Summary
نحن نقدم طريقة الجمع بين تسجيلات المشبك تصحيح كامل الخلية واثنين-فوتون التصوير لتسجيل Ca2 + العابرين في dendrites العصبية في الدماغ الحادة شرائح.
Abstract
تصوير الكالسيوم (Ca2 +) أداة قوية للتحقيق في ديناميات الزمانية المكانية Ca2 + الإشارات داخل الخلايا في الخلايا العصبية dendrites. يمكن أن يحدث من خلال مجموعة متنوعة من آليات داخل الخلية والغشاء Ca2 + تقلبات وتلعب دوراً حاسما في تحريض اللدونة متشابك والتنظيم لاستثارة الجذعية. ومن ثم فالقدرة على تسجيل أنواع مختلفة من Ca2 + إشارات في فروع الجذعية قيماً لمجموعات دراسة كيفية دمج dendrites المعلومات. ظهور مجهرية اثنين-فوتون جعلت هذه الدراسات أسهل بكثير عن طريق حل المشاكل الملازمة للتصوير في الأنسجة الحية، مثل نثر الخفيفة ود. وعلاوة على ذلك، من خلال مجموعة من التقنيات الكهربية التقليدية مع اثنين-فوتون Ca2 + التصوير، فمن الممكن للتحقيق المحلي Ca2 + التقلبات في الخلايا العصبية dendrites جنبا إلى جنب مع تسجيلات النشاط متشابك في سوما. هنا، نحن تصف كيفية استخدام هذا الأسلوب لدراسة ديناميات محلية Ca2 + العابرين (القطط) في dendrites جابايرجيك إينتيرنيورونس المثبطة. الأسلوب يمكن تطبيقها أيضا على دراسة الجذعية Ca2 + إشارات في مختلف أنواع الخلايا العصبية في الدماغ الحادة شرائح.
Introduction
المساهمة من خلية إلى نشاط الشبكة يتحدد إلى حد كبير بالطابع الدينامي للمدخلات متشابك التي يتلقاها. تقليديا، يعتمد الأسلوب السائد لوصف النشاط متشابك في الخلايا العصبية على تسجيلات المشبك التصحيح كل خلية جسدية من تيارات بوستسينابتيك أثارت قبل التحفيز الكهربائي لمحاور عصبية مرور. ومع ذلك، يقال صدق النشاط الوحيد لنهايات بروكسيمالي يقع في هذه الحالة1. وبالإضافة إلى ذلك، قد استخدمت لتقييم الآليات الخاصة بالمشبك، تسجيلات من أزواج من الخلايا العصبية ومن dendrites في موقع معين لاستهداف نقاط الاشتباك العصبي للفائدة وآليات التكامل الجذعية، على التوالي. وقد تحقق إنجازا كبيرا في مجال الفسيولوجيا متشابك عن طريق أج تقنيات الضوئية والكهربية. اثنين-فوتون الإثارة الليزر الفحص المجهري (2PLSM) في تركيبة مع Ca2 + تصوير وأدوات أوبتوجينيتيك يمكن أن تكشف عن تفاصيل هائلة لمنظمة دينامية النشاط متشابك في الاتصالات العصبية محددة في الدماغ شرائح في المختبر و في فيفو.
العديد من المزايا الرئيسية التي 2PLSM تبرز من الفحص المجهري الإثارة التقليدية، واحد-فوتون2: (1) نظراً لطابع غير خطية للإثارة اثنين-فوتون، يتم إنشاؤها الأسفار فقط في حجم الاتصال، وتمثل جميع الفوتونات المنبعثة إشارات مفيدة (لا حاجة للثقب)؛ (2) أطول الأطوال الموجية، المستخدمة في 2PLSM، اختراق الأنسجة ونثر أكثر كفاءة؛ وبالإضافة إلى ذلك، الفوتونات متناثرة مخفف جداً لإنتاج اثنين-فوتون الإثارة والأسفار الخلفية؛ (3) د ولالضيائيه محدودة أيضا إلى المستوى البؤري. ولذلك، يظل 2PLSM على الرغم من ارتفاع تكاليف نظم 2-فوتون بالمقارنة مع التقليدية [كنفوكل] المجاهر، أسلوب الاختيار للتحقيق ذات الدقة العالية لهيكل الخلايا العصبية ووظيفتها في الأنسجة الحية سميكة.
وكان أول تطبيق ل 2PLSM في الأنسجة ونثر صورة هيكل ووظيفة العمود الفقري الجذعية3. وكشفت 2PLSM في تركيبة مع Ca2 + تصوير تلك الوظيفة الأشواك كالمقصورات البيوكيميائية معزولة. إذ يوجد في العديد من أنواع الخلايا العصبية وجود تناظر رأس برأس بين العمود الفقري ونهايات فردية4، اثنين-فوتون Ca2 + التصوير قريبا أصبح أداة مفيدة الإبلاغ عن نشاط نهايات الفردية في أنسجة سليمة5، 6،،من78. وعلاوة على ذلك، على أساس 2PLSM Ca2 + التصوير استخدمت بنجاح لرصد نشاط قنوات الكالسيوم واحد والتفاعلات غير الخطية بين كوندوكتانسيس الذاتية ومتشابك، فضلا عن تقييم الدولة والنشاط-تعتمد على تنظيم Ca2 + إشارات في dendrites العصبية5،،من67،،من89،10،11.
الكالسيوم رسول ثانية داخل الخلايا في كل مكان، وفي تنظيم الزمانية المكانية سوبسيلولار يحدد اتجاه ردود الفعل الفسيولوجية، من التغيرات في قوام متشابك لتنظيم أيون القنوات، النمو تغصن والعمود الفقري، كما كذلك موت الخلية والبقاء على قيد الحياة. Ca2 + المرتفعات الجذعية تحدث عن طريق تفعيل مسارات متعددة. فتح قنوات الكالسيوم الجهد عن طريق بوابة12 إمكانات العمل (الجزائرية)، باكبروباجاتينج إلى dendrites، وإنتاج العالمية نسبيا Ca2 + العابرين (القطط) في dendrites والاشواك13. ويرتبط انتقال متشابك مع التنشيط من كاليفورنيا بوستسينابتيك2 +-مستقبلات نفاذية (نمدا، Ca2 +-نفاذية امبا وكينيت)، أحداث متشابك القطط6،،من1415. وأخيراً، يمكن أن تتولد سوبرالينير Ca2 + الأحداث في dendrites تحت بعض الظروف11،12،،من1316.
اثنين-فوتون Ca2 + تصوير في تركيبة مع التصحيح-المشبك التسجيلات الكهربية توظف Ca الاصطناعية2 +-مؤشرات الفلورسنت الحساسة، التي تقدم عادة من خلال مسرى التصحيح أثناء تسجيلات كامل الخلية . ويستند أسلوب قياسي للتحديد الكمي لديناميات Ca2 + 17،الأسلوب المزدوج المؤشر18. يستخدم fluorophores اثنين مع المنفصلين عن ذويهم أيضا انبعاثات الأطياف (مثلاً، وهو مزيج من كاليفورنيا الأحمر2 +-صبغة غير حساسة مع الأخضر Ca2 + المؤشرات، مثل ولاية أوريغون الأخضر باتا-1 أو 4 قطع) ومزايا عديدة مقارنة الأسلوب مؤشر واحد. أولاً، Ca2 +-يستخدم صبغة غير حساسة لتحديد هياكل صغيرة للفائدة (فروع الجذعية والاشواك) حيث سيتم تنفيذ Ca2 + تصوير. ثانيا، يتم حساب النسبة بين التغير في الأسفار الأخضر والأحمر (ΔG/R) كتدبير من [Ca2 +]، التي إلى حد كبير حساس للتغيرات في الأسفار الأساس نتيجة لتقلبات في [Ca2 +[017 , 18-وعلاوة على ذلك، يمكن معايرة fluorescence التغييرات من حيث المطلق Ca2 + تركيزات19.
قلق عام عند تشغيل اثنين-فوتون Ca2 + تصوير التجارب في شرائح الحاد هو صحة الخلية والاستقرار لاقتناء الصورة بسبب الليزر عالية الطاقة المستخدمة عادة. بالإضافة إلى ذلك، في Ca2 + تجارب التصوير، هناك قلق حول اضطراب والمبالغة في تقدير كبير من Ca2 + ديناميات سوبسيلولار يرجع ذلك إلى حقيقة أن Ca2 + المؤشرات بمثابة الكثيري خارجية Ca2 + المخازن المؤقتة. وبالتالي، يعتمد اختيار Ca2 + المؤشر وتركيزه على نوع الخلايا العصبية، السعة المتوقعة للقطط، وفيما يتعلق بمسألة تجريبية.
علينا تكييف طريقة اثنين-فوتون Ca2 + تصوير للتحقيق من Ca2 + التقلبات في dendrites جابايرجيك إينتيرنيورونس9،،من1011،،من2021 , 22-في حين أن الجزء الأكبر من أوائل Ca2 + التصوير دراسات أجريت في الخلايا العصبية الرئيسية، إينتيرنيورونس المثبطة عرض مجموعة كبيرة ومتنوعة من Ca2 + الآليات الوظيفية التي تختلف عن تلك الموجودة في الخلايا الهرمية20 , 23 , 24-هذه الآليات إينتيرنيورون على حدة (مثلاً، Ca2 + نفاذية امبا مستقبلات) قد تؤدي أدواراً محددة في تنظيم نشاط الخلية. بينما الجذعية Ca2 + إشارات في إينتيرنيورونس هدفا مغريا لإجراء مزيد من التحقيقات، اثنين-فوتون Ca2 + التصوير في dendrites من هذه الخلايا يطرح تحديات إضافية، من أرق قطره dendrites وعدم وجود الأشواك إلى مرتفعة بوجه خاص Ca2 + ربط قدرات ذاتية. كمصالح لدينا أبحاث تركز على دراسة إينتيرنيورونس هيبوكامبال، البروتوكول التالية، في حين تنطبق على مختلف قطاعات السكان العصبية، تم تكييفها للتعامل مع تلك التحديات.
تم تنفيذ هذا البروتوكول مع مجهر اثنين-فوتون [كنفوكل] تجارية، مزودة بكاشفات الخارجية، غير ديسكانيد اثنين (المواظبة) والكهربائية-البصرية المغير (الانتخابات)، ودوت المسح تباين التدرج (SGC)، ومثبتة على طاولة بصرية. المجهر اقترن بليزر مولتيفوتون Ti:Sapphire وضع تأمين 800 نانومتر (> 3 ث، خ نبضات 140، معدل الرسوب 80 هرتز). تم تجهيز نظام التصوير مع تلاعب الكهربية قياسية، بما في ذلك دائرة التروية مع التحكم في درجة الحرارة، منصة ترجمة مع ميكرومانيبولاتورس اثنين، مكبر للصوت ميكروليكترودي الكمبيوتر التي تسيطر عليها، وجهاز الالتقاط رقمي، وحفز وحدة، واقتناء البيانات والبرمجيات.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
جميع التجارب التي أجريت وفقا للمبادئ التوجيهية للجنة حماية الحيوان من جامعة لافال، والمجلس الكندي للعناية بالحيوان الرفق بالحيوان.
1-أولى إعداد (اختياري: إعداد يوم 1 مقدما)
- إعداد ثلاثة أنواع من السائل الدماغي النخاعي الاصطناعية (قام) الحل (كل من عادي، السكروز وحلول الاسترداد، 1 L؛ انظر الجدول 1). ضبط أوسمولاليتي الحلول ل موسم ± 10 30025 وبارد قام-السكروز وصولاً إلى نقطة بالقرب من تجميد (0-4 درجة مئوية).
ملاحظة: استخدام حل قطع منخفضة الصوديوم (قام-السكروز) يساعد في الحفاظ على بقاء الخلايا العصبية في الطبقات السطحية لشرائح الحادة26. - إعداد 0.75 مل من التصحيح-الحل الذي يحتوي على فلوروفوري أحمر (مثلأليكسا-594) ومؤشر أخضر كالسيوم اصطناعية (مثلاً، ولاية أوريغون الأخضر باتا-1؛ انظر الجدول 1). وتشمل بيوسيتين (انظر الجدول 1) في التصحيح-الحل إذا كان مطلوب وظيفة المخصصة تحديد الخلايا مسجل المورفولوجية.
- ضبط osmolality الحل إلى 280 ± 5 موسم ودرجة الحموضة إلى 7.35 ± 0.5. يبقى الحل في الثلاجة أو على الجليد في جميع الأوقات.
ملاحظة: اختيار مؤشر الكالسيوم ينبغي أن تستند إلى نطاق ديناميكي وطبيعة التحقيق Ca2 + الأحداث. - باستخدام ساحبة ميكروبيبيتي، إعداد الماصات التصحيح من زجاج البورسليكات الشعيرات الدموية (انظر الجدول للمواد) مع تلميح 2 ميكرومتر ≈ (مقاومة ماصة MΩ 3-5) والتحفيز الماصات من البورسليكات الزجاج ثيتا الشعيرات الدموية (انظر الجدول من المواد) مع تلميح 2-5 ميكرومتر.
ملاحظة: سيتم تحديد إعدادات ساحبة جعل الممصات قطر معين والشكل حسب نوع خيوط ساحبة ونتائج اختبار الانحدار لنوع معين من الزجاج.
2. إعداد الشريحة هيبوكامبال
- تخدير الماوس (P13-20؛ والسلالة والجنس من الماوس تتحدد بمسألة تجريبية تعالج) مع 1 مل إيسوفلوراني توضع على منشفة ورقية داخل دائرة الخدر لاستنشاق. عند عمق تخديره الحيوان، كما يدل على ذلك انعدام الحركة والتنفس البطيء، إزالته من غرفة التخدير وقطع رأس باستخدام مقصلة.
- كشف الجمجمة بقطع الجلد مع زوج صغيرة من مقص من الجزء الخلفي الجمجمة إلى الآنف. استخدام زوج صغيرة من العظم ميني رونجيورس جعل ثقب على مستوى بريجما. ثم استخدام المقص لجعل قطع والذيلية إلى روسترال على طول خياطة السهمي. مع رونجيورس فهم الجزء الخلفي من كل رفرف الجمجمة ورفع إلى أعلى وإلى الخارج لإزالة الجمجمة تغطي كل نصف الكرة الأرضية.
- بعد تماما يتعرض الدماغ، تتقلص الأعصاب البصرية مع ملعقة صغيرة. إزالة الدماغ من الجمجمة، ووضعه في طبق بتري تحتوي على استمرار السكروز قام اﻷوكسيجين، الباردة (انظر الجدول 1 لتركيز السكروز).
- إذا كان مطلوباً الأنسجة من الفئران الأكبر سنا، أداء نضح إينتراكاردياك استخدام المحاقن (25 غ) مليئة 20 مل سكروز قام المثلج قبل استخراج الدماغ للحصول على شرائح ذات نوعية جيدة.
- إعداد شرائح هيبوكامبال من الدماغ الحيواني المستخرج.
- واسمحوا البرد الدماغ لحوالي 2 دقيقة ضع قطعة من ورق الترشيح على طبق بيتري "معبأة الجليد"، نقل المخ على الورق عامل التصفية. تشريح نصفي.
- الصق في نصفي الكرة الأرضية تشريح (الاتجاه يحدده الهدف التجريبية للحصول على شرائح مستعرضة، أو الأفقي coronal،) على جدول فيبرتوم وتزج أنه في علبة فيبرتوم مليئة قام اﻷوكسيجين المثلج-السكروز. جعل 300 ميكرون الشرائح سميكة عند درجة حرارة حوالي 1 درجة مئوية باستخدام فيبرتوم برودة أو بوضع الثلج حول علبة فيبرتوم.
- باستخدام فرشاة طلاء مسطحة، تتراكم الشرائح المحتوية على الحصين (تصل إلى 6 شرائح كل نصف الكرة الأرضية) في حمام يحتوي على استرداد قام اﻷوكسيجين تسخينها إلى 37 درجة مئوية.
- تترك الشرائح في الحمام قام-الإنعاش لمدة 45 دقيقة على الأقل.
3. تسجيلات المشبك تصحيح كامل الخلية
- تعيين شريحة هيبوكامبال في مكان في حمام المتمركزة في إطار الهدف (التكبير: 40 ×، الفتحة العددية: 0.8) مجهر مسح ليزر اثنين-فوتون. نتخلل الحمام باستمرار مع اﻷوكسيجين العادي قام ساخنة في 30-32 درجة مئوية بمعدل 2.5-3 مل/دقيقة.
- استخدم التباين التدخل التفاضلية الأشعة تحت الحمراء (IR-DIC) أو مجهرية SGC دودت إلى موقع خلية للاهتمام باستخدام حجم، وشكله، وموقف.
ملاحظة: اعتماداً على السكان المستهدفين العصبية، ويمكن استخدام نموذج الفأر وراثيا بسهولة تحديد موقع الخلايا التي تهم. وفي هذه الحالة، يمكن أن يكون محل هذه الخطوة باستخدام مصدر ضوء الفلورسنت. - ملء ماصة تحفيز مع حلاً قام عادي الذي يحتوي على فلوروفوري أحمر (مثلأليكسا-594).
- تعيين ماصة التحفيز (متصلة بوحدة تحفيز كهربائي) على رأس الشريحة حيث يكون الطرف في المنطقة ذاتها كالخلية للفائدة.
- بعد ملء الماصة التصحيح مع تصحيح الحل وإرفاقها إلى مرحلة رأس، وضعه على الشريحة حيث يكون طرفها مباشرة فوق الخلية للفائدة.
- تناسب حقنه محبس الحنفية الثلاثية وتوصيله إلى التصحيح-الماصة من خلال أنبوب بلاستيكي. الضغط الإيجابي المستمر بحقن ماصة التصحيح (≈ مل 0.1) استخدام المحاقن. الاحتفاظ محبس الحنفية في موقف "إغلاق".
- تنشيط وحدة برمجيات التحكم مكبر للصوت، وقم بالتبديل إلى وضع المشبك الجهد عن طريق النقر فوق الزر "الرأسمالي". فتح برنامج اقتناء البيانات الكهربية (مثلاً، كلامبيكس) للحصول على الإشارات الكهربية وانقر على أيقونة "اختبار الغشاء" لأنها باستمرار إرسال نبضة جهد مربعة (5 mV، 10 مللي ثانية)، التي ضرورية لمراقبة التغيرات في المقاومة ماصة.
- أقل ماصة التصحيح حتى والحق في أعلى الخلية المستهدفة. عند إجراء الاتصال مع غشاء الخلية، إزالة الضغط عن طريق تحويل في محبس الحنفية إلى موقف "فتح".
ملاحظة: الاتصال مع غشاء الخلية يتم الكشف عن عند زيادة صغيرة في المقاومة ماصة (≈ 0.2 MΩ) وينظر ويسببه الضغط الإيجابي المسافة بادئة صغيرة في الخلية. - تطبيق ضغط سلبي طفيف على ماصة التصحيح باستخدام حقنه فارغة تركيبها في محبس الحنفية حتى تصل مقاومة ماصة المقدمة من البرنامج إلى 1 GΩ. في إطار '"اختبار الغشاء"' برنامج اقتناء البيانات، المشبك الخلية عند-60 أم.
- مواصلة تطبيق الضغط السلبي حتى يتم فتح الخلية ويتحقق تكوين كامل الخلية. الكشف عن هذه الخلية الدولة يستند إلى التغير المفاجئ في المقاومة ماصة (من 1 GΩ إلى MΩ 70-500 تبعاً لنوع إينتيرنيورون) وظهور العابرين بالسعة الكبيرة في نافذة '"اختبار الغشاء"'.
4-اثنين-فوتون Ca2 + تصوير
- إذا كانت مهتمة في الردود بوستسينابتيك ضادات، إضافة جابازيني مانع مستقبلات GABAA (10 ميكرون) ومانع مستقبلات GABAب CGP55845 (2 ميكرومتر) في الحمام قام.
- في مكبر للصوت برامج وحدة التحكم، تعيين تكوين التصحيح الحالية-المشبك بالنقر فوق الزر "نسخة" وتسجيل نمط الخلية إطلاق النار ردا على حقن جسدية من ديبولاريزينج الحالي (0.8-1.0 غ، 1 s). انتظر 30 دقيقة على الأقل للخلية تكون مليئة بالمؤشرات الحالية في حل التصحيح.
ملاحظة: الخلية نمط إطلاق النار وخصائص نشطة يمكن استخدامها لتحديد النوع الفرعي للخلية؛ مثلخلايا النتوءات سريعة. من المهم تركيز المؤشر لتحقيق الاستقرار من خلال نشر قبل البدء في تسجيل القطط (انظر الجدول 2 لاستكشاف الأخطاء وإصلاحها). - أ فب-أثارت القطط
- ابدأ باستخدام صورة اقتناء برامج الحصول على الصور. قم بتحديد موقع تغصن الاهتمام باستخدام إشارة حمراء الأسفار. لضمان استجابة مرئية، اختر أولاً، تغصن الدانية (≤ 50 ميكرومتر) كفاءة AP backpropagation قد تراجع إلى حد كبير مع المسافة في جابايرجيك إينتيرنيورونس22.
- باستخدام 'أداة مستطيلة' في صورة اقتناء البرمجيات، التكبير والتصغير في المنطقة المستهدفة، وقم بالتبديل إلى "xt" وضع (linescan). وضع المسح الضوئي عبر فرع الجذعية للفائدة. مع وحدة تحكم كثافة الليزر في اقتناء البرمجيات، تعيين الليزر اثنين-فوتون على مستوى الحد أدنى من سلطة حيث fluorescence الأساس الأخضر مرئياً قليلاً فقط، لتجنب الضيائية.
- في برنامج اقتناء الكهربية البيانات 'بروتوكول' الإطار والصورة اقتناء البرمجيات، إنشاء محاكمة تسجيل المدة المطلوبة تتضمن حقنه الحالية جسدية من السعة المطلوبة.
- استخدام برنامج اقتناء الصور، انقر فوق الزر "بدء تشغيل السجل" والحصول على الأسفار بشكل مستمر لتكرار س. 1-2 الحصول على الصورة 3-10 مرات. الانتظار على الأقل 30 ثانية بين مسح واحد لتجنب د. إذا كان الحصول على لينيسكانس في نقاط متعددة على طول تغصن، أخذها في ترتيب عشوائي لتجنب آثار النظام.
- أثارت سينابتيكالي القطط
- قم بتحديد موقع تغصن الاهتمام باستخدام إشارة حمراء الأسفار.
- تعيين ماصة التحفيز على سطح الشريحة أعلاه تغصن من الفائدة. انخفاض ببطء ماصة التحفيز في مكانها، التقليل من الحركة لتجنب الإخلال بتكوين كامل الخلية. موقف الماصة في 10-15 ميكرون من تغصن.
- تصور موقع ميكرودومينس متشابك في أسبيني dendrites، في صورة اقتناء برامج التحول إلى 'xt' وضع (linescan) وضع خط طول الفرع الجذعية للفائدة.
- في نافذة 'بروتوكول' (من برنامج اقتناء البيانات الكهربية) وبرنامج اقتناء الصور، قم بإنشاء محاكمة تسجيل الذي يقوم بتشغيل وحدة التحفيز بعد بدء المحاكمة.
- باستخدام البرمجيات، واقتناء انقر فوق الزر "بدء تشغيل السجل" للمسح الضوئي على طول تغصن باستمرار لاكتساب تكرار س. 1-2 3-5 مرات، الانتظار 30 ثانية بين مسح لمنع د.
ملاحظة: يمكن تعديلها تبعاً لحركية الحدث مقولة طول المسح الضوئي، ولكن ينبغي التقليل من منع د (انظر الجدول 2 لاستكشاف الأخطاء وإصلاحها). - كرر الخطوة 4.5.5 في ظروف مختلفة (مثلاً، كثافة/طول مختلفة من التحفيز، وإدخال مانع الدوائية، و ما إلى ذلك) اعتماداً على مسألة محددة يجري تناولها.
- التوقف عن شراء عند الخلية يظهر علامات على تدهور الصحة: depolarization أدناه-45 mV، الزيادة في الأساس Ca2 + مستوى، تدهور المورفولوجية dendrites (مثلاً، بلبينغ، تجزئة؛ انظر الجدول 2 لاستكشاف الأخطاء وإصلاحها).
- للحصول على معلومات أولية عن مورفولوجيا للخلية والاحتفاظ بسجل لموقع ماصة التحفيز واكتساب Z-كومة من الخلية في القناة الحمراء. استخدام برنامج اقتناء في 'xyz' الوضع، تعيين حدود المكدس العلوية والسفلية الصورة الخلية بأكملها مع كافة العمليات المدرجة. تعيين 'حجم الخطوة' في 1 ميكرومتر، والشروع في اقتناء المكدس باستخدام الزر "بدء تشغيل السجل".
- عندما Z-اقتناء مكدس كامل، استخدم الخيار "الإسقاط كحد أقصى" في البرنامج إلى ركب جميع خطط التنسيق من المكدس والتحقق من نوعية حيازة. ثم تتراجع ببطء ماصة التصحيح خارج الشريحة.
- لإصلاح الشريحة لتحديد الخصائص المورفولوجية وظيفة المخصص ، بسرعة إزالة الشريحة من حمام استخدام فرشاة طلاء مسطحة، ووضعه بين ورقتي التصفية، في طبق بتري مملوءة قام. استبدال قام بحل بارافورمالدهيد (PFA) 4% وترك الطبق في غرفة 4 درجات مئوية أو الثلاجة بين عشية وضحاها.
5-إيمونوهيستوتشيميستري لتحديد الخلايا مسجل المورفولوجية الوظيفة المخصصة
ملاحظة: بعد ليلة 1 للتثبيت في منهاج عمل بيجين، الشريحة يمكن تخزينها في المخزن المؤقت للفوسفات (PB) مع أزيد الصوديوم (0.5%) لمدة تصل إلى شهر واحد.
- وضع الشريحة في تريس مخزنة المحلول الملحي (تبس) مع Triton X-100 (0.3 في المائة)، وأداء يغسل 4 (5-10 دقيقة كل).
- وضع الشريحة في تبس-تريتون 0.3% مع 10% مصل الماعز العادي (خ ع) ح 1.
- وضع الشريحة في تبس-تريتون 0.3% مع 1% خ ع و fluorophore Streptavidin مترافق (مثلاً، Streptavidin مترافق أليكسا فلور 546، 1: 200) لليلة وضحاها الحضانة.
- أغسل 4 مرات (5-10 دقيقة) في tbs.
- تحميل الشرائح على شرائح المجهر والصورة باستخدام مجهر [كنفوكل]. لإعادة إنشاء خلية كاملة، اكتساب Z-المكدس (الخطوة الحجم: 1 ميكرومتر) استخدام هدفا 20 x. بالنسبة للتصوير على تسمية أليكسا-546-مترافق، تعيين استخدام ليزر نانومتر 543 والكشف عن 515-560 نانومتر تصفية.
6-تحليل القطط
- استخراج القيم الأسفار من مناطق الاهتمام (رويس) في الصور linescan من قنوات الأحمر والأخضر ومتوسط قيم يكرر متعددة لكل شرط للحد من الضوضاء.
ملاحظة: عند اقتناء linescan على طول تغصن, من الممكن استخراج بيانات من رويس المتعددة، التي قد تتوافق مع ميكرودومينس الجذعية (2-5 ميكرومتر)، ومما يسمح دراسة لتجزئة Ca2 + إشارة. - لكل عائد الاستثمار، التعبير عن التغيرات التي حدثت في Ca2 + السعة ك:
ملاحظة: هنا ز قيمة الأسفار من قناة الأخضر؛ ز0 هو قيمة الأسفار الأساس من قناة الأخضر خلال فترة ما قبل التحفيز؛ R هي قيمة الأسفار من القناة الحمراء18. اثنين-فوتون الإثارة العالية مترجمة ولا يؤدي إلى إنشاء خلفية كبيرة، طرح الأسفار الخلفية غير مطلوب.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
باستخدام بروتوكول المعروضة هنا، حصلنا على القطط أثارت طريق الحقن الحالية جسدية والتحفيز الكهربائي في dendrites oriens/ألفيس إينتيرنيورونس في منطقة CA1 الحصين. بعد الترقيع خلية، حدد استناداً إلى الشكل والموقف، اكتسبنا لينيسكانس عبر تغصن الدانية في نقاط متعددة في ضوء المسافات من سوما (الشكل 1A). لاحظنا انخفاضا في السعة للقطط التي تحدثها باكبروباجاتينج وكالة الأنباء الجزائرية كالمسافة من سوما زاد (تشير إلى انخفاض AP السعة أو انخفاض المسافة تعتمد على التوزيع قناة الكالسيوم، و الشكل 1B). بعد إيمونوهيستوتشيميستري (باستخدام أليكسا مترافق Streptavidin فلور 546)، كنا قادرين على استرداد العلامات بيوسيتين الخلية وتحديد الخلايا العصبية مسجل كخلية بيستراتيفيد مع إكسون الاحتلال oriens الطبقة والطبقة رادياتوم (الشكل ج 1). في التجربة الثانية، عرضت ماصة تحفيز موقع الجذعية البعيدة. المسح الضوئي على طول تغصن، كنا ثم قادرة على تقييم السعة من Ca2 + إشارات بوستسينابتيك في فرع معين الجذعية (الشكل 2A–ج) استجابة للتحفيز الكهربائي لمحاور عصبية مرور. القطط بوستسينابتيك تختلف بين ميكرودومينس الجذعية المجاورة (الجزء 1 إلى 6؛ الشكل 2D)، التي يمكن أن تترافق مع انتشار Ca2 + إشارة من المنطقة لبدء و/أو آليات بوستسينابتيك المختلفة المعنية.
رقم 1: مثال أثارت AP Ca2 + العابرين. (أ) الحد الأقصى الإسقاط من اثنين-فوتون Z-المكدس (13 ميكرومتر) من إينتيرنيورون مصححة مليئة أليكسا-594 (20 ميكرومتر). خطوط بيضاء تدل على موقع وطول لينيسكانس. (ب) آثار عرض القطط أثارت في المواقع التي تظهر في أعلى أ تتبع يظهر القطار AP القصيرة التي تم إنشاؤها عن طريق الحقن الحالية جسدية أثناء التسجيل للمحاكمة. مقياس الوقت هو نفسه على جميع آثار سيظهر. (ج) كحد أقصى الإسقاط من [كنفوكل] Z-كومة عرض العلامات بيوسيتين للخلية. O/A: أورينس/ألفيس؛ PYR: طبقة بيراميدالي؛ راد: رادياتوم الطبقة. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
الشكل 2: بوستسينابتيك Ca2 + العابرين أثارت قبل انفجار للتحفيز الكهربائي (المحفزات 3 في 100 هرتز). (أ) الحد الأقصى الإسقاط من اثنين-فوتون Z-المكدس (148 ميكرومتر) عرض إينتيرنيورون مصححة مليئة أليكسا-594. رؤوس الأسهم البيضاء أشر إلى موقع المحطات محواري ضمن الطبقة الهرمية، مما يوحي إينتيرنيورون خلية سلة. (ب) المستوى البؤري واحد يوضح الفرع الجذعية حيث تم وضع مسرى التحفيز. خط متقطع يظهر موقع linescan المبين في (C1 و C2). (ج) الصور التي توضح نتيجة linescan باللون الأحمر (1؛ أليكسا-594؛ 20 ميكرومتر) والأخضر (2؛ ولاية أوريغون الأخضر باتا-5N؛ قنوات 300 ميكرومتر). تم إهمال الصور إلى أجزاء أصغر لتحليل انتشار ردا ما يزيد على 30 ميكرومتر. (د) آثار عرض Ca2 + العابرين (CaTs) أثارت في القطع المعروضة في الخلية C2. إظهار تتبع أعلى الجهد استجابة للتحفيز الكهربائي المسجلة على الصعيد الجسدي أثناء المحاكمة التصوير. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
| الحل | المكون | تركيز (مم) |
| قام عادي | كلوريد الصوديوم | 124 |
| بوكل | 2.5 | |
| NaH2بو4 | 1.25 | |
| مجسو4 | 2 | |
| ناكو3 | 26 | |
| الجلوكوز | 10 | |
| كاكل2 | 2 | |
| قام-الإنعاش | كلوريد الصوديوم | 124 |
| بوكل | 2.5 | |
| نة2بو4 | 1.25 | |
| مجسو4 | 3 | |
| ناكو3 | 26 | |
| الجلوكوز | 10 | |
| كاكل2 | 1 | |
| قام-السكروز | بوكل | 2 |
| نة2بو4 | 1.25 | |
| مجسو4 | 7 | |
| ناكو3 | 26 | |
| الجلوكوز | 10 | |
| السكروز | 219 | |
| كاكل2 | 1 | |
| ك+-تصحيح الحل القائم | ك+-غلوكونات | 130 |
| حبيس | 10 | |
| MgCl2 | 2 | |
| فوسفوكريتين دي (تريس) الملح | 10 | |
| ATP-تريس | 2 | |
| أنشئ-تريس | 0.2 | |
| بيوسيتين | 72 | |
| أليكسا-594 | 0.02 | |
| ولاية أوريغون الأخضر-باتا-1 | 0.2 |
الجدول 1: وصفات الحل. المركبات وتركيزات للحلول المستخدمة خلال البروتوكول.
| المشكلة | الحل |
| غير قادر على تصحيح العصبية صحية | التحقق من وجود علامات على أن الشرائح غير صحية: تقلصت أو تورم خلايا ونوى مرئية، إلخ. إذا كان الأمر كذلك، تجاهل الشرائح. تحقق أيضا من المقاومة ماصة التصحيح و osmolality التصحيح الحل؛ تحل محلها إذا لم تكن القيم في النطاق المناسب. |
| إشارة الأسفار من dendrites منخفض | الانتظار لفترة أطول للخلية لملء. إذا كان هو حفظ عرقلة التصحيح--الحل من نشرها في الخلية، في محاولة لتطبيق كمية صغيرة من الضغط السلبي في التصحيح-الماصة. |
| التحفيز الكهربائي هو عدم إثارة استجابة Ca2 + | التحقق من وجود الحرفية في تسجيل الكهربية. إذا تغيب، التحقق من وجود قصيرة-سيركويت/حفز عطل وحدة. إذا كانت موجودة، رفع كثافة التحفيز أو نقل ماصة التحفيز أقرب إلى تغصن. جدير بأن المسافة بين مسرى التحفيز وتغصن ينبغي إلا يتجاوز 8 أم لمنع depolarization مباشرة من dendrites عند دراسة استجابات متشابك. |
| مقولة Ca2 + إشارة أيضا مؤشر عالي/يشبع Ca2 + | تقليل قوة الليزر. إذا استمرت المشكلة في خلايا متعددة، استخدم Ca2 + مؤشر مختلفة، مع انخفاض Ca2 + تقارب. |
| الأساس Ca2 + إشارة يزداد تدريجيا خلال التجربة | الانتظار لفترة أطول بين عمليات التفحص الفردية. إذا ما زال يتزايد الأساس، تتوقف اقتناء؛ ويشير إلى أن الصحية الخلية آخذة في الانخفاض المحتمل. |
| يقلل السعة من Ca2 + إشارة أثناء عمليات التفحص | تقليل قوة الليزر أو التصغير (إذا كان قابلاً للتطبيق). |
| تغصن هو تفتيت ("بلبينغ") بعد المسح | الحد من قوة الليزر أو التصغير. إذا بلبينغ يقتصر على تغصن المستهدفة، اختر آخر تغصن وتقليل قوة الليزر/التصغير. إذا dendrites متعددة بلبينغ، التوقف عن اقتناء. |
| إشارات الأسفار هي "الانجراف" خارج خط المسح الضوئي بعد الاحتلالات | الحد من الحركة في الشريحة بتقليل سرعة التروية قام. قبل التصحيح، جعل تأكد من أن الشريحة هو ثابت بقوة في مكان بشبكة. |
الجدول 2: استكشاف الأخطاء وإصلاحها الجدول. حلول للمشاكل الشائعة التي قد تنشأ أثناء Ca2 + تصوير التجربة.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
الأسلوب هو موضح أدناه يوضح كيف يمكن استخدام المزيج من اثنين-فوتون Ca2 + تصوير والتصحيح-المشبك الكهربية لدراسة الجذعية Ca2 + إشارات في dendrites العصبية في الدماغ الحادة شرائح. يسمح هذا الأسلوب للرصد لكلا المحلية Ca2 + المرتفعات أثارت قبل AP التحفيز أو باكبروباجاتينج الكهربائية في قطاعات الجذعية، واستجابة للخلية الجسدية. وهذا يجعل من أداة ممتازة دراسة كيفية مختلف أجزاء الشجرة الجذعية إدماج المدخلات والتواصل مع سوما. ولكن نظراً لطول التجربة، يحتاج اهتماما خاصا إيلاء صحة الخلية عن طريق الحد من استخدام طاقة الليزر للتصوير لتفادي د dendrites. يمكن أن يتحقق ذلك أيضا بتقليل مستوى التكبير، يقلل من مدة المسح الضوئي، وزيادة سرعة المسح الضوئي أثناء الحصول على الصور. التصوير إينتيرنيورون dendrites يدخل تحديات إضافية. المسح على طول تغصن ينصح dendrites من هذه الخلايا لديها لا الأشواك، لتسهيل توطين بوستسينابتيك Ca2 + ميكرودومينس. وبالإضافة إلى ذلك، نظراً لذاتية Ca2 + ربط قدرة عالية، Ca2 + المرتفعات في إينتيرنيورون dendrites أصغر وأبطأ من تلك التي تم إنشاؤها في dendrites الخلايا الهرمية. وهذا يتطلب الحصول على العديد من الصور linescan للمتوسط فضلا عن مدة طويلة بما فيه الكفاية من لينيسكانس الفردية لوصف Ca2 + إشارة حركية على نحو ملائم.
التحفيز الكهربائي المحلي استخدام الزجاج ثيتا ثنائي القطب الكهربائي يمثل أداة مفيدة لتوصيف الجذعية بوستسينابتيك Ca2 + ميكرودومينس. بيد أنه قد لا يزال تنشيط مختلف "عابرة" محاور عصبية تقع في منطقة بعينها. عدد المدخلات المنشط في هذه الحالة غير معروف، ويمكن تقدير فقط باستخدام أدوات حسابية إضافية. غلوتامات اثنين-فوتون أونكاجينج27، الذي يسمح للتحفيز المتزامن لنهايات فردية متعددة، يمثل بديلاً جيدا لاستخلاص Ca2 + الاستجابات الجذعية المحلية. هذا الأسلوب يستخدم على نطاق واسع لدراسة الخلايا الرئيسية، والتي حددت بوضوح الهياكل بوستسينابتيك ضادات (العمود الفقري)، ولكنها ليست مناسبة تماما لدراسة إينتيرنيورونس، عموما التي لها كثافة منخفضة العمود الفقري. غلوتامات أونكاجينج على طول تغصن إينتيرنيورون كما يتم تطبيقها على الخلايا الرئيسية ستكون حتما تفعيل آليات اكستراسينابتيك متعددة من Ca2 + 9،10، مما يجعل من الصعب على تفسير الإشارات الملاحظات.
في العقد الماضي، عرضت أوجه التقدم في التكنولوجيا البصرية الأزمنة محسنة لاثنين-فوتون Ca2 + التصوير. واحد الواعدة الوصول العشوائي مجهرية (منحدر) عن طريق انحراف البصرية أكوستو (أودس)،من2829. على عكس التقليدية خطوط المسح المسح الضوئي، مسح منحدر مختارة من النقاط المثيرة للاهتمام في الترددات العالية، التي يتم تمكين بسرعة بسرعة أودس خالية من الجمود. أنها مثالية للدراسة المتزامنة لفروع الجذعية متعددة، كما أنها لا تقتصر على النقاط المبينة في نمط خطي. ومع ذلك، القرار الزماني أعلى توفرها في أودس قد لا يكون ضروريا عند التصوير Ca2 + الأحداث دائم مئات من المللي ثانية ضمن خطة التنسيق نفسه. وبالإضافة إلى ذلك، قد يكون من الصعب للسيطرة بسبب الانجرافات الصغرى في شريحة الأعمال التحضيرية المرتبطة بمعدل التروية عالية، وهو أمر ضروري لشريحة جيدة النوعية موقع مسح نقاط داخل هيكل نفس الاهتمام. ومن ثم فالاسلوب اقتناء المستندة إلى linescan عالية الدقة الزمنية (500-700 هرتز) الواردة في هذه المادة لا تزال الأفضل عند التصوير Ca2 + إشارات في فروع الجذعية الفردية.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
الكتاب قد لا يوجد تضارب المصالح المالية أو غيرها تضارب في المصالح.
Acknowledgments
هذا العمل كان يدعمها مجلس المعاهد الكندية للبحوث الصحية والعلوم الطبيعية والبحوث الهندسية (منحة اكتشاف الأموال) و "مؤسسة سافوي". وأيد قائد زمالة دكتوراه من الأموال.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Animal Strain: Mouse CD1 | Charles River | 022 | |
| Isoflurane | AbbVie Corporation | 0B506-099 | |
| CGP 55845 hydrochloride | Abcam | ab120337 | |
| Calcium chloride | Sigma-Aldrich | C4901 | |
| D-(+)-Glucose | Sigma-Aldrich | G8270 | |
| HEPES | Sigma-Aldrich | H3375 | |
| Magnesium chloride | Sigma-Aldrich | M8266 | |
| Magnesium sulfate heptahydrate | Sigma-Aldrich | 230391 | |
| Paraformaldehyde powder, 95% | Sigma-Aldrich | 158127 | |
| Potassium chloride | Sigma-Aldrich | P3911 | |
| Potassium gluconate | Sigma-Aldrich | P1847 | |
| Sodium azide | Sigma-Aldrich | S2002 | |
| Sodium bicarbonate | Sigma-Aldrich | S8875 | |
| Sodium chloride | Sigma-Aldrich | S5886 | |
| Sucrose | Sigma-Aldrich | S9378 | |
| Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T9284 | |
| Trizma base | Sigma-Aldrich | T1503 | |
| Trizma hydrochloride | Sigma-Aldrich | T3253 | |
| Sodium phosphate dibasic dihydrate | Sigma-Aldrich | 71643 | |
Sodium phosphate monobasic monohydrate |
Sigma-Aldrich | S9638 | |
| Biocytin | Sigma-Aldrich | B4261 | |
| Alexa Fluor 594 Hydrazide | ThermoFisher Scientific | A10438 | |
| SR95531 (Gabazine) | Abcam | ab120042 | |
Adenosine triphosphate (ATP)-Tris |
Sigma-Aldrich | A9062 | |
Guanosine (GTP)-Na+ |
Sigma-Aldrich | G8877 | |
Oregon Green BAPTA-1 |
ThermoFisher Scientific | O6812 | |
Phosphocreatine di(tris) salt |
Sigma-Aldrich | P1937 | |
Streptavidin-conjugated Alexa-546 |
ThermoFisher Scientific | S11225 | |
Patch Borosilicate Glass Capillaries |
World Precision Instruments | 1B100F-4 | |
Theta Borosilicate Glass Capillaries |
Sutter Instrument | BT-150-10 | |
P-97 Flaming/Brown Micropipette puller |
Sutter Instrument | ||
TCS SP5 Confocal Multiphoton Microscope |
Leica Microsystems | ||
Chameleon Ultra II Ti:Sapphire multiphoton laser |
Coherent | ||
| LAS AF Imaging Acquisition Software | Leica Microsystems | ||
Temperature Controller TC-324B |
Warner Instruments | ||
MultiClamp 700B Amplifier |
Molecular Devices | ||
Digidata 1440A Digitizer |
Molecular Devices | ||
Confocal Translator |
Siskiyou | ||
Micromanipulator |
Siskiyou | ||
pClamp Data Acquisition Software |
Molecular Devices | ||
A365 Constant Current Stimulus Isolator |
World Precision Instruments | ||
Vibraplane Optical Table |
Kinetic Systems |
References
- Williams, S. R., Mitchell, S. J. Direct measurement of somatic voltage clamp errors in central neurons. Nat Neurosci. 7, 790-798 (2008).
- Denk, W., Svoboda, K. Photon upmanship: why multiphoton imaging is more than a gimmick. Neuron. 18, 351-357 (1997).
- Yuste, R., Denk, W. Dendritic spines as basic functional units of neuronal integration. Nature. 375, 682-684 (1995).
- Nimchinsky, E. A., Sabatini, B. L., Svoboda, K. Structure and Function of Dendritic Spines. Annu Rev Physiol. 64, 313-353 (2002).
- Sabatini, B. L., Svoboda, K. Analysis of calcium channels in single spines using optical fluctuation analysis. Nature. 408, 589-593 (2000).
- Mainen, Z. F., Malinow, R., Svoboda, K. Synaptic calcium transients in single spines indicate that NMDA receptors are not saturated. Nature. 399, 151-155 (1999).
- Yasuda, R., Sabatini, B. L., Svoboda, K. Plasticity of calcium channels in dendritic spines. Nat Neurosci. 6, 948-955 (2003).
- Carter, A. G., Sabatini, B. L. State-dependent calcium signaling in dendritic spines of striatal medium spiny neurons. Neuron. 44, 483-493 (2004).
- Topolnik, L., Congar, P., Lacaille, J. C. Differential regulation of metabotropicglutamate receptor- and AMPA receptor-mediated dendritic Ca2+ signals by presynaptic and postsynaptic activity in hippocampal interneurons. J Neurosci. 25, 990-1001 (2005).
- Topolnik, L., Chamberland, S., Pelletier, J. G., Ran, I., Lacaille, J. C. Activity-dependent compartmentalized regulation of dendritic Ca2+ signaling in hippocampal interneurons. J Neurosci. 29, 4658-4663 (2009).
- Camiré, O., Topolnik, L. Dendritic calcium nonlinearities switch the direction of synaptic plasticity in fast-spiking interneurons. J Neurosci. 34, 3864-3877 (2014).
- Jaffe, D. B., Johnston, D., Lasser-Ross, N., Lisman, J. E., Miyakawa, H., Ross, W. N. Thespread of Na+ spikes determines the pattern of dendritic Ca2+ entry into hippocampal neurons. Nature. 357, 244-246 (1992).
- Nakamura, T., Barbara, J. G., Nakamura, K., Ross, W. N. Synergistic release of Ca2+ from IP3-sensitive stores evoked by synaptic activation of mGluRs paired with backpropagating action potentials. Neuron. 24, 727-737 (1999).
- Kovalchuk, Y., Eilers, J., Lisman, J., Konnerth, A. NMDA receptor-mediated subthreshold Ca(2+) signals in spines of hippocampal neurons. J Neurosci. 20, 1791-1799 (2000).
- Goldberg, J. H., Yuste, R., Tamas, G. Ca2+ imaging of mouse neocortical interneurone dendrites: contribution of Ca2+-permeable AMPA and NMDA receptors to subthreshold Ca2+ dynamics. J Physiol. 551, 67-78 (2003).
- Goldberg, J. H., Lacefield, C. O., Yuste, R. Global dendritic calcium spikes in mouselayer 5 low threshold spiking interneurones: implications for control of pyramidal cell bursting. J Physiol. 558, 465-478 (2004).
- Oertner, T. G. Functional imaging of single synapses in brain slices. Exp Physiol. 87, 733-736 (2002).
- Yasuda, R., et al. Imaging calcium concentration dynamics in small neuronal compartments. Sci STKE. 219, pl5 (2004).
- Maravall, M., Mainen, Z. F., Sabatini, B. L., Svoboda, K. Estimating intracellular calcium concentrations and buffering without wavelength rationing. Biophys J. 78, 2655-2667 (2000).
- Camiré, O., Topolnik, L. Functional compartmentalization and regulation of postsynaptic CaTs in inhibitory interneurons. Cell Calcium. 52, 339-346 (2012).
- Guet-McCreight, A., Camiré, O., Topolnik, L., Skinner, F. K. Using a semi-automated strategy to develop multi-compartment models that predict biophysical properties of interneuron-specific 3 (IS3) cells in hippocampus. eNeuro. 3, 1-26 (2016).
- Evstratova, A., Chamberland, S., Topolnik, L. Cell type-specific and activity-dependent dynamics of action potential-evoked Ca2+ signals in dendrites of hippocampal inhibitory interneurons. J Physiol. 589, 1957-1977 (2011).
- Topolnik, L. Dendritic calcium mechanisms and long-term potentiation in cortical inhibitory interneurons. Eur J Neurosci. 35, 496-506 (2012).
- Camiré, O., Lacaille, J. C., Topolnik, L. Dendritic Signaling in Inhibitory Interneurons: Local Tuning via Group I Metabotropic Glutamate Receptors. Front Physiol. 3, 259 (2012).
- Bourque, C. W. Central mechanisms of osmosensation and systemic osmoregulation. Nat RevNeurosci. 9, 519-531 (2008).
- Aghajanian, G. K., Rasmussen, K. Intracellular studies in the facial nucleus illustrating a simple new method for obtaining viable motoneurons in adult rat brain slices. Synapse. 3, 331-338 (1989).
- Pettit, D. L., Wang, S. S., Gee, K. R., Augustine, G. J. Chemical two-photon uncaging: anovel approach to mapping glutamate receptors. Neuron. 19, 465-471 (1997).
- Salomé, R., et al. Ultrafast random-access scanning in two-photon microscopy usingacousto-optic deflectors. J Neurosci Methods. 154, 161-174 (2006).
- Lechleiter, J. D., Lin, D. T., Sieneart, I. Multi-photon laser scanning microscopy using an acoustic optical deflector. Biophys J. 83, 2292-2299 (2002).
