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Article de méthode

Utilisant Méthodologies combinés pour définir le rôle du Plasma Membrane Livraison Pendant Axon Branching et Neuronal morphogénèse

6K vues

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DOI :

10.3791/53743

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16 mars 2016

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Dans cet article

Résumé

Les techniques de microscopie optique couplées à des dosages biochimiques élucident l’implication de l’exocytose médiée par SNARE dans la ramification axonale dépendante de la nétrine. Cette combinaison de techniques permet d’identifier les mécanismes moléculaires contrôlant la ramification des axones et le changement de forme des cellules.

Résumé

Au cours du développement neuronal, les axones en croissance s’étendent à plusieurs partenaires synaptiques en élaborant des branches axonales. La ramification axonale est favorisée par des signaux de guidage extracellulaires comme la nétrine-1 et entraîne une augmentation spectaculaire de la surface de la membrane plasmique axonale. La ramification axonale dépendante de la nétrine 1 implique probablement un contrôle temporel et spatial de l’expansion de la membrane plasmique, dont les composants sont fournis par la fusion des vésicules exocytaires. Ces événements de fusion sont précédés par la formation de complexes SNARE, comprenant un v-SNARE, tel que VAMP2 (vésicule associée à la protéine membranaire 2), et les t-SNARE de membrane plasmique, la syntaxine-1 et SNAP25 (protéine associée au synaptosomal 25). Vous trouverez ci-dessous une approche à plusieurs volets utilisée pour examiner le rôle de l’exocytose médiée par SNARE dans la ramification des axones. La force de l’approche combinée réside dans l’acquisition de données à une gamme de résolutions spatiales et temporelles, allant de la dynamique des événements de fusion de vésicules uniques dans des neurones individuels à la formation de complexes SNARE et à la ramification axonale dans des populations de neurones en culture. Ce protocole tire parti des approches biochimiques établies pour doser les niveaux de complexes SNARE endogènes et de la microscopie à fluorescence par réflexion interne totale (TIRF) des neurones corticaux exprimant VAMP2 marqués avec une GFP sensible au pH (VAMP2-pHlourin) afin d’identifier les changements dépendants de la nétrine-1 dans l’activité exocytaire dans les neurones individuels. Pour élucider le moment de la ramification dépendante de la nétrine-1, la microscopie à contraste interférentiel différentiel (CID) time-lapse de neurones uniques sur un ordre d’heures est utilisée. L’immunofluorescence à cellules fixes associée à des neurotoxines botuliques qui clivent la machinerie SNARE et bloquent l’exocytose démontre que la ramification axonale dépendante de la nétrine-1 nécessite une activité exocytaire médiée par SNARE.

Introduction

Des estimations récentes suggèrent que le cerveau humain contient 1011 neurones avec 1014 connexions synaptiques1, soulignant l’importance de la ramification axonale in vivo. Les signaux de guidage axonal extracellulaires tels que la nétrine-1 guident les axones vers les partenaires synaptiques appropriés et stimulent la ramification axonale, augmentant ainsi la capacité synaptique2-5. L’arborisation axonale dépendante de la nétrine 1 implique une expansion substantielle de la membrane plasmique6, ce qui, selon nous, nécessite la livraison de composants membranaires supplémentaires via la fusion des vésic....

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Protocole

Déclaration d'éthique de la recherche: Toutes les expériences impliquant des animaux détaillés ici sont soumis aux règles et règlements du Comité UNC de protection des animaux et aux normes du NIH pour le soin et l' utilisation des animaux de laboratoire.

1. Préparation et Placage des dissociées neurones corticaux

  1. Euthanasier femelles chronométrées-enceintes par inhalation de CO 2 suivie par dislocation cervicale. Retirer cerveaux entiers des crânes de embryonnaires jour 15.5 (E15.5) souris et microdissect corticales de chaque hémisphère. Pour obtenir des instructions détaill....

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Résultats

Utilisant des techniques biochimiques in vitro de doser la quantité de complexes SNARE SDS-résistants dans une population de neurones. La figure 1 montre le western blot après l' achèvement résultant du SNARE dosage complexe SDS résistant sondé pour SNAP-25, syntaxin1A et VAMP2.

Microscopie TIRF à la membrane des cellules basales fournit des images haute résolution des différents événements de fus.......

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Discussion

La ramification axonale est un processus neurodéveloppemental fondamental et sous-tend la vaste neuroconnectivité du système nerveux des mammifères. La compréhension des mécanismes impliqués dans l’expansion localisée de la membrane plasmique fait partie intégrante de notre compréhension du neurodéveloppement normal et pathologique. L’utilisation d’une approche à plusieurs volets intégrant à la fois des méthodologies au niveau de la population et au niveau de la cellule unique améliore la reproductibilité et augmente la .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par les Instituts nationaux de la santé: RO1-GM108970 (SLG) et F31-NS087837 (CW).

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Plaques traitées pour la culture tissulaire à 6 puitsOlympus Plastics25-105
lamelles en verreFisher scientific12-545-8112CIR-1.5 ; doivent être traitées à l’acide nitrique pendant 24 heures, rincées à l’eau DI 2x et séchées avant utilisation. Doit être enrobé de 1 mg/ml de poly-d-lysine et rincé avant le placage des cellules.
Solution de nucléofection AmaxaLonzaVPG-1001100 ml/transfection
Amaxa Nucléofecteur/électroporateurLonzaprogram O-005
35 mm Boîtes d’imagerie à cellules vivantes à fond de verreMatek Corporationp356-1.5-14-Cdoivent être enduites de 1 mg/ml de poly-d-lysine et rincées avant le placage des cellules
Olympus IX81-ZDC2 microscope inverséOlympus
Lampe au xénon Lambda LSSutter Instruments Company
Stage top incubateurTokai Hit
100x 1.49 NA TIRFobjectif Olympus
Andor iXon EM-CCDAndor
Odyssey Licor Infrared Imaging SystemLI-COROdyssey CL-XUtilisé pour le balayage des taches
Studio d’images suite logicielleLI-CORUtilisé pour la numérisation sur le système Odyssey Infrarouge ; Image studio lite utilisé pour l’analyse hors ligne des blots
Metamorph pour OlympusMolecular devices, LLCversion 7.7.6.0Logiciel utilisé pour toutes les images et l’analyse de timelapse DIC
Logiciel de contrôle CELL TIRF LogicielOlympusutilisé pour contrôler les lasers pour l’imagerie TIRF
Fidji (Image J)NIHImageJ Version 1.49t
60x Plan Apochromat 1.4 ObjectifNAOlympus
40x 1.4 NA Plan Objectif apochromatiqueOlympus
Milieux neurobasauxGIBCO21103-049Solution de base pour milieux sans sérum et sans trypsine
Supplément B27GIBCO17504-044500 ml/50 ml Milieux sans sérum et milieux de trempe à la trypsine
L-Glutamine35050-0611 ml/50 ml Milieux sans sérum
Albumine sérique bovineBio Basic Incorporated9048-46-8solution à 10 % dans 1x PBS pour bloquer les lamelles ; solution à 5 % dans TBS-T pour bloquer les membranes de nitrocellulose.
10x  ; trypsineSigma59427C
HEPESCELLGRO25-060-Cl
saline tamponnée au phosphate de Dulbecco’s (DPBS)+ Ca + MgCorning21-030-cm
Sérum fœtal bovinCorning/CELLGRO35-010-CV
saline équilibrée de Hank (HBSS)Corning/CELLGRO20-021-CV
NaClFisher scientificBP358-10
EGTAFisher scientificCAS67-42-5
MgCl2Fisher scientificBP214-500
TRIS HClSigmaT5941-500
TRIS baseFisher scientificBP152-5
N-Propyl GallateMP Biomedicals102747
Glycérol Qualité photométriqueAcros Organics18469-5000
Glycérol (qualité non optique)Fisher scientificCAS56-81-5
B-mercaptoethonalFisher scientificBP176-100
SDSFisher scientificBP166-500
Eau distillée  ;GIBCO152340-147
Poly-D-LysineSigmap-7886Dissous dans de l’eau stérile à 1 mg/ml
toxine botulique A Liste BoNTALaboratoires biologiques128-A
Lapin polyclonal anti humain VAMP2Signalisation cellulaire11829
Souris monoclonale anti rat Syntaxine1ASanta Cruz Biotechnologysc-12736
Chèvre polyclonale anti humain SNAP-25Santa Cruz Biotechnologysc-7538
Souris monoclonale anti humain &beta ; III-tubuline  ;CovanceMMS-435P
Alexa Fluor 568 et Alexa Fluor 488 phalloïdine, ou Alexa Fluor 647Invitrogen
LI-COR IR-dye anticorps secondairesLI-CORP/N 925-32212, P/N 925-68023, P/N 926-68022800 âne anti-souris, 680 âne anti lapin, 680 âne anti chèvre
0.2 μ ; m membrane nitrocellulosique taille des poresBiorad9004-70-0
Tween-20Fisher scientificBP337-500
MéthanolFisher scientificS25426A
Bleu de bromphénolSigmaB5525-5G
SaccharoseFisher scientificS6-212
ParaformaldéhydeFisher scientificO-4042-500
Triton-X100Fisher scientificBP151-500
TEMEDFisher scientificBP150-20
40 % bis-acrylimideFisher scientificBP1408-1
NomEntrepriseNuméro de catalogueComments
Anticorps >Alternative Validated Antibodies
Mouse Monoclonal Anti-Syntaxin HPC-1 cloneSigma AldrichS0664
  ; Synaptobrevin monoclonal de souris 2 (VAMP2)Synaptic Systems104-211
Monoclonal de souris SNAP25Synaptic Systems111-011
Environmental Solution Solution

Références

  1. Drachman, D. A. Do we have brain to spare? Neurology. 64 (12), 2004-2005 (2005).
  2. Serafini, T., et al. Netrin-1 Is Required for Commissural Axon Guidance in the Developing Vertebrate Nervous System. Cell. 87 (6), 1001-1014 (1996).
  3. Métin, C., Deléglise, D., Se....

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Réimpressions et autorisations

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