere mantenuta a 37 ° C per ottenere l'attività ottimale di questo enzima; 5) manipolazione pellet cellulare deve essere fatta delicatamente con micropipette perché l'uso del vortice può danneggiare l'integrità delle cellule (si ricorda che le cellule isolate sono manipolazione differenziata e brusco può facilmente ridurre la loro vitalità); 6) e buffer temperature centrifuga devono essere mantenute alla stessa temperatura come la sospensione cellulare; 7) cellule isolate devono essere trattati per immunofenotipizzazione o utilizzati immediatamente come loro redditività riduce rapidamente; e 8) durante l'esecuzione immunofenotipizzazione, i campioni devono essere acquisite mediante citometro immediatamente un flusso per i migliori risultati.
Uno dei limiti di questo protocollo è il costo di Accutase, che è più costoso di altri enzimi con funzioni analoghe, per esempio, tripsina, dispasi II, e collagenasi. Tuttavia, i vantaggi che Accutase display oltre tali enzimi sono superiori. Una seconda limitazione del protocollo è il requisito di un dissociatore tessuti automatica, che non è uno strumento da laboratorio comune e, quindi, può essere costoso. Per superare questa limitazione, la disgregazione del tessuto può anche essere eseguita utilizzando piccole forbici chirurgiche; tuttavia, questo passaggio non può superare i 3-5 minuti da periodi più lunghi hanno dimostrato di ridurre la resa di cellule vitali. Tutte le dissociazioni devono essere eseguite dallo stesso ricercatore di minimizzare la variabilità.
In sintesi, il proProtocollo offre qui un nuovo approccio che combina l'uso di tecniche dolci dissociazione tissutale meccaniche ed enzimatiche per preservare l'integrità dei marcatori extracellulari ed intracellulari in leucociti isolati dai tessuti umani all'interfaccia materno-fetale. A parte immunofenotipizzazione, coltura cellulare, e lo smistamento delle cellule, le future applicazioni di questo protocollo sono numerose e varie. Abbiamo utilizzato con successo questo protocollo per isolare leucociti deciduali per gli studi in vitro di funzionalità dei leucociti (ad esempio, la citotossicità, la proliferazione delle cellule T e plasticità, ecc), e la produzione di specie reattive dell'ossigeno nei leucociti isolate dai tessuti deciduali (dati non mostrato). Infatti, utilizzando il protocollo descritto, il nostro laboratorio è stato in grado di descrivere nuove e rare leucociti all'interfaccia materno-fetale.
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Acknowledgments
Questo lavoro è stato supportato dal Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development, NIH / DHHS. Questo lavoro è stato supportato anche, in parte, dalla Wayne State University perinatale Iniziativa in materna, perinatale e la salute del bambino. Si ringrazia Maureen McGerty (Wayne State University) per la sua lettura critica del manoscritto.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Dissection | |||
| Sterile dissection tools: surgical scissors, forceps, and fine-tip tweezers | Any vendor | 20012-027 | |
| 1X phosphate buffered saline (PBS) | Life Technologies | (1X PBS) | |
| Large and small Petri dishes | Any vendor | ||
| Dissociation | |||
| Accutase | Life Technologies | A11105-01 | (cell detachment solution) |
| Sterile 2 ml safe-lock conical tubes | Any vendor | ||
| 50 ml conical centrifuge tubes | Any vendor | ||
| 100 µm cell strainers | FALCON/Corning | 352360 | |
| 5 ml round bottom polystyrene test tubes | Any vendor | ||
| Transfer pipettes | Any vendor | ||
| C tubes | Miltenyi Biotec | 130-093-237 | |
| Cell Culture | |||
| RPMI culture medium 1640 | Life Technologies | 22400-089 | (1X) (10% FBS and 1% P/S) |
| Plastic chamber slides | Thermo Scientific | 177437 | |
| Incubator | Thermo Scientific Corporation | HEPA Class 100 | |
| Water bath | Fisher Scientific | ISOTEMP 110 | |
| Cell counter | Nexelcom | Cellometer Auto2000 | |
| Microscope | Olympus | Olympus CKX41 | |
| Cell Separation | |||
| MS columns | Miltenyi Biotec | 130-042-201 | |
| Cell separator | Miltenyi Biotec | 130-042-109 | |
| 30 μm pre-separation filters | Miltenyi Biotec | 130-041-40 | |
| Multistand | Miltenyi Biotec | 130-042-303 | |
| 15 ml safe-lock conical tubes | Any Vendor | ||
| MACS buffer | (0.5% bovine serum albumin, 2 mM EDTA and 1X PBS) | ||
| Reagents | |||
| FcR Blocking | Miltenyi Biotec | 130-059-901 | (Fc Block) |
| Anti-human cell surface antigen antibodies | BD Biosciences | (Table 1) | |
| Bovine serum albumin | Sigma | A7906 | |
| LIVE/DEAD viability dye | BD Biosciences | 564406 | |
| Lyse/Fix buffer | BD Biosciences | 346202 | |
| FACS buffer | (0.1% BSA, 0.05% Sodium Azide, and 1X PBS, pH=7.4) | ||
| Staining buffer | BD Biosciences | 554656 | |
| Trypan Blue solution 0.4% | Life Technologies | 15250-011 | |
| Ficoll | GE Healthcare | 17-1440-02 | 20% density gradient media (1.077 + 0.001 g/ml) |
| Additional Instruments | |||
| Incubator with shaker | Thermo Scientific | MAXQ 4450 | |
| Flow cytometer | BD Biosciences | LSR-Fortessa | |
| Centrifuge | Beckman Coulter | SpinChron DLX | |
| Vacuum system | Any vendor | ||
| Automatic tissue dissociator | Miltenyi Biotec | gentleMACS Dissociator | |
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