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Articolo metodologico

Un approccio non sequenziale per il rilevamento rapido dell'editing dell'RNA

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DOI:

10.3791/63591

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21 aprile 2022

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In questo articolo

Sommario

Il rilevamento rapido e la quantificazione affidabile degli eventi di modifica dell'RNA su scala genomica rimangono impegnativi e attualmente si basano su metodi di sequenziamento diretto dell'RNA. Il protocollo qui descritto utilizza l'elettroforesi su gel a gradiente di microtemperatura (μTGGE) come metodo semplice, rapido e portatile per rilevare l'editing dell'RNA.

Abstract

L'editing dell'RNA è un processo che porta ad alterazioni della sequenza posttrascrittiva negli RNA. Il rilevamento e la quantificazione dell'editing dell'RNA si basano principalmente sulle tecniche di sequenziamento Sanger e di sequenziamento dell'RNA. Tuttavia, questi metodi possono essere costosi e dispendiosi in termini di tempo. In questo protocollo, un sistema portatile di elettroforesi su gel a gradiente di microtemperatura (μTGGE) viene utilizzato come approccio non sequenziale per il rilevamento rapido dell'editing dell'RNA. Il processo si basa sul principio dell'elettroforesi, che utilizza alte temperature per denaturare i campioni di acido nucleico mentre si muovono attraverso un gel di poliacrilammide. Attraverso una gamma di temperature, un frammento di DNA forma un gradiente di DNA completamente a doppio filamento in filamenti parzialmente separati e quindi in DNA a singolo filamento completamente separato. I siti modificati con RNA con basi nucleotidiche distinte producono diversi profili di fusione nelle analisi μTGGE. Abbiamo usato l'approccio basato su μTGGE per caratterizzare le differenze tra i profili di fusione di quattro frammenti di RNA modificati e i loro corrispondenti frammenti non modificati (wild-type). I Pattern Similarity Score (PaSS) sono stati calcolati confrontando i pattern di banda prodotti dagli RNA modificati e non modificati e sono stati utilizzati per valutare la riproducibilità del metodo. Nel complesso, la piattaforma qui descritta consente il rilevamento anche di singole mutazioni di base negli RNA in modo diretto, semplice ed economico. Si prevede che questo strumento di analisi aiuterà i nuovi risultati della biologia molecolare.

Introduzione

Le varianti a singolo nucleotide (SNV) nell'RNA genomico, comprese le varianti A-to-I, C-to-U e U-to-C, possono indicare eventi di modifica dell'RNA. Tuttavia, il rilevamento di SNV nell'RNA rimane un compito tecnicamente impegnativo. Convenzionalmente, il rapporto tra RNA modificato e non modificato è determinato dal sequenziamento diretto, dalla reazione a catena della polimerasi in tempo reale (PCR) specifica per l'allele o dalla cromatografia liquida ad alte prestazioni (HPLC) che si avvicinaa 1,2,3,4,5,6.

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Protocollo

1. Ottimizzazione del frammento target

NOTA: Quattro geni modificati sono stati utilizzati nello sviluppo di questo protocollo, tra cui due geni nucleari (AT2G16586 e AT5G02670) di A. thaliana e i geni che codificano per la proteina fluorescente blu (BFP) e la proteina fluorescente verde potenziata (EGFP) espressa nelle cellule HEK293.

  1. Per identificare frammenti di geni con diversi profili di fusione, che rappresentano regioni modificate rispetto a quelle non modificate, generare curve di fusione previste utilizzando lo strumento basato sul web uMelt HETS, un'estensione del software uMelt

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Risultati

Uso di μTGGE per identificare i cambiamenti della base a singolo nucleotide negli eventi di modifica dell'RNA
Quattro geni modificati sono stati utilizzati per questo protocollo (Tabella 1), incluso il gene BFP prodotto in cellule HEK293 (con editing C-to-U RNA da parte degli enzimi deaminasi del complesso enzimatico di editing dell'mRNA apolipoproteina B; APOBEC115), il gene EGFP contenente il codone di arresto ocra (TAA) prodotto in cellule HEK293 (con editin.......

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Discussione

L'editing dell'RNA svolge un ruolo importante in biologia; tuttavia, gli attuali metodi di rilevamento dell'editing dell'RNA, come la cromatografia e il sequenziamento, presentano diverse sfide a causa del loro costo elevato, dei requisiti di tempo eccessivi e della complessità. Il protocollo qui descritto è un metodo semplice, rapido ed economico per rilevare l'editing dell'RNA che utilizza un sistema portatile, microdimensionato, basato su TGGE. Questo sistema può essere utilizzato per distinguere tra geni modificati e.......

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Dichiarazioni

Gli autori non dichiarano conflitti di interesse.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato sostenuto da una sovvenzione per la ricerca scientifica della Japan Society for the Promotion of Science (17H02204 e 18K19288). Ruchika è stato sostenuto finanziariamente dal governo giapponese (borsa di studio MEXT). Ringraziamo la signora Radhika Biyani (Takagi Laboratory, JAIST) e la dottoressa Kirti Sharma (BioSeeds Corporation) per l'aiuto con esperimenti relativi all'elettroforesi.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
2U ExoITakara2650AEsonucleasi I
40(v/v)%-acrilammide/bis (19:1)Thermo fisherAM9022
Persolfato di ammonio (APS)Thermo Fisher17874
Centrifuga Mini spineppendorf5452000034
Bagno a secco digitale/termostufa a blocchiThermo fisherNA
Miscela Master della polimerasi Gold TaqPromegaM7122
DNA polimerasi LATaqTAKARARR002ATaq polimerasi
micro-TGGE  PortacassetteBioSeeds Corp.BS-GE-CH
Apparecchio micro-TGGELifetech Corp.TG
Micro-TGGE gel cassetteBioSeeds Corp.BS-TGGE-C
NanoDrop 1000Thermo fisherND-1000Spettrofotometro
Kit Mini Plant RneasyQiagen74904
ReverTra Ace Master MixTOYOBOTRT101M-MLV (Virus della leucemia di Moloney Murine) trascridasi inversa
Kit Rneasy MiniQiagen74104
Fosfatasi alcalina dei gamberiTakara2660B
Colorazione in gel per acidi nucleici d'oro SYBRThermo fisherS11494
Buffer TBEThermo fisherB52
Tetrametiletilendiamina (TEMED)Tesque di Nacalai33401-72
Urea, nucleasi e proteasi testateTesque di Nacalai35940-65

Riferimenti

  1. Chateigner-Boutin, A. L., Small, I. A rapid high-throughput method for the detection and quantification of RNA editing based on high-resolution melting of amplicons. Nucleic Acids Research. 35 (17), 114(2007).
  2. Chen, Y. C., et al.

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Ristampe e permessi

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