Este relatório descreve uma técnica simples e fácil de executar, usando vácuo de baixa pressão, para preencher canais microfluídicos com células e substratos para pesquisa biológica.
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Artigo de método
* These authors contributed equally
Este relatório descreve uma técnica simples e fácil de executar, usando vácuo de baixa pressão, para preencher canais microfluídicos com células e substratos para pesquisa biológica.
As técnicas de padronização de substrato e célula são amplamente utilizadas em biologia celular para estudar as interações célula a célula e célula a substrato. As técnicas convencionais de padronização funcionam bem apenas com formas simples, pequenas áreas e biomateriais selecionados. Este artigo descreve um método para distribuir suspensões celulares, bem como soluções de substrato, em microcanais complexos, longos, fechados (sem saída) de polidimetilsiloxano (PDMS) usando pressão negativa. Este método permite que os pesquisadores padronizem vários substratos, incluindo fibronectina, colágeno, anticorpos (Sal-1), poli-D-lisina (PDL) e laminina. A padronização de substratos permite padronizar indiretamente uma variedade de células. Testamos mioblastos C2C12, a linhagem celular neuronal PC12, neurônios corticais embrionários de ratos e neurônios retinianos anfíbios. Além disso, demonstramos que essa técnica pode padronizar diretamente os fibroblastos em canais microfluídicos por meio da breve aplicação de um baixo vácuo em suspensões celulares. O baixo vácuo não diminui significativamente a viabilidade celular, conforme mostrado pelos ensaios de viabilidade celular. Modificações são discutidas para aplicação do método a diferentes tipos de células e substratos. Essa técnica permite que os pesquisadores padronizem células e proteínas em padrões específicos sem a necessidade de materiais ou equipamentos exóticos e pode ser feita em qualquer laboratório com vácuo.
Em engenharia de tecidos e biosensing, a capacidade de controlar a organização espacial de proteínas e células em uma escala um, tornou-se cada vez mais importante ao longo das últimas quatro décadas 1, 2, 3. Organização espacial precisa de proteínas e células tem permitido aos pesquisadores examinar a interação entre as células e os substratos que contêm tipos semelhantes ou diferentes de células, para orientar o crescimento celular, e para imobilizar biomoléculas para a fabricação de biossensores 4, 5, <....
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NOTA: Por favor, consulte todas as folhas de dados de segurança pertinentes (MSDS) antes do uso. Alguns dos produtos químicos utilizados no presente protocolo são tóxicos e cancerígenos. Por favor, use todas as práticas de segurança adequadas (extractor de fumo, porta-luvas) e equipamentos de proteção individual (óculos de segurança, luvas, jaleco, calça de corpo inteiro, sapatos fechados) ao utilizar materiais tóxicos ou ácido / base.
1. Fabricação de Mestre Moldes para macio Litografia usando fotolitografia
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Este método permite a padronização de proteínas e padronização indireta de células usando canais microfluídicos sem saída com dimensões tão pequenas quanto 10 mm e equipamentos disponíveis em quase todos os laboratórios biológicos uma vez que o molde mestre é feita. Esta técnica pode ser utilizada com canais microfluídicos PDMS criados usando fotolitografia suave tradicional, ou com canais microfluídicos PDMS criadas com fita adesiva de fabricação (Figura 1)
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Enquanto fotolitografia convencional é uma técnica bem estabelecida para a realização de moldes de litografia macia, o equipamento, materiais, e as competências necessárias para utilizar fotolitografia convencional não estão prontamente disponíveis para a maioria dos laboratórios. Para laboratórios que não têm acesso a esses recursos, nós apresentamos a fabricação de fita adesiva como um método de criação de moldes com características relativamente simples para dispositivos microfluídicos. Este método permite que qualqu.......
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Os autores declaram não haver interesses financeiros concorrentes.
O financiamento para esta pesquisa foi fornecido pela New Jersey Comissão sobre a medula espinhal Research (NJCSCR) (a FHK), conceder CSCR14IRG005 (a BLF), NIH conceder R15NS087501 (a CHC), ea Fundação Kirby FM (a ETA).
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| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| Ferramentas de desenho CAD CorelDRAW X4 | Corel Corporation, Canadá | X4 Versão 14.0.0.701 | Ferramenta CAD usada para desenhar o layout do dispositivo microfluídico |
| Impressora a laser HP | Hewlett Packard, CA | 1739629 | Usada para imprimir o layout do dispositivo microfluídico para técnica de fita adesiva |
| Bel-Art Dessecator | Fisher Scientific, MA | 08-594-16B | Usado para desgaseificar a mistura |
| PDMSFita adesiva escocesa | 3M Produto, MN | Tape 600 | Usado para fabricar fita adesiva Master |
| PDMS Sylgard 184 | Dow Corning, MI | 1064291 | Fundição de polímero |
| Petri Dish | Fisher Scientific, MA | 08-772-23 | Usado para manter o molde para fundir com PDMS |
| Bisturi de aço inoxidável com lâmina (# 11) | Feather Safety Razor Co. Ltd. Japão | 2976 # 11 | Usado para cortar o PDMS |
| Pinças | Ted Pella, CA | 5627-07 | Usado para manusear o molde PDMS durante o descascamento |
| de lâminas de vidro | Fisher Scientific, MA | 12-546-2 | Usado como superfície para padronizar as |
| lâminas de vidro | Fisher Scientific, MA | 12-544-4 | Usado como superfície para padronizar o rolo de borracha de substrato |
| Dick Blick Art Materials, IL | 40104-1004 | Usado para fixar fita adesiva em vidro sem prender bolhas de ar | |
| Laser Mask Writer | Heidelberg Instruments, Alemanha | DWL66fs | Usado para fabricar máscara de quartzo usado no processo de fabricação de fotolitografia |
| EVG Mask Aligner (ferramenta de exposição UV de fotolitografia) | EV Group, Alemanha | EVG 620T (B) | Usado para expor o fotorresistente à luz UV |
| Spin Coater Headway | Research Inc, TX | PWM32-PS-CB15PL | Usado para girar o revestimento do fotorresiste em wafer de silício |
| Fotorresistes SU-8 50 | MicroChem, MA | Y131269 | Fotorresistente negativo usado para fabricação de moldes |
| SU-8 Devloper | MicroChem, MA | Y020100 | Desenvolvedor de fotorresistência |
| Tridecafluoro-1,1,2,2-Tetrahidrooctil-1-Triclorossilano | UCT Specialties, PA | T2492-KG | Molde de revestimento para evitar a adesão de PDMS |
| Isopropanol | Sigma-Aldrich, MO | Solvente de | Limpeza |
| Etanol | Sigma-Aldrich, MO | 24102 | Solvente de Esterilização |
| Bromidrato de Poli-D-Lisina (PDL) | Sigma-Aldrich, MO | P0899-10MG | A solução de PDL é feita a 0,1 mg/mL em Tampão Tetraborato de Sódio |
| Laminina | Sigma-Aldrich, MO | L2020 | Laminina aliquotada em 10 µ L alíquotas e diluídas a 20 µ g/µ L em PBS antes de usar BSA |
| Fisher Scientific, MA | BP1605100 | Cultura de células | |
| C2C12 Linha de células de mioblast | ATCC, VA | CRL-1722 | Usado para demonstrar a padronização de C2C12 |
| Linha celular PC12 | ATCC, VA | CRL-1721 | Usado para demonstrar a padronização de PC12 |
| Colágeno tipo 1, cauda de rato | BD Biosciences | 40236 | Cultura de células |
| DMEM | GIBCO, MA | 11965-084 | Cultura de células |
| Soro de cavalo, inativado por calor | Fisher Scientific, MA | 26050-070 | Cultura de células |
| Faloidina-tetrametilrodamina B isotiocianato (TRITC) | Sigma-Aldrich, MO | P1951 | Para rotular células |
| Calceína-AM células mortas vivas Kit de ensaio | Invitrogen, MA | L-3224 | Viabilidade celular Ensaio |
| Biópsia Perfurador | Ted Pella, CA | 15110-10 | Furo perfurado no PDMS |
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