É necessária uma assinatura do JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou inicie seu teste gratuito.

Artigo de método

Pré-concentração baseada em papel e isolamento de microvesículos e exosóis

5.9K visualizações

⸱

DOI:

10.3791/61292

⸱

29 de abril de 2020

 ,  ,  ,  ,  ,  , 

* These authors contributed equally

Neste artigo

Resumo

Apresentado é um protocolo para fabricar um dispositivo baseado em papel para o enriquecimento efetivo e isolamento de microvesículos e exosóis.

Resumo

Microvesículos e exosóis são pequenas vesículas membranous liberadas para o ambiente extracelular e circuladas por todo o corpo. Por conterem várias biomoléculas derivadas de células parentais, como DNA, mRNA, miRNA, proteínas e lipídios, seu enriquecimento e isolamento são passos críticos para sua exploração como potenciais biomarcadores para aplicações clínicas. No entanto, métodos convencionais de isolamento (por exemplo, ultracentrifugação) causam perdas e danos significativos a microvesculas e exosóis. Esses métodos também requerem múltiplas etapas repetitivas de ultracentrifugação, carregamento e desolação de reagentes. Este artigo descreve um método detalhado para fabricar um dispositivo baseado em papel origami (Exo-PAD) projetado para o enriquecimento efetivo e isolamento de microvesículos e exosóis de forma simples. O design único do Exo-PAD, composto por camadas multi-dobradas semelhantes a acordeões com áreas de amostra convergentes, é integrado à técnica de polarização da concentração de íons, permitindo assim o enriquecimento de cinco vezes dos microvesículos e exosóis em camadas específicas. Além disso, os microvesículos enriquecidos e exosóis são isolados simplesmente desdobrando o Exo-PAD.

Introdução

Microvesículos e exosóis são pequenas vesículas de membrana medindo 0,2−1 μm e 30-200 nm, respectivamente. Eles são secretados no ambiente extracelular por vários tipos diferentes de células1,,2,,3,,4,5. Eles contêm informações de células parentais na forma de subconjuntos de DNA, mRNA, miRNA, proteínas e lipídios, e circulam por todo o corpo através de vários fluidos corporais, como soro, plasma, urina, fluido cefalorraquidiano, fluido amniótico e saliva6,,

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Protocolo

1. Fabricação de dispositivos

  1. Defina a região a ser impressa em papel usando software de impressora(Tabela de Materiais).
    NOTA: O desenho possui 12 camadas padrão de cera nas quais os diâmetros das áreas de amostra circular gradualmente diminuem de 5 mm a 2 mm(Figura 1A).
  2. Imprima cera hidrofóbica nas regiões designadas em ambos os lados do papel de celulose(Tabela de Materiais)utilizando uma impressora de cera comercial(Tabela de Materiais)(Figura 1B).
  3. Coloque o papel impresso em cera em um forno de laboratório para 80 s a 120....

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Resultados

O tempo de operação deve ser otimizado para alcançar o rendimento máximo de recuperação dos microvesículos enriquecidos e exosóis. O tempo insuficiente não permite migração suficiente dos microvesículos e exosóis, o que diminui o enriquecimento, enquanto o tempo excessivo deteriora o foco espacial e, portanto, dispersa os microvesículos e exosóis. Assim, através da etapa de otimização do tempo, pode ser identificado o fator máximo de pré-concentração de microvesículos e exosóis e o local final onde microvesículos e exosó.......

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Discussão

Embora o Exo-PAD tenha sido utilizado com sucesso para o enriquecimento e isolamento de microvesculas e exosóis, vários pontos críticos devem ser cuidadosamente considerados: 1) o tempo de incubação do forno e a temperatura durante a preparação do dispositivo, 2) tempo de processamento, 3) aplicação de tensão com números de camadas variados e diâmetros da área da amostra, e 4) aplicabilidade às amostras clínicas.

O tempo de incubação e a temperatura dado no protocolo são condições otimizadas p.......

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Este estudo foi apoiado pela Fundação Nacional de Pesquisa da Coreia, Grant NRF-2018R1D1A1A09084044. J. H. Lee foi apoiado por uma bolsa de pesquisa da Universidade Kwangwoon em 2019. Hyerin Kim foi apoiada pelo "Programa de Desenvolvimento de Competências para Especialistas da Indústria" do Ministério do Comércio, Indústria e Energia da Coreia (MOTIE), operado pelo Korea Institute for Advancement of Technology (KIAT) (No. P0002397, programa HRD para Convergência Industrial de Dispositivos Inteligentes Vestíveis).

....

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Eletrodos Ag/AgClA-M Systems, Inc.531500Albumina de 0,15" de diâmetro
de soro bovino (BSA), conjugado Alexa Fluor 594Thermo Fisher ScientificA13101BSA conjugado com Alexa Fluor 594 (Ex/Em: 590/617 nm)
Tampão carbonato-bicarbonatoSigma-AldrichC3041-50CAPTampão de carbonato
Software CorelDraw (Coral Co., Canadá)Corel Corporationpara definir impressão em cera região
ColorQube 8870Xerox CorporationImpressora de cera
Papel de cromatografia grau 1Whatman3001-861Papel de celulose, dimensão: 20 * 20 cm
Padrões de exossomos marcados com fluorescênciaHansaBioMed Life Sciences, Ltd.HBM-F-PEP-100Exossomo marcado com FITC (Ex/Em: 490/520 nm)
Keithley 2410 medidor de fonte de corrente/tensãoKeithley Instruments, Inc.Atual– sistema de medição de fonte de tensão
Solução de resina perfluorada NafionSigma-Aldrich31175-20-9Membrana permselectiva, 20% em peso na mistura de álcoois alifáticos inferiores e água; contém 34% de água
Tecnologia NanoSight LM10NanoSight Máquinade análise de rastreamento de nanopartículas (NTA)
Solução salina tamponada com fosfato (PBS, pH7.4)Thermo Fisher Scientific10010001
Software de impressora

Referências

  1. Edgar, J. R. Q & A: What are exosomes, exactly. BMC Biology. 14 (1), 1-7 (2016).
  2. Contreras-Naranjo, J. C., Wu, H. J., Ugaz, V. M. Microfluidics for exosome isolation and analysis: Enabling liquid biopsy for personalized medicine. Lab on a Chip. 17 ....

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Reimpressões e permissões

Explorar mais artigos

Dispositivo Baseado em PapelIsolamento de MicrovesículasEnriquecimento de ExossomosPolarização de Concentração IônicaCamadas com Padrões de CeraMembrana Seletiva a ÍonsPré-concentração EletrocinéticaQuantificação por FluorescênciaAnálise por SEMAmostras Ricas em Proteínas