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Article de méthode

Une analyse optique pour le recyclage de vésicule synaptique dans les neurones en culture surexprimant protéines présynaptiques

7.4K vues

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DOI :

10.3791/58043

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26 juin 2018

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Dans cet article

Résumé

Nous décrivons une analyse optique des vésicules synaptiques (SV) recyclage dans les neurones en culture. Alliant ce protocole de transfection double pour exprimer un marqueur présynaptique et la protéine d’intérêt permet de localiser les sites présynaptiques, leur Vésicule synaptique capacité de recyclage et déterminer le rôle de la protéine d’intérêt.

Résumé

À terminaisons nerveuses présynaptiques actives, les vésicules synaptiques subissent des cycles d’exo - et l’endocytose. Lors du recyclage, les domaines luminales de protéines transmembranaires SV deviennent exposés à la surface cellulaire. Une de ces protéines est synaptotagmine-1 (Syt1). Un anticorps dirigé contre le domaine luminal de Syt1, une fois ajoutée au milieu de culture, est repris pendant le cycle exo-endocytose. Cette absorption est proportionnelle à la quantité de recyclage de la SV et peut être quantifiée par immunofluorescence. Ici, nous combinons l’absorption anticorps Syt1 avec double transfection des neurones hippocampal cultivés. Cela permet de nous (1) localiser les sites présynaptiques basées sur l’expression du marqueur présynaptique recombinant synaptophysine, (2) déterminer leurs fonctionnalités à l’aide de l’absorption Syt1 et (3) caractérisent le ciblage et les effets d’une protéine d’intérêt, GFP-Rogdi.

Introduction

Étudier le recyclage de la vésicule synaptique est importante pour déterminer comment les propriétés présynaptiques changent, soit au cours de la plasticité synaptique, ou en réponse à la perturbation de la fonction synaptique. Étudier la synaptotagmine-1 (Syt1) absorption anticorps fournit une méthode de mesure de la quantité de recyclage de la SV. SYT1 est une protéine associée aux SV qui agit comme un capteur de Ca2 + et est nécessaire pour la libération du neurotransmetteur1,2exocytotique. C’est une protéine transmembranaire avec un domaine cytoplasmique C-terminal en dehors de la SV et un domai....

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Protocole

Aucune étude avec des animaux vivants ont été menées. Expériences impliquant des animaux euthanasiés pour obtenir cell cultures ont été approuvées par les autorités locales de protection animale (Tierschutzkommission der Universitätsmedizin Göttingen) sous le numéro T10/30. Les expériences ont été menées avec les protocoles approuvés.

1. Culture de cellules hippocampiques primaire

  1. Préparer la culture de cellules dissociées de l’hippocampe du rat le jour embryonnaire 1916,17. Plaque de cellules de lamelles de 12 mm recouvert de POLYÉTHYLÈNEIMINE (PEI) dans les plats de 24 p....

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Résultats

Un résultat attendu de cette approche est localiser approximativement 50 double transfectées neurones par lamelle à une densité de 50 000 neurones par puits. L’axone de chaque neurone est censé montrer plusieurs points d’accès de fluorescent-étiquetées synaptophysine accumulation, indiquant les clusters nhsp. À des sites fonctionnels présynaptiques, le signal de synaptophysine recombinant putative ponctuée Syt1 fluorescence. À l’aide de transfection double, soit GFP-Rogdi comme la protéin.......

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Discussion

Il y a trois tests couramment utilisées pour étudier les vésicules synaptiques (SV) recyclage. Les deux premiers comprennent l’utilisation d’un) styryl fluorescente colorants comme FM1-43 (qui incorporent dans les membranes et sont repris dans les organites au cours de l’endocytose sont libérés après exocytose) ; et b) fluorescent tag protéines recombinantes de SV (qui, à la surexpression, incorporent dans la machinerie protéique de recyclage). Si les fluorophores attachés changer leur fluorescence selon le pH, il peuven.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Nous remercions Irmgard Weiss d’assistance technique d’experts. Ce travail a été soutenu par la DFG via le pôle d’excellence pour la microscopie à la gamme nanomètre et physiologie moléculaire du cerveau (CNMPB, B1-7, à T.D.).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
B27Gibco17504-044
BSASigmaA7030-50g
CaCl2Sigma-AldrichC3306-100g
CoolSNAP HQ2Photometrics
dH2OInvitrogen15230
DABCOMerck8.03456.0100
âne anti souris Alexa 647Jackson-Immunoresearch715605151anticorps
DMEMInvitrogen41966
DPBSGibco14190
Eppendorf tubesEppendorf30120094
multipuits 24 puitsFisher Scientific087721H
tube (50 mL)Greiner Bio-One
FBS supérieurBiochromAGS0615
GlucoseMerck1 083 421 000
HBSSInvitrogen14170
HEPESSigmaH4034-500g
Hera Cell 150 (Inkubator)ThermoElectron Corporation
KCLSigma-AldrichP9541-500g
L-GlutaminGibco25030
MgCl2HoneywellM0250-500g
lames de microscopeFisher Scientific10144633CF
Microsoft ExcelMicrosoft
Mowiol4-88Calbiochem475904
NaClBioFroxx1394KG001
Na2HPO4BioFroxx5155KG001
NeurobasalInvitrogen21103049
OpenView Experiment Analysis ApplicationLogiciel gratuit, voir les commentairesécrits par Noam E. Ziv, Technion &ndash ; Institut de technologie d’Israël, Haïfa, Israël
PBS (10x)Roche11666789001
OptimemInvitrogen31985
PenstrepGibco15140-122
PFASigmaP6148-1kg
Capot de sécuritéThermoElectronN° de série 40649111
SucroseneoFroxx1104kg001
Synaptotagmin1 SynapticSystems105311souris monoclonale ; clone 604.2
Triton X-100Merck1,086,031,000
Vortex Genius 3  ;IKA3340001
Bain-marieGFL1004
Zeiss Observer. Z1  ;Zeiss
227261

Références

  1. Koh, T., Bellen, H. J. Synaptotagmin I, a Ca2+ sensor for neurotransmitter release. Trends in Neurosciences. 26, 413-422 (2003).
  2. Chapman, E. R. How Does Synaptotagmin Trigger Neurotransmitter Release. Annual Review of Biochemistry. 77, 615-6....

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Réimpressions et autorisations

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