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Articolo metodologico

Localizzazione del Locus Coeruleus nel cervello del topo

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DOI:

10.3791/58652

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7 marzo 2019

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In questo articolo

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Sommario

Locus coeruleus è un piccolo gruppo di neuroni coinvolti in una varietà di processi fisiologici. Qui, descriviamo un protocollo per la preparazione di sezioni di cervello di topo per lo studio di proteine e metalli in questo nucleo.

Abstract

Locus coeruleus (LC) è un importante hub di norepinefrina producendo neuroni che modulano un numero di funzioni fisiologiche. Le anomalie strutturali o funzionali di LC parecchie regioni del cervello, compreso la corteccia, ippocampo e nel cervelletto di impatto e possono contribuire alla depressione, disturbo bipolare, ansia, così come la malattia di Parkinson e Alzheimer. Questi disturbi sono spesso associati con metallo disparità, ma il ruolo dei metalli in LC è solo parzialmente capito. Studi morfologici e funzionali di LC sono necessari per comprendere meglio le patologie umane e contributo dei metalli. I topi sono un modello sperimentale ampiamente usato, ma il mouse LC è piccolo (~0.3 mm di diametro) e difficile da individuare per un non-esperto. Qui, descriviamo un protocollo basato su immunohistochemistry passo-passo per localizzare la LC nel cervello del topo. Dopamina-β-idrossilasi (DBH) e in alternativa, tirosina idrossilasi (TH), entrambi gli enzimi altamente espressi in LC, sono usati come indicatori immunohistochemical nelle fette del cervello. Sezioni adiacenti alle sezioni contenenti LC possono essere utilizzati per ulteriori analisi, tra cui l'istologia per studi morfologici, test metabolici, così come formazione immagine di metallo da microscopia di fluorescenza di raggi x (XFM).

Introduzione

Locus coeruleus (LC) è una regione importante nel tronco cerebrale e un importante sito di produzione di noradrenalina (NE)1. Il LC Invia proiezioni in tutto il cervello2 la corteccia, l'ippocampo e il cervelletto3 e regola i principali processi fisiologici, tra cui ritmo circadiano4,5, attenzione e memoria6, sforzo7, processi cognitivi8e commozione9,10. Disfunzione di LC è stata implicata in patologie neurolog....

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Protocollo

Gli studi degli animali è stato approvato dalla Johns Hopkins University Animal Care e uso (ACUC) protocollo numero M017M385.

1. cervello affettare

  1. Per immobilizzare, anestetizzare topi mediante l'applicazione di 3% isoflurane.
    1. Immergere un batuffolo di cotone con le gocce di isoflurane e inserirlo in un tubo del microcentrifuge da 15 mL. Posizionare il naso dell'animale nel tubo e consentirle di inalare l'isoflurano. Controllare la profondità dell'anestesia la mancanza di risposta a punta-pizzico.
  2. Metti l'animale sul dorso e immobilizzare e da appuntare le estremità verso il basso con un pin di T pu....

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Risultati

Cambiamenti nell'omeostasi del metallo (ad esempio Cu, Fe, Zn e Mn) sono spesso osservati in disordini neurologici, compreso i cambiamenti nel LC34,35. Così, determinazione dei livelli del metallo nel cervello è necessario per la comprensione dei meccanismi di malattia. Le sezioni di cervello generate utilizzando il protocollo descritto possono essere utilizzate per quantificare i livelli di Cu e altri metalli a cristalli liquidi .......

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Discussione

Corretto orientamento del campione è un passo cruciale in questo protocollo. Perché stiamo usando caratteristiche anatomiche della superficie dorsale del cervello per individuare LC (confine tra cervelletto e collicolo inferiore), è importante che le sezioni vengano allineati correttamente. Questo richiede cura nella corretta impostazione del cervello nella matrice affettatrice del cervello del mouse. Si consiglia di tagliare ~ 500 μm più tessuto anteriore e posteriore a LC per evitare di perdere il nucleo. L'errore più .......

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Ringraziamenti

Ringraziamo Abigael Muchenditsi per la manutenzione della Colonia del mouse. Impiego della fonte del fotone avanzate all'Argonne National Laboratory è stata sostenuta da US Department of Energy, Office of Science, ufficio di energia scienze di base, sotto il numero di contratto: DE-AC02-06CH11357. Ringraziamo Olga Antipova e Dr. Stefan Vogt per supporto utente e assistenza presso la fonte del fotone avanzate. Questo lavoro è stato finanziato dalla 2R01GM101502 di grant del National Institute of Health a SL.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Matrice per affettare il cervello di topo adultoZivic InstrumentsBSMAS001-1
Anticorpo secondario anti-coniglio, Alexa Fluor 488 (fonte - asino)Thermo Fisher ScientificA-21206
Vetrini caricatiGenesee29-107
Microscopio confocaleZeissLSM 800
CryostatMicrom GmbHHM 505E
Lame da taglio per criostatoThermo Fisher ScientificMX35
Forbici Mini, 9,5 cmAntech Diagnostiche503241
DAPI (4',6-diamidino-2-fenilindole)Sigma-AldrichD9542-10MG
dopamina β-idrossilasi (DBH) anticorpo - produzione interna (fonte - coniglio)B. Eipper-
Anticorpo dopamina β-idrossilasi (DBH) - disponibile in commercio (fonte - coniglio)Segnalazione cellulare8586
tubi Falcon, 50mlUSA Scientific339652
Forane (isofluorano)BaxterNDC 1019-360-60
Pinze Micro AdsonAntech Diagnostcs501245
Hardset mounting mediasciences17984-24
MicroscopioPascalLSM 5
piastre multipozzetto, 24 pozzettiThermo Fisher Scientific930186
Composto per la temperatura di taglio ottimale (OCT)VWR/ tissue tech102094-106
Paraformaldeide (PFA)/ formalina 10%Fisher ScientificSF98-4
Stampi per inclusione monouso Peel-A-WayPolysciences Inc. 18646A
Pennello
Soluzione salina tamponata con fosfato (PBS)Life Tech14190250
Lamette da barbaAmazonASIN: B000CMFJZ2
SpatoleAntech Diagnostcs14374
T pinsOffice Depot344615
Il cervello del topo in coordinate stereotassiche, Paxinos e Franklin, 3a edizioneAmazonISBN: 978-0123694607
Triton-X 100 (per preparare PBSD)Sigma-AldrichT8787
Tween 20Sigma-AldrichP7949-500ml
Anticorpo tirosina idrossilasi (TH) (fonte - coniglio)EMD MilliporeAB152
Ultralene film sottile per XRFSPEX Sample Prep3525
Microscopio fluorescente a campo largoZeissAxio Zoom.V16
EM a matita

Riferimenti

  1. Robertson, S. D., Plummer, N. W., de Marchena, J., Jensen, P. Developmental origins of central norepinephrine neuron diversity. Nature neuroscience. 16, 1016-1023 (2013).
  2. Kobayashi, R. M., Palkovits, M., Jacobowitz, D. M., Kopin, I. J.

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Ristampe e permessi

Errata corrige


Formal Correction: Erratum: Localization of the Locus Coeruleus in the Mouse Brain
Posted by JoVE Editors on 4/08/2019. Citeable Link.

An erratum was issued for: Localization of the Locus Coeruleus in the Mouse Brain.  An author affiliation was updated.

The affiliation for Evan Maxey was updated from:

Department of Neuroscience, Johns Hopkins University

to:

X-ray science division, Advanced Photon Source, Argonne National Laboratory

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