Для проведения этого исследования из Университета Аризоны был получен одобрение организационного совета. Получены информированные формы согласия пациента.
1. Выбор пациента
ПРИМЕЧАНИЕ. Утверждение Совета по институциональному обзору было получено в Университете штата Аризона. Всего было набрано 38 пациентов. Возраст пациентов варьировался от 32 до 86 лет со средним значением 55 лет, из которых 26 пациентов были постменопаузальными, а 12 пациентов были предклимактерическими.
- Получите информированное согласие от каждого пациента.
2. Процедура сбора фаллопиевых труб
ПРИМЕЧАНИЕ. Пациенты, включенные в настоящее исследование, были запланированы на общую гистерэктомию и двустороннюю сальпингоофоректомию либо для профилактики, либо для профилактики злокачественных новообразований. Детали операции были неизвестны для патологоанатома, который проводил цитологическое исследование.
- Сразу после хирургического вмешательстваЧтобы исследовать свежий образец ткани, включая матку, двусторонние яичники и двусторонние фаллопиевы трубы, чтобы определить двустороннюю фаллопиевую трубку.
- Собирайте и помещайте клетки фаллопиевой трубки в раствор консервирующего раствора (см. Таблицу материалов) в течение 30 минут после зажима крови; Рекомендуемый консервант представляет собой буферный консервирующий раствор на основе метанола.
ПРИМЕЧАНИЕ. Используйте мягкую сенсорную щетку для сбора трубных клеток (предстоящие шаги). За исключением редких случаев, когда фаллопиевая трубка отделяется от матки, вставляя головку щетки для сбора клеток из трубчатой фимбрии, обычно возникает, когда фаллопиевая трубка прикрепляется к матке. - С помощью маленьких щипцов вставьте кисть (см. Таблицу материалов ) в просвет фаллопиевой трубки через конец фимбрии. Медленно вращайте по часовой стрелке и перемещайте кисть вперед через воронкообразную часть паденияОпиумную трубку, затем ампулу, пока она не достигнет перешейка.
- Медленно вращайте и поворачивайте щетку против часовой стрелки, чтобы вытащить кисть. Убедитесь, что максимальная скорость щетки в просвете ниже 1 см / с.
- Промойте щетку в растворе для консервантов (во флаконе), вращая и закручивая кисть 10 раз в растворе.
- Затяните колпачок флакона.
- Запишите информацию пациента и латеральность образца.
- Храните флакон в холодильнике 4 ° C (до 6 месяцев).
3. Подготовка к цитологии тубальной цитологии
- Загрузите образец флакона в автоматизированный процессор для подготовки слайдов.
ПРИМЕЧАНИЕ. Мы используем автоматизированный процессор для подготовки слайдов. Следующие шаги выполняются автоматически после того, как образец флакона помещается в процессор: (i) Ячейки и обломки разделяются и диспергируются посредством вращения тестового фильтра внутри образцаФлакон. (Ii) Тубальные клетки собираются с внешней поверхности фильтра с помощью нежного вакуума. (Iii) Фильтр перевернут и прижат к предметному стеклу, чтобы клетки могли прилипать к круглой области внутри слайда. (Iv) Скольжение дополнительно фиксируется в фиксирующей ванне и готово к окрашиванию и цитологическому анализу. К сожалению, альтернативного ручного метода нет, что может дать результаты с аналогичным качеством.
4. Измененный протокол окрашивания Papanicolaou
- Покрасьте слайды, сделанные на шаге 3.1, запустив автоматическую процедуру окрашивания без гина, как показано в таблице 1 .
ПРИМЕЧАНИЕ. Метод окрашивания представляет собой модификацию метода окрашивания Papanicolaou, который мы обычно используем для негинекологических образцов. Мы используем автоматизированный обработчик ткани для окрашивания некоторых слайдов. В этом исследовании мы выбрали процедуру окрашивания, отличную от Gyn, по методу окраски Gyn. Eosin используется EA-65 вместо EA-50, используемого дляГинекологические образцы (образец мазка Папаниколау). Кроме того, OG-6 в процедуре окрашивания Gyn, которая в основном предназначена для склеивания клеток, не включена в процедуру окрашивания, так как в этом исследовании не ожидается появления плоских клеток. EA65 (Eosin Azure) представляет собой противозадирный раствор, состоящий из 3 красителей: Eosin Y, Fast green FCF и Bismarck brown Y. Процедура проиллюстрирована в таблице 1 . - Выполните процедуру быстрого выпаривания пасты вручную следующим образом.
- Окуните слайд, сделанный на этапе 3.1, в 95% этанол, в 10 раз, при каждом погружении примерно 1 с.
- Окуните слайд в H 2 O, 10 раз, при каждом погружении около 1 с.
- Выпустить слайд в гематоксилин в течение 10-60 с.
- Окуните слайд в H 2 O, 10 раз, при каждом погружении около 1 с.
- Окуните слайд в 95% этанол, в 10 раз, при каждом погружении примерно 1 с.
- Выпустить слайд в EA65 в течение 1 - 3 мин.
- Опустите слайд intO H 2 O, 10 раз, причем каждый провал занимает около 1 с.
- Окуните слайд в 95% этанол, в 10 раз, при каждом погружении примерно 1 с.
- Опустите ползунок в ксилоле до тех пор, пока слайд не станет прозрачным.
ПРИМЕЧАНИЕ. Это модифицированная процедура окрашивания Papanicolaou. Этот метод используется в качестве более быстрого метода окрашивания для случаев с ограниченным временем или пространством, например, на тонкой иглах и образцах STAT на месте. Эта процедура обеспечивает сопоставимое окрашивание качества, как автоматизированная процедура окрашивания Non-Gyn. Процедура проиллюстрирована в таблице 2 .
5. Спин-клетки на слайдах
ПРИМЕЧАНИЕ. Три образца цитоспина предназначены для каждого образца. Один слайд - H & E, окрашенный для морфологического сравнения с цитологическим слайдом. Для будущего исследования окраски IHC были сделаны две неокрашенные слайды. Подробные этапы этого раздела не являются предметом настоящего документа; Поэтому мы не будем обсуждать их в расширенном details.
- Подготовьте цитоцентрифугу с меченым слайдом, воронкой для образцов и фильтром для каждого исследуемого образца.
- Концентрируют клетки путем центрифугирования в течение 5 мин при 200 × g.
- Удалите примерно половину надосадочной жидкости, а затем повторно суспендируйте клетки, осторожно пипетируя.
- Добавьте 200 мкл каждой клеточной суспензии к воронке образца.
- Спин при 250 xg в течение 5 мин. Осторожно удалите слайд (ы) из цитоцентрифуги и перенесите их на 95% этанол для фиксации.
- Воздух сухой до окрашивания и длительного хранения.
ПРИМЕЧАНИЕ. В зависимости от плотности ячейки на конечных слайдах шаг 5.2 и этап 5.3 можно пропустить или отрегулировать. В этом исследовании нам требуется, по меньшей мере, 2 клеточных кластера, присутствующих в режиме высокой мощности, для адекватной плотности клеток.
6. Разделение и широкомасштабная проверка протокола FIMMEDE End (SEE-FIM)
- Закрепите весь образец (включая матку, двусторонние фаллопиевы трубы и яичники)В 10% формалине до кассового сбора, чтобы минимизировать эксфолиацию.
- Аккуратно и осторожно отсоедините маточные трубы от матки на перешейке, используя маленькие щипцы и ножницы. Если присутствует адгезия, аккуратно рассекайте фибринный конец с поверхности яичника небольшими щипцами и ножницами; Эти шаги имеют решающее значение для минимизации перекрестного загрязнения опухоли между яичником и фаллопиевой трубкой из-за их непосредственной близости.
- Ампутировать сегмент воронки и фимбрии (дистальный 1,0 - 2,0 см фаллопиевой трубки) из остальной части образца.
- Разделите воронку и фимбрий в продольном направлении с интервалом 2 мм. Представьте все разделы в toto для гистологического обследования.
- Разделите перешеек и ампулу с интервалами 2 - 3 мм и полностью отправьте.