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방법 논문

RNA 편집의 신속한 검출을 위한 비시퀀싱 접근법

2.3K 조회수

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DOI:

10.3791/63591

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2022년 4월 21일

 ,  , 

이 논문에서

요약

게놈 규모에서 RNA 편집 이벤트의 신속한 탐지와 신뢰할 수 있는 정량화는 여전히 어려운 과제이며 현재 직접 RNA 시퀀싱 방법에 의존하고 있습니다. 여기에 설명 된 프로토콜은 RNA 편집을 감지하는 간단하고 빠르며 휴대용 방법으로 미세 온도 구배 겔 전기 영동 (μTGGE)을 사용합니다.

초록

RNA 편집은 RNA의 전사 후 서열 변경으로 이어지는 과정입니다. RNA 편집의 검출 및 정량화는 주로 Sanger 시퀀싱 및 RNA 시퀀싱 기술에 의존합니다. 그러나 이러한 방법은 비용이 많이 들고 시간이 많이 걸릴 수 있습니다. 이 프로토콜에서, 휴대용 마이크로온도 구배 겔 전기영동(μTGGE) 시스템은 RNA 편집의 신속한 검출을 위한 비시퀀싱 접근법으로서 사용된다. 이 과정은 고온을 사용하여 핵산 샘플이 폴리아크릴아미드 겔을 가로 질러 이동할 때 변성시키는 전기 영동 원리에 기반합니다. 다양한 온도에 걸쳐, DNA 단편은 완전히 이중 가닥 DNA의 구배를 형성하여 부분적으로 분리 된 가닥을 형성 한 다음 완전히 분리 된 단일 가닥 DNA로 구배를 형성합니다. 뚜렷한 뉴클레오티드 염기를 갖는 RNA 편집 부위는 μTGGE 분석에서 상이한 용융 프로파일을 생성한다. 우리는 μTGGE 기반 접근법을 사용하여 네 개의 편집된 RNA 단편의 용융 프로파일과 그에 상응하는 편집되지 않은(야생형) 단편 사이의 차이를 특성화했습니다. 패턴 유사성 점수(PaSSs)는 편집된 RNA와 편집되지 않은 RNA에 의해 생성된 밴드 패턴을 비교하여 계산되었고, 방법의 재현성을 평가하기 위해 사용되었다. 전반적으로, 여기에 설명된 플랫폼은 RNA에서 심지어 단일 염기 돌연변이의 검출을 간단하고, 간단하고, 비용 효율적인 방식으로 가능하게 한다. 이 분석 도구는 새로운 분자 생물학 발견에 도움이 될 것으로 예상됩니다.

서론

A-to-I, C-to-U 및 U-to-C 변이체를 포함하는 게놈 RNA의 단일 뉴클레오티드 변이체 (SNV)는 RNA 편집 이벤트를 나타낼 수 있다. 그러나 RNA에서 SNV를 탐지하는 것은 기술적으로 어려운 과제로 남아 있습니다. 종래, 편집된 RNA와 편집되지 않은 RNA의 비율은 직접 시퀀싱, 대립유전자 특이적 실시간 중합효소 연쇄 반응(PCR) 또는 변성 고성능 액체 크로마토그래피(HPLC) 접근법 1,2,3,4,5,6에 의해 결정된다. 그러나, 이러한 접근법들은 특별히 시간- 또는 비용-효과적이지 않으며, 높은 수준의 잡음에 의해 야기되는 이들의 낮은 정확도는 RNA 기반 SNV 검출(7,8)에 대한 기술적 병목 현상을 야기한다. 여기에서는 RNA 편집 분석에 대한 직접 RNA 시퀀싱 접근법의 필요성을 제거하는 대안 방법으로 단....

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프로토콜

1. 대상 조각의 최적화

참고: A. thaliana의 두 개의 핵 유전자(AT2G16586 및 AT5G02670)와 HEK293 세포에서 발현되는 청색 형광 단백질(BFP) 및 강화된 녹색 형광 단백질(EGFP)을 코딩하는 유전자를 포함하여 네 개의 편집된 유전자가 이 프로토콜의 개발에 사용되었습니다.

  1. 편집된 영역과 편집되지 않은 영역을 나타내는 상이한 용융 프로파일을 갖는 유전자 단편을 확인하기 위해, 원래의 uMelt 소프트웨어(13)의 확장인 uMelt HETS 웹 기반 도구를 사용하여 예측된 용융 곡선을 생성한다.
    참고: 이 도구는 헤테로듀플렉스 및 호모듀플렉스 제품에 대한 용융 곡선의 모양을 예측합니다.
  2. 각 표적 유전자에 대해, 세 쌍의 유전자 단편(길이 300-324 bp)을 설계한다. 각 쌍은 편집된 사이트를 갖는 단편과 편집되지 않은 사이트를 갖는 상응하는 야생형 단편으로 구성되며, 5'-말단 끝, 중간 위치 또는 3'-말단 말단에 위치한다.
  3. 추가 분석을 위해 헬리시티 축의 용융 영역 간의 최대 차이를 표시한 편집되지 않은 쌍을 선택합니다. μTGGE 분석을 위해, 하기 섹션 2에....

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결과

μTGGE를 사용하여 RNA 편집 이벤트에서 단일 뉴클레오티드 염기 변화를 확인합니다.
HEK293 세포에서 생산된 BFP 유전자를 포함하는 네 개의 편집된 유전자가 이 프로토콜에 사용되었다 (아포리포단백질 B mRNA 편집 효소 복합체의 데아미나제 효소에 의한 C-to-U RNA 편집; APOBEC115), HEK293 세포에서 생산된 황토정지코돈(TAA)을 포함하는 EGFP 유전자(RNA 1에 작용하는 아데노신 데아미나제에 의한 A-to-I RNA 편집; ADAR116), 및 AT2G16586 및 AT5G02670 핵 유전자를 A. thaliana17,18 (U-to-C RNA 편집 포함)에 포함함. 편집된 샘플과 상응하는 편집되지 않은 샘플 사이의 단일 .......

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토론

RNA 편집은 생물학에서 중요한 역할을합니다. 그러나 크로마토그래피 및 시퀀싱과 같은 RNA 편집을 감지하는 현재의 방법은 높은 비용, 과도한 시간 요구 사항 및 복잡성으로 인해 몇 가지 과제를 제시합니다. 여기에 설명된 프로토콜은 휴대용, 미세 크기, TGGE 기반 시스템을 사용하는 RNA 편집을 검출하는 간단하고 신속하며 비용 효율적인 방법입니다. 이 시스템은 Sanger 시퀀싱 전에 편집된 유전자와 편집되지 않은 유전자를 구별하는데 사용될 수 있다. 구체적으로, 단일 염기 뉴클레오티드 변형을 갖는 편집 및 비편집 유전자는 TGGE 용융 프로파일의 변화에 기초하여 분화될 수 있다. 젤에 1을 통합하기 때문에이 시스템은 매우 적은 양의 샘플을 필요로하며 시퀀스 간의 차이를 신속하게 감지 할 수 있습니다. 또한 여기에 설명 된 프로토콜은 전문가와 신규 이민자 모두에게 매우 쉽게 따라갈 수 있습니다. 표적 유전자 단편의 최적화는 편집된 영역과 편집되지 않은 영역 사이의 명확한 분화를 위해 중요하며, 이 과정은 현재 프로토콜에서 단.......

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공개 사항

저자는 이해 상충을 선언하지 않습니다.

감사의 글

이 연구는 일본 과학 진흥 협회 (17H02204 및 18K19288)의 과학 연구 보조금에 의해 지원되었습니다. 루치카는 일본 정부(MEXT 장학금)의 재정 지원을 받았다. 전기영동 관련 실험에 도움을 주신 Radhika Biyani (Takagi Laboratory, JAIST)와 Kirti Sharma 박사 (BioSeeds Corporation)에게 감사드립니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
2U 엑소이드타카라2650A엑소뉴클레스 I
40(w/v)%-아크릴아마이드/이스(19:1)서모피셔AM9022
과황산암모늄(APS)써모피셔17874
원심분리기 미니 스핀에펜도르프5452000034
디지털 드라이 배스/블록 히터서모피셔NA
골드 탁 폴리머레이즈 마스터 믹스처프로메가M7122
LATaq DNA 중합효소타카라RR002A타크 중합효소
마이크로-TGGE와 nbsp; 카세트 홀더바이오시즈 코퍼레이션BS-게-CH
마이크로-TGGE 장치라이프텍 코퍼레이션안내
마이크로-TGGE 젤 카세트바이오시즈 코퍼레이션BS-TGGE-C
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새우 알칼리 인산화제타카라2660B
SYBR 금 핵산 젤 염색서모피셔S11494
TBE 버퍼서모피셔B52
테트라메틸레틸렌디아민 (TEMED)Nacalai tesque33401-72
요소, 뉴클레아제, 프로테아제 검사Nacalai tesque35940-65

참고문헌

  1. Chateigner-Boutin, A. L., Small, I. A rapid high-throughput method for the detection and quantification of RNA editing based on high-resolution melting of amplicons. Nucleic Acids Research. 35 (17), 114(2007).
  2. Chen, Y. C., et al.

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