Summary
Описан протокол для выполнения живой визуализации в режиме реального времени для количественной оценки того, как вспомогательный белок TnpB влияет на динамику транспозиции в отдельных живых клетках кишечной палочки .
Abstract
Здесь описан протокол для выполнения живой визуализации в режиме реального времени транспонируемой активности элементов в живых бактериальных клетках с использованием набора флуоресцентных репортеров, связанных с транспозицией. В частности, он демонстрирует, как визуализация в реальном времени может быть использована для оценки влияния дополнительного белка TnpB на активность транспонируемого элемента IS608, члена семейства транспонируемых элементов IS200/IS605. Семейство транспонируемых элементов IS200/IS605 представляет собой множество подвижных элементов, связанных с одним из самых бесчисленных генов, обнаруженных в природе, tnpB. Гомологии последовательностей предполагают, что белок TnpB может быть эволюционным предшественником систем CRISPR/Cas9. Кроме того, TnpB получил новый интерес, поскольку было показано, что он действует как эндонуклеаза ДНК, управляемая Cas-РНК. Влияние TnpB на скорость транспозиции IS608 количественно определено, и показано, что экспрессия TnpB IS608 приводит к увеличению транспозонной активности в ~5 раз по сравнению с клетками, в которых отсутствует экспрессия TnpB.
Introduction
Транспонируемые элементы (ТЭ) являются генетическими элементами, которые мобилизуются в геномах своих хозяев путем иссечения или катализируют копирование с последующей геномной реинтеграцией. ТЭ существуют во всех областях жизни, и транспозиция реструктурирует геном хозяина, мутируя кодирующие и управляющие области1. Это порождает мутации и разнообразие, которые играют важную роль в эволюции 2,3, развитии 4,5 и нескольких заболеваниях человека6, включая рак7.
Используя новые генетические конструкции, которые связывают аспекты транспозиционной активности с флуоресцентными репортерами, наша предыдущая работа описывала разработку экспериментальной системы на основе бактериального TE IS608, представителя широко распространенного семейства ТЭ IS200/IS605 , которое позволяет в режиме реального времени визуализировать транспозицию в отдельных живых клетках8 (рисунок 1). Система TE показана на рисунке 1A. TE содержит транспозазную кодирующую последовательность tnpA, окруженную несовершенными палиндромными повторами (IP) левого конца (LE) и правого конца (RE), которые являются сайтами распознавания и иссечения для TnpA. tnpA экспрессируют с помощью промотора PLTetO1, который подавляется тет-репрессором и индуцируется ангидротетрациклином (aTc)9. TE разделяет последовательности -10 и -35 конститутивного промотора PlacIQ1 10 для синего репортера mCerulean311. Как показано на рисунке 1С, при индуцировании производства tnpA ТЭ может быть иссечен, что приводит к восстановлению промотора. Продуцируемая клетка экспрессирует mCerulean3 и флуоресцес синего цвета. N-конец TnpA слит с желтым репортером Venus12, что позволяет измерять уровни TnpA с помощью желтой флуоресценции.
IS608 и другие члены семейства транспозонов IS200/IS605 также обычно кодируют второй ген до сих пор неизвестной функции, tnpB13. Белки TnpB представляют собой чрезвычайно обильное, но несовершенное семейство нуклеаз, кодируемых несколькими бактериальными и архейными TEs14,15, которые часто состоят только из tnpB16. Кроме того, недавние исследования возобновили интерес к TnpB, обнаружив, что TnpB функционирует как CRISPR/Cas-подобная программируемая РНК-управляемая эндонуклеаза, которая будет давать либо dsDNA, либо ssDNA разрывы в различных условиях17,18. Однако остается неясным, какую роль TnpB может играть в регулировании транспозиции. Для выполнения визуализации в реальном времени эффектов TnpB на транспозицию IS608 была создана версия транспозона, включающая кодирующую область TnpB с N-концевым слиянием с красным флуоресцентным белком mCherry.
В дополнение к более подробным объемным исследованиям, выполненным лабораторией Кульмана19, здесь показано, как визуализация транспозонной активности в режиме реального времени может количественно выявить влияние TnpB или любых других вспомогательных белков на транспозициональную динамику. При слиянии TnpB с mCherry отдельные транспозиционные события идентифицируются синей флуоресценцией и коррелируют с уровнями экспрессии TnpA (желтая флуоресценция) и TnpB (красная флуоресценция).
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Подготовка бактериальных культур
- Вырастите штамм E. coli MG1655 с плазмидными транспозонными конструкциями (ранее описанными в Kim et al.8) в течение ночи в LB с соответствующими антибиотиками (25 мкг/мл канамицина, см. Таблицу материалов) при 37 °C.
ПРИМЕЧАНИЕ: Последовательности используемых конструкций и связанные с ними последовательности доступны в виде номеров присоединения GenBank20 OP581959, OP581957, OP581958, OP717084 и OP717085. - Для достижения устойчивого экспоненциального роста разбавляют культуры ≥100 раз в среду M63 (100 мМ KH2PO4, 1 мМ MgSO4, 1,8 мкМ FeSO4, 15 мМ [NH4]2SO4, 0,5 мкг/мл тиамина [витамина B1]), дополненного источником углерода (0,5% мас./об.глюкозы здесь) и соответствующими антибиотиками (см. Таблицу материалов).
- Выращивайте культуры при 37 °C до тех пор, пока оптическая плотность при 600 нм (OD600) не достигнет ~0,2. Культуры готовы к использованию.
2. Подготовка слайдов
- Приготовьте слайд, вскипятив M63 с 0,5% мас./об. глюкозы и 1,5% мас./v агарозы в микроволновой печи, чтобы расплавить агарозу и убедиться, что она полностью расплавлена и хорошо перемешана.
- Дайте смеси остыть до ~55 °C перед добавлением антибиотиков и индукторов (25 мкг/мл канамицина и 10 нг/мкл ангидротетрациклина [aTc], см. Таблицу материалов).
- Поместите предметное стекло микроскопа на верстак. Сложите еще два слайда перпендикулярно первому и поместите еще один сверху, параллельно нижнему слайду. Убедитесь, что между нижним и верхним слайдами имеется зазор, равный одной толщине затвора. Пипетка ~ 1 мл смеси агарозы M63 в этот зазор между слайдами медленно создает небольшой гель-квадрат.
- Как только гель затвердеет (~10-15 мин), сдвиньте верхний слайд, чтобы удалить его. Обрежьте подушечку агарозы лезвием бритвы или ножом. Затем пипетку 2,5 мкл культуры (шаг 1.3) и сверху кладут крышку.
- Запечатайте пространство между слайдом и крышкой с помощью эпоксидной смолы (см. Таблицу материалов). Дайте эпоксидной смоле высохнуть, и ячейки осядут на агарозной подушке в течение не менее 1 ч при 37 °C.
3. Таймлапс флуоресцентная микроскопия
- Поместите подготовленный образец (этап 1.3) на флуоресцентный микроскоп (см. Таблицу материалов) в среду, нагретую и поддерживаемую при температуре 37 °C.
- Установите время экспозиции, соответствующее камере, используемой для получения изображения. Отрегулируйте интенсивность освещения, чтобы свести к минимуму фотоотбеливание.
ПРИМЕЧАНИЕ: Для настоящего исследования использовалось время экспозиции 2 с для каждой длины волны. - Для каждой длины волны найдите поле зрения (FOV), содержащее минимальную флуоресценцию. Получение изображений для использования во время анализа для вычитания фона.
- Установите время экспозиции, соответствующее камере, используемой для получения изображения. Отрегулируйте интенсивность освещения, чтобы свести к минимуму фотоотбеливание.
- Настройте протокол для получения изображений в сетке на разных длинах волн и через регулярные промежутки времени.
- Закодируйте таймлапс-фотографию в протокол. Установите частоту сбора на желаемый интервал времени (здесь 20 мин), а общую продолжительность таймлапса на нужную длину (24 ч).
- Закодируйте соответствующие длины волн в протоколе (в зависимости от используемой конструкции).
ПРИМЕЧАНИЕ: Пик возбуждения mCherry составляет 587 нм, а пик излучения - 610 нм21; mVenus находится на 515 нм и 527 нм12, в то время как mCerulean3 на 433 нм и 475 нмна 11. - Установите размер сетки для захвата между требуемым количеством FOV.
ПРИМЕЧАНИЕ: В репрезентативных данных, показанных здесь, использовались 8 x 8 FOV.
4. Анализ изображений
- Выполните вычитание фона на каждом цветовом канале, используя соответствующие фоновые изображения, полученные на шаге 3.1.2. Для всех этапов анализа мы используем стандартные модули в платформе с открытым исходным кодом Fiji22 (см. Таблицу материалов).
- Аппроксимируйте общую популяцию в каждый момент времени, установив пороговое значение канала mCerulean и разделив пороговую площадь на среднюю площадь ячейки.
- Чтобы подсчитать уникальные события иссечения, возьмите производную по времени канала mCerulean3. Выполните это, вычитая последовательные изображения в канале mCerulean3. События иссечения будут обнаружены во временной производной как яркая вспышка флуоресценции.
- Пороговое значение стека событий иссечения для устранения нежелательной флуоресценции. Обратите внимание, что этот процесс приведет к выходу из самих частей иссечений. Чтобы исправить это, расширьте изображения, чтобы восстановить иссечения до их первоначальных размеров.
ПРИМЕЧАНИЕ: Анализ с использованием аналогичных методов порогового значения и анализа изображений может быть выполнен и на других флуоресцентных каналах (например, коррелируют события иссечения с уровнями транспозазы TnpA [желтая флуоресценция Венеры] и TnpB [красная флуоресценция вишни).
- Пороговое значение стека событий иссечения для устранения нежелательной флуоресценции. Обратите внимание, что этот процесс приведет к выходу из самих частей иссечений. Чтобы исправить это, расширьте изображения, чтобы восстановить иссечения до их первоначальных размеров.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Этот метод визуализации транспозонной активности в живых клетках с помощью флуоресцентной микроскопии, имея при этом более низкую пропускную способность, чем объемные флуоресцентные измерения, позволяет непосредственно визуализировать активность транспозонов в отдельных живых клетках. События транспозонного иссечения приводят к восстановлению промотора для mCerulean3 (рисунок 1), что позволяет идентифицировать клетки, подвергающиеся транспозонной активности, с помощью ярко-синей флуоресценции (Рисунок 2, TnpB+: Дополнительный фильм 1 и TnpB-: Дополнительный фильм 2).
Установлено, что клетки, экспрессирующие вспомогательный белок TnpB (рисунок 3, оранжевый), испытывают в 4-5 раз более высокие уровни транспозонной активности по сравнению с теми, которые этого не делают (Рисунок 3, синий), что согласуется с более подробными объемными исследованиями19. Это особенно примечательно, поскольку включение кодирующей последовательности mCherry-tnpB увеличивает длину транспозона на ~ 2000 bp, в то время как предыдущие исследования показали, что иссечение транспозона IS608 является экспоненциально уменьшающейся функцией длины транспозона23.
Преимущество визуализации в реальном времени заключается в том, что после идентификации клетки, подвергающиеся транспозиционным событиям, могут быть дополнительно отслежены и проанализированы для определения других характерных параметров, таких как скорость роста, для определения распределения эффектов приспособленности или уровня экспрессии вспомогательных белков для определения их влияния на транспозициональную активность. Например, в клетках TnpB+ клетки, подвергающиеся транспозонному иссечению, имеют более высокие уровни экспрессии mCherry-TnpB, чем в общей популяции (рисунок 4A). Более того, для клеток, подвергающихся иссечению (рисунок 4B, темно-желтый), клетки TnpB+ (рисунок 4B, внизу) экспрессируют лишь незначительно более высокие уровни транспозазы Venus-TnpA, чем TnpB-клетки (рисунок 4B, вверху) (TnpB- 158,3 ± 68,2 AU, TnpB +: 193 ± 79,9 AU), что выше, чем желтая флуоресценция общей популяции (рисунок 4B). , светло-желтый). Взятые вместе, эти данные свидетельствуют о том, что белок TnpB отвечает за наблюдаемые более высокие уровни транспозиционной активности.
Рисунок 1: Генетические конструкции для визуализации динамики транспозонов в реальном времени. (A) Промотор mCerulean3 нарушается TE, концы которого окружены левым концом и правым концом дефектных палиндромных последовательностей (LE IP и RE IP). Транспозаза, tnpA (серый), экспрессируется из PLtetO1, который регулируется тет-репрессором (серый) и индуцируется ангидротетрациклином (aTc). Последовательности переходов Promoter/TE и промоутеров -10 и -35 (красные поля) и сайтов расщепления TnpA показаны стрелками. (B) Конструкция TnpB+ - это когда mCherry-tnpB был транскрипционно слит с венерой-tnpA таким образом, что оба транскрибируются как полицистронная мРНК, имитируя естественную конфигурацию IS608. (C) После иссечения промотор mCerulean3 восстанавливается, и клетка проявляет синюю флуоресценцию. Восстановленная последовательность промоутеров отображается под диаграммой. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 2: Визуализация событий транспозонного иссечения. Пример поля зрения TnpB+ с ячейками (A) непосредственно перед и (B) после обнаружения событий эксцедирования транспозона синим флуоресценцией. Белые стрелки обозначают события иссечения. Разница во времени между двумя кадрами составляет 20 минут. Шкала = 5 мкм. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 3: TnpB повышает скорость иссечения транспозона. Скорость иссечения для клеток TnpB+ (оранжевый) и TnpB- (синий) клеток. Средняя скорость от трех реплик показана в виде точек с затененными областями с доверительным интервалом 95%. Данные выравниваются таким образом, что ячейки начинают иссекаться при t = 0. Максимальная измеренная скорость для клеток TnpB+ составляла 5,1 ± 2,4 x 10-2 событий на клетку в час, в то время как для TnpB- составляла 1,4 ± 0,48 x 10-2 события на ячейку в час. Средняя скорость за весь показанный интервал составила 2,6 ± 1,8 x 10-2 событий на ячейку в час для клеток TnpB+ и 5,3 ± 2,9 x 10-3 событий на ячейку в час для TnpB-клеток. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 4: Статистика экспрессии белка для иссеченных клеток по сравнению с общей популяцией клеток. Каждый кадр был разделен на 64 равных блока, и флуоресценция измерялась для клеток, иссекающихся внутри блока, и для всех клеток, содержащихся в блоке, независимо от активности иссечения. Вероятность, построенная на оси Y, измеряется как количество пикселей указанной интенсивности в каждом типе ячеек, деленное на общее количество пикселей. Размер блока для каждого кадра был установлен на 445 x 445 пикселей. (A) Клетки, которые подвергаются иссечению (темно-красный), экспрессируют больше TnpB, чем население в целом (светло-красный). Средняя красная флуоресценция для иссеченных клеток составила 51,3 ± 15,4 а.е. (темно-красный), в то время как для всех клеток она составляла 42,5 ± 7,4 а.е. (светло-красный). (B) Уровни транспозазы Venus-TnpA аналогичны в TnpB- (верхних) и TnpB+ (нижних) клетках. Наборы данных нормализуются таким образом, что средние желтые флуоресценции общей популяции клеток (светло-желтый) равны для TnpB+/- при 105,7 а.е. Клетки, которые были идентифицированы как подвергающиеся транспозонному иссечению (темно-желтый), демонстрируют более высокую желтую флуоресценцию, чем в общей популяции, с аналогичными распределениями для TnpB- (вверху) и TnpB + (внизу). Средние желтые флуоресценции иссечивающих популяций составляют TnpB-: 158,3 ± 68,2 а.е. и TnpB+: 193 ± 79,9 а. е. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Дополнительный фильм 1: Динамика иссечения IS608 в реальном времени с выражением TnpB. Фильм, показывающий 5-часовой сегмент динамики IS608 в реальном времени; кадр захватывается каждые 20 мин. Иссечение IS608 визуализируется как развитие ярко-синей флуоресценции. Ячейки, показанные в этом фильме, включают выражение TnpB. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.
Дополнительный фильм 2: Динамика иссечения IS608 в реальном времени без выражения TnpB. Фильм, показывающий 5-часовой сегмент динамики IS608 в реальном времени; кадр захватывается каждые 20 мин. Иссечение IS608 визуализируется как развитие ярко-синей флуоресценции. Ячейки, показанные в этом фильме, не содержат выражения TnpB. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить этот файл.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Уникальный метод, представленный здесь для визуализации транспонируемой активности элементов в живых клетках в режиме реального времени, представляет собой чувствительный анализ, который может непосредственно обнаруживать транспозицию в живых клетках и в режиме реального времени и коррелировать эту активность с экспрессией вспомогательных белков. Хотя пропускная способность ниже, чем может быть достигнута объемными методами, этот метод позволяет достичь подробных измерений активности ТЭ и экспрессии белка в отдельных живых клетках.
Различные инструменты и методы могут быть использованы для выращивания клеток непосредственно на микроскопе для визуализации в режиме реального времени. Используемый здесь метод роста клеток на агарозных подушечках имеет то преимущество, что он быстрый, дешевый и простой в исполнении. Возможный недостаток, в зависимости от состояния клеточного роста, заключается в том, что ресурсы, доступные для поддержки роста клеток в агарозной подушке, ограничены, и, следовательно, клетки естественным образом исчерпают эти ресурсы и перестанут расти через относительно короткий период времени (12-24 ч). Следовательно, необходимо позаботиться о том, чтобы подготовить клетки к устойчивому росту и привить прокладку при достаточно низкой плотности, чтобы дать достаточно времени для измерения. Микрофлюидика может быть использована для поддержания клеток в устойчивом состоянии экспоненциального роста в течение длительных периодов времени24, хотя эти методы требуют дополнительных знаний, оборудования и настройки, чтобы быть эффективными.
В дополнение к более подробной работе лаборатории Кульмана19 здесь проиллюстрировано, что связанный с семейством IS200/IS605 TE белок TnpB увеличивает скорость иссечения IS608 до пяти раз, и что увеличение иссечения напрямую коррелирует с более высокими уровнями экспрессии TnpB. Эти методы являются одним из примеров улучшенных методов анализа, которые могут помочь пролить свет на транспозонную активность и ее влияние на мутационную и эволюционную динамику.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Acknowledgments
Финансовую поддержку этому исследованию оказали стартап-фонды из Калифорнийского университета.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 2 Ton Clear Epoxy | Devcon | 31345 | |
| Agarose | Sigma-Aldrich | 5066 | |
| Ammonium sulfate | Sigma-Aldrich | AX1385-1 | |
| Anhydrotetracycline hydrochloride | Sigma-Aldrich | 37919 | |
| Argon Laser | Melles Griot | 35-IMA-840-015 | |
| Blue Filter Cube | Chroma | Ex: Z457/10X, Em: ET485/30M | |
| D(+)Glucose | Sigma-Aldrich | G7021 | |
| Eclipse Ti-E Microscope | Nikon | Discontinued | |
| Eppendorf epTIPS Boxes and Refill Trays, Volume: 0.1 to 10 µL, Length: 3.4 cm, 1.33 in., PP (Polypropylene) | Eppendorf North America Biotools | 22491504 | |
| Eppendorf epTIPS Boxes and Refill Trays, Volume: 50 to 1000 µL, Length: 7.1 cm, 2.79 in., PP (Polypropylene) | Eppendorf North America Biotools | 22491555 | |
| Ferrous Sulfate Acs 500 g | Fisher Scientific | 706834 | |
| Fiji | Fiji (imagej.net) | ||
| Fisher BioReagents LB Broth, Miller (Granulated) | Fisher Scientific | BP9723-2 | |
| Glass Cover Slide | Fisher Scientific | 12-542B | |
| Kanamycin Sulfate | Sigma-Aldrich | 1355006 | |
| Magnesium sulfate Cert Ac | Fisher Scientific | XXM63SP3KG | |
| Microscope Heater | World Precision Instruments | 96810-1 | |
| Potassium Phosphate Monobasic | Fisher Scientific | 17001H | |
| ProScan III Stage | Prior | ||
| Red Filter Cube | Chroma | Ex: ET560/40X, Em: ET645/75M | |
| Sapphire 561 LP Laser | Coherent | 1170412 | |
| Slide, Microscope | Fisher Scientific | 125535B | |
| Thiamine Hydrochloride | Sigma-Aldrich (SIAL) | T1270-100G | |
| Ti-LU4 Laser Launch | Nikon | ||
| Yellow Filter Cube | Chroma | Ex: Z514/10X, Em: ET535/30M |
References
- Cowley, M., Oakey, R. J. Transposable elements re-wire and fine-tune the transcriptome. PLoS Genetics. 9 (1), 1003234 (2013).
- Schneider, D., Lenski, R. E. Dynamics of insertion sequence elements during experimental evolution of bacteria. Research in Microbiology. 155 (5), 319-327 (2004).
- Chao, L., Vargas, C., Spear, B. B., Cox, E. C. Transposable elements as mutator genes in evolution. Nature. 303 (5918), 633-635 (1983).
- Coufal, N. G., et al. L1 retrotransposition in human neural progenitor cells. Nature. 460 (7259), 1127-1131 (2009).
- Kano, H., et al. L1 retrotransposition occurs mainly in embryogenesis and creates somatic mosaicism. Genes & Development. 23 (11), 1303-1312 (2009).
- Belancio, V. P., Deininger, P. L., Roy-Engel, A. M. LINE dancing in the human genome: transposable elements and disease. Genome Medicine. 1 (10), 97 (2009).
- Goodier, J. L. Retrotransposition in tumors and brains. Mobile DNA. 5, 11 (2014).
- Kim, N. H., et al. Real-time transposable element activity in individual live cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (26), 7278-7283 (2016).
- Lutz, R., Bujard, H. Independent and tight regulation of transcriptional units in Escherichia coli via the LacR/O, the TetR/O and AraC/I1-I2 regulatory elements. Nucleic Acids Research. 25 (6), 1203-1210 (1997).
- Calos, M. P., Miller, J. H. The DNA sequence change resulting from the IQ1 mutation, which greatly increases promoter strength. Molecular and General Genetics MGG. 183 (3), 559-560 (1981).
- Markwardt, M. L., et al. An improved cerulean fluorescent protein with enhanced brightness and reduced reversible photoswitching. PLoS One. 6 (3), 17896 (2011).
- Nagai, T., et al. A variant of yellow fluorescent protein with fast and efficient maturation for cell-biological applications. Nature Biotechnology. 20 (1), 87-90 (2002).
- Kersulyte, D., et al. Transposable element ISHp608 of Helicobacter pylori: nonrandom geographic distribution, functional organization, and insertion specificity. Journal of Bacteriology. 184 (4), 992-1002 (2002).
- Shmakov, S., et al. Diversity and evolution of class 2 CRISPR-Cas systems. Nature Reviews Microbiology. 15 (3), 169-182 (2017).
- Bao, W., Jurka, J. Homologues of bacterial TnpB_IS605 are widespread in diverse eukaryotic transposable elements. Mobile DNA. 4 (1), 12 (2013).
- Siguier, P., Gourbeyre, E., Chandler, M. Bacterial insertion sequences: their genomic impact and diversity. FEMS Microbiology Reviews. 38 (5), 865-891 (2014).
- Altae-Tran, H., et al. The widespread IS200/IS605 transposon family encodes diverse programmable RNA-guided endonucleases. Science. 374 (6563), 57-65 (2021).
- Karvelis, T., et al. Transposon-associated TnpB is a programmable RNA-guided DNA endonuclease. Nature. 599 (7886), 692-696 (2021).
- Kaur, D., Kuhlman, T. E. IS200/IS605 family-associated TnpB increases transposon activity and retention. bioRxiv. , (2022).
- Benson, D. A., et al. GenBank. Nucleic Acids Research. 41, Database issue 36-42 (2013).
- Shaner, N. C., et al. Improved monomeric red, orange and yellow fluorescent proteins derived from Discosoma sp. red fluorescent protein. Nature Biotechnology. 22 (12), 1567-1572 (2004).
- Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
- Ton-Hoang, B., et al. Single-Stranded DNA transposition is coupled to host replication. Cell. 142 (3), 398-408 (2010).
- Wang, P., et al. Robust growth of Escherichia coli. Current Biology. 20 (12), 1099-1103 (2010).
