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Article de méthode

Un système de culture d’organes intestinaux pour l’analyse des interactions hôte-microbiote

4.3K vues

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DOI :

10.3791/62779

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30 juin 2021

 ,  ,  ,  , 

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Cet article présente une méthode unique d’analyse des interactions hôte-microbiome à l’aide d’un nouveau système de culture d’organes intestinaux pour des expériences ex vivo.

Résumé

La structure du tissu intestinal facilite les interactions étroites et mutualistes entre l’hôte et le microbiote intestinal. Ces pourparlers croisés sont cruciaux pour maintenir l’homéostasie locale et systémique; les modifications de la composition du microbiote intestinal (dysbiose) sont associées à un large éventail de maladies humaines. Les méthodes de dissection des interactions hôte-microbiote englobent un compromis inhérent entre la préservation de la structure physiologique des tissus (lors de l’utilisation de modèles animaux in vivo) et le niveau de contrôle des facteurs expérimentaux (comme dans les systèmes de culture cellulaire in vitro simples). Pour remédier à ce compromis, Yissachar et al. ont récemment développé un système de culture d’organes intestinaux. Le système préserve une construction naïve du tissu du côlon et des mécanismes cellulaires et il permet également un contrôle expérimental serré, facilitant les expérimentations qui ne peuvent pas être facilement effectuées in vivo. Il est optimal pour disséquer les réponses à court terme de divers composants intestinaux (tels que les éléments épithéliaux, immunologiques et neuronaux) aux perturbations luminales (y compris les microbes anaérobies ou aérobies, les échantillons de microbiote entier de souris ou d’humains, les médicaments et les métabolites). Ici, nous présentons une description détaillée d’un protocole optimisé pour la culture d’organes de plusieurs fragments intestinaux à l’aide d’un dispositif de culture intestinale sur mesure. Les réponses de l’hôte aux perturbations luminales peuvent être visualisées par coloration par immunofluorescence de coupes de tissus ou de fragments de tissus à monture entière, hybridation in situ par fluorescence (FISH) ou imagerie accélérée. Ce système prend en charge un large éventail de lectures, y compris le séquençage de nouvelle génération, la cytométrie en flux et divers tests cellulaires et biochimiques. Dans l’ensemble, ce système de culture d’organes tridimensionnel prend en charge la culture de tissus intestinaux volumineux et intacts et a de vastes applications pour l’analyse à haute résolution et la visualisation des interactions hôte-microbiote dans l’environnement intestinal local.

Introduction

L’intestin est un organe très complexe contenant un large éventail de types cellulaires (cellules épithéliales, cellules du système immunitaire, neurones, etc.) organisés dans une structure particulière qui permet aux cellules d’interagir et de communiquer entre elles et avec le contenu luminal (microbiote, nourriture, etc.) 1. Actuellement, la boîte à outils de recherche disponible pour l’analyse des interactions hôte-microbiote comprend des cultures cellulaires in vitro et des modèles animaux in vivo 2. Les modèles animaux in vivo fournissent une construction tissulaire physiologique

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Protocole

Ce protocole suit les lignes directrices en matière de soins aux animaux approuvées par le comité d’éthique pour le bien-être des animaux.

1. Préparation de l’expérience

  1. Fabrication du dispositif de culture d’organes intestinaux (3 jours)
    1. À l’aide d’une imprimante 3D, imprimez les moules en plastique réutilisables pour le dispositif de culture d’organes (l’appareil a 6 puits, avec 24 petits et grands trous, et pour le couvercle du couvercle de l’appareil) (fichiers 3D joints).
      REMARQUE: Ces moules en plastique peuvent être utilisés pour la fabrication de nombreux appareils.
    2. Insérez les aiguilles à extrémité é....

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Résultats

Le système de culture d’organes intestinaux maintient la viabilité des tissus ex vivo. L’évaluation de la viabilité des tissus a été effectuée tout au long de la période de culture. Des fragments de tissu du côlon ont été incubés dans le système de culture d’organes intestinaux et fixés après une culture de 2/12/24 h. L’intégrité de la couche de cellules épithéliales intestinales (CEI) a été validée par coloration par immunofluorescence à l’aide d’anticorps E-cadhérine et cytokératine-18. De même, des cellules d.......

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Discussion

Cet article décrit un protocole optimisé pour les cultures d’organes intestinaux ex vivo que Yissachar et al. ont récemment développé (publié9 et données non publiées). Le système de culture d’organes intestinaux prend en charge la culture multiplexée de fragments intestinaux intacts tout en maintenant le flux luminal. Il offre un contrôle total sur l’environnement intra et extra-luminal (y compris la dose de stimulation, le temps d’exposition et le débit) et préserve la structure naïve d.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Nous remercions les membres passés et présents du laboratoire Yissachar pour leurs précieuses contributions à l’optimisation du protocole du système de culture d’organes intestinaux. Nous remercions Yael Laure pour l’édition critique du manuscrit. Ce travail a été soutenu par la Fondation israélienne pour la science (subvention n° 3114831), la Fondation scientifique israélienne - Programme conjoint du Broad Institute (subvention n° 8165162) et le Fonds Gassner pour la recherche médicale, Israël.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
device
18 Aiguille émousséeMcmaster75165a754
Aiguille émoussée de calibre 22Mcmaster75165a758
Adhésif tout usage Selant 100 % siliconeDAP688
Dessiccateur cubique sous vide VDC-21+ 2 étagèresAAAD4021
Diapositive en verre 1 mm d’épaisseurCorning2947-75X50
Mini incubateur im-10AAH24315K
MPC 301E POMPEVI-412711
Bouchons d’accouplement de tube à rotation rapide en plastiqueMcmaster51525k121
Douilles d’accouplement de tube à rotation rapide en plastiqueMcmaster52525k211
Sylgard 184 Élastomère de siliconeDowPolydiméthylsiloxane, Tube PDMS
Mcmaster6516T11
Zortrax M200ZortraxZortrax Z-SUITE, Autodesk Fusion 360
Zortrax M200 Matériaux : z-ultratZortrax
Medium
B27 Supplement (50x), Sans sérumThermo Fisher Scientific
Tampon 17504044 HEPES (1M)Thermo Fisher Scientific15630056
Milieu Dulbecco’s modifié d’Iscove avec rouge de phénol (1x)Thermo Fisher Scientific12440061
Knock-Out SerumThermo Fisher Scientific10828028 Supplément N2
(100x)Thermo Fisher ScientificA1370701
Non Acide aminé essentiel (100x)Thermo Fisher Scientific11140035
Surgical Tools
Large ScissorsAseltech11-00-10
Sharp ForcepsF.S.T11297-10
Fil chirurgical tressé en soieSMI8010G
Ciseaux droitsF.S.T14091-09
Pince minceF.S.T11051-10
Organ System
0.1 & micro ; m Filtrede la vie
0.22 µ ; m FilterLife Gene
5 mL Seringue Luer LockB-D309649
Microscope stéréoscopique GreenoughZEISSStemi 305
Réchauffeur d’air de précision à recirculation « CUBE"CUBE-2-LIS
Seringue PompeNew Era Pump Systems incnep-ne-1600-em
à vide Gène

Références

  1. Mowat, A. M., Agace, W. W. Regional specialization within the intestinal immune system. Nature Reviews Immunology. 14 (10), 667-685 (2014).
  2. Pearce, S. C., et al. Intestinal in vitro and ex vivo Models to Study Host-Microbiome Int....

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Réimpressions et autorisations

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