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Article de méthode

Chromatine protocole d’immunoprécipitation (puce) pour les échantillons embryonnaires de faible abondance

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DOI :

10.3791/56186

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29 août 2017

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Dans cet article

Résumé

Nous décrivons ici une immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) et le protocole de préparation de bibliothèque de ChIP-seq pour générer des profils épigénomique global d’échantillons embryonnaires de poulet de faible abondance.

Résumé

Immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) est une technique largement utilisée pour cartographier la localisation des histones modifiées post-traductionnellement, variants d’histones, facteurs de transcription ou des enzymes modifiant la chromatine à un locus donné ou sur une échelle de tout le génome. La combinaison de tests de puce avec génération de séquençage (c.-à-d., ChIP-Seq) est une approche puissante pour découvrir dans le monde des réseaux de régulation génique et améliorer l’annotation fonctionnelle des génomes, en particulier des séquences régulatrices non codantes. Puce protocoles nécessitent généralement de grandes quantités de matériel cellulaire, ce qui annule l’applicabilité de cette méthode à une enquête sur les types de cellules rares ou des biopsies tissulaires petit. Afin de rendre l’analyse de puce compatible avec la quantité de matières biologiques qui en général peuvent être obtenus in vivo au cours de l’embryogenèse précoce de vertébrés, les auteurs décrivent ici un protocole simplifié de puce dans lequel le nombre d’étapes nécessaires pour terminer le test ont été réduits pour minimiser la perte de l’échantillon. Ce protocole ChIP a été utilisé avec succès pour enquêter sur des modifications d’histone différentes dans différents poulet embryonnaire et les tissus de souris adulte moyen faible pour un nombre moyen de cellules (5 x 104 - 5 x 105 cellules). Surtout, ce protocole est compatible avec la technologie ChIP-seq, à l’aide de méthodes de préparation de la bibliothèque standard, fournissant ainsi l’épigénomique global cartes dans les tissus embryonnaires très pertinents.

Introduction

Modifications post-traductionnelles des histones sont directement impliquées dans divers processus dépendants de chromatine, y compris la transcription, de réplication et de réparation de l’ADN pour1,2,3. En outre, les modifications d’histone différents montrent positifs (par exemple, H3K4me3 et H3K27ac) ou négatif (par exemple, H3K9me3 et H3K27me3) corrélations avec l’expression du gène et peuvent être définis de façon large comme marque d’histone activant ou répressive, respectivement2,3. Par consé....

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Protocole

selon les directives allemandes de protection des animaux, aucune approbation institutionnelle animalerie et utilisation Comité (IACUC) n’était nécessaire pour réaliser les expériences d’embryon de poulet. Selon les directives locales, seules des expériences avec des embryons de poulet CM44 (18 jours) et plus âgés nécessitent l’approbation IACUC. Cependant, les embryons utilisés dans cette étude étaient tous dans les premiers stades du développement embryonnaire (c.-à-d. CM19 (72 h)).

Remarque : ce protocole vise à fournir une description détaillée de l’analyse de la puce, donc il peut être réuni avec qPCR ou séquençage de procha....

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Résultats

Pour illustrer la performance de notre protocole de puce, nous avons effectué des ChIP-seq expériences utilisant des sections SNT mise en commun des embryons de poulet CM19, maxillaires proéminences de HH22 poulet embryons et les embryons de poulet stade-HH3 pour enquêter sur les profils de liaison de modifications d’histone différents (c.-à-d., H3K4me2, H3K27ac, H3K4me3 et H3K27me3). Une fois la puce ADN ont été obtenues, l’efficacité de la sonication a été évaluée par électroph.......

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Discussion

Épigénomique profilage de modification d’histone à l’aide de ChIP-seq peut être utilisé pour améliorer l’annotation fonctionnelle des génomes de vertébrés dans différents contextes cellulaire4,5,18. Ces profils épigénomique peuvent être utilisés, entre autres, d’identifier les éléments d’enhancer, pour définir l’État réglementaire des activateurs (c'est-à-dire actif, apprêtée, ou sur le point) et de définir des régulate.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont pas tout intérêt financier concurrentes doivent être divulgués.

Remerciements

Les auteurs remercient Jan Appel pour son excellente assistance technique lors de la mise en place du présent protocole. Travail dans le laboratoire de Rada-Iglesias est pris en charge par CMMC intra-muros financement, subventions de recherche du DFG (RA 2547/1-1, RA 2547/2-1 et TE 1007/3-1), le chercheur avancé UoC groupe Grant et l’octroi de CECAD.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
BSA en poudreCarl Roth3737.3
Tampon salin phosphate (PBS)Sigma AldrichD8537
Tris-HCL pH 8.0Sigma AldrichT1503
NaClCarl Roth3957.2
EDTACarl Roth8043.2
EGTACarl Roth3054.2
Na-désoxycholateSigma AldrichD6750-24
N-lauroylsarcosineSigma Aldrich61743-25G
HepesApplichemA3724,0250
LiClCarl Roth3739.2
NP-40Sigma AldrichI3021-100ml
SDSCarl Roth1833
Protéine G/billes magnétiquesInvitrogen1004D
37 % FormaldéhydeSigma Aldrich252549-1L
Glycine
RNasePeqlab12-RA-03
Protéinase KSigma Aldrich46.35 E
Na-butyrateSigma Aldrich
Inhibiteur de protéinaseRoche5892791001
SYBRgreen Mixbiozym617004
dH2OSigma AldrichW4502
1 Kb échelleThermofisherSM1333
Orange GSigma Alrich03756-25
AgaroseInvitrogen16500-500
0,25 % trypsine-EDTA (1x)Gibco25200-072
Éthoxylate d’octylphénol (Triton X 100)Roth3051.4
DMEM (Dulbecco´ ; s Modified Eagle Medium)Gibco31331-028
Embouts de chargement de gel MultiflexA.HartensteinGS21
qPCR PlaquesSarstedt721,985,202
384 puitsSarstedt721,985,202
Tubes de 1,5 mLSarstedt72,706
100 - 1,000 µ ; L Embouts filtrantsSarstedt70,762,211
2 - 20 µ ; L Pointes filtrantesSarstedt70,760,213
2 - 200 µ ; L FiltresSarstedt70,760,211
0.5 - 10 & micro ; L Embouts filtrantsSarstedt701,116,210
H3K27me3 anticorpsActive Motif39155
H3K27acanticorps Active Motif39133
H3K4me3 anticorpsActive Motif39159
H3K4me2 anticorpsActive Motif39141
End Repair MixIlluminaFC-121-4001
Perles paramagnétiquesBeckman CoulterA63881
Tampon de suspensionIlluminaFC-121-4001
A-Tailing MixIlluminaFC-121-4001
LigationIlluminaFC-121-4001
Adaptateur d’ARN Indexes IlluminaRS-122-2101
Stop Ligation BufferIlluminaFC-121-4001
Amorce PCR CocktailIlluminaFC-121-4001
Mélange PCR amélioréIlluminaFC-121-4001
Échelle d’ADN génomiqueAgilent5067-5582
Tampon d’élutionAgilent19086
Tampon d’échantillonAgilent5067-5582
Kitde quantification de bibliothèqueKapa BiosystemsKK4835 &ndash ; 07960204001
Œufs de blanc de poulefertile LSL Rhein MainKN : 15968
Aiguille (Neoject)A.Hartenstein10001
Seringue (Ecoject 10 mL)Dispomed witt oHG21010
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Equipment
CentrifugeuseHermleZ 216 MK
ThermoshakerITABISMKR13
SonicatorActive MotiveEpiShear sonde sonicator
DiagenodeBioruptor Plus
RotateurStuartSB3
Volume variable (5 &ndash ; 1 000 &mu ; L) pipettesEppendorfN/A
TimerSigmaN/A
Support magnétiqueThermo FisherDynaMag-2 12321D
Cône de tableHeathrow ScientificSprout
MixerLMSVTX 3000L
Cycler PCR en temps réelRocheLight Cycler ; N° de série 5662
PCR CyclerApplied BiosystemsGene Amp PCR System 9700
Système de contrôle de la qualité de l’ADN et de l’ARNAgilentAgilent 4200 TapeStation
ForcepsDumont5-Inox-H
Cuillère perforéeWorld precision instruments501997
SLB2659V Mix System

Références

  1. Jenuwein, T., Allis, C. D. Translating the histone code. Science. 293 (5532), 1074-1080 (2001).
  2. Kouzarides, T. Chromatin modifications and their function. Cell. 128 (4), 693-705 (2007).
  3. Wang, Z., Schones, D. E., Zhao, K.

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Réimpressions et autorisations

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