Este artigo descreve um procedimento para produzir iTenócitos gerando células estromais mesenquimais derivadas de iPSC com superexpressão combinada de Scleraxis usando um vetor lentiviral e estiramento uniaxial através de um biorreator 2D.
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Artigo de método
Este artigo descreve um procedimento para produzir iTenócitos gerando células estromais mesenquimais derivadas de iPSC com superexpressão combinada de Scleraxis usando um vetor lentiviral e estiramento uniaxial através de um biorreator 2D.
Os desafios atuais no reparo de tendões e ligamentos requerem a identificação de um candidato adequado e eficaz para a terapia baseada em células para promover a regeneração tendínea. Células estromais mesenquimais (CTMs) têm sido exploradas como uma potencial estratégia de engenharia tecidual para reparo tendíneo. Embora sejam multipotentes e tenham potencial regenerativo in vivo, são limitados em sua capacidade de autorrenovação e exibem heterogeneidade fenotípica. As células-tronco pluripotentes induzidas (iPSCs) podem contornar essas limitações devido à sua alta capacidade de autorrenovação e plasticidade de desenvolvimento incomparável. No desenvolvimento de tenócitos, a Scleraxis (Scx) é um regulador molecular direto crucial da diferenciação tendínea. Além disso, a mecanoregulação tem se mostrado um elemento central que orienta o desenvolvimento e a cicatrização do tendão embrionário. Como tal, desenvolvemos um protocolo para encapsular o efeito sinérgico da estimulação biológica e mecânica que pode ser essencial para a geração de tenócitos. As iPSCs foram induzidas a se tornarem células estromais mesenquimais (iMSCs) e foram caracterizadas com marcadores clássicos de células estromais mesenquimais via citometria de fluxo. Em seguida, usando um vetor lentiviral, as iMSCs foram transduzidas para SCX superexpressas estavelmente (iMSCSCX+). Essas célulasiMSC SCX+ podem ser posteriormente amadurecidas em iTenócitos via carga de tração uniaxial usando um biorreator 2D. As células resultantes foram caracterizadas observando-se a suprarregulação dos marcadores tendinosos precoce e tardio, bem como a deposição de colágeno. Este método de geração de iTenócitos pode ser usado para auxiliar os pesquisadores no desenvolvimento de uma fonte alogênica alogênica potencialmente ilimitada para aplicações de terapia celular de tendão.
Para resolver as questões contemporâneas no reparo de tendões e ligamentos, há um requisito para um candidato celular pertinente adequado para terapias baseadas em células. Uma via de investigação em engenharia tecidual para reparo tendíneo envolve a exploração de células estromais mesenquimais derivadas da medula óssea (CTMs-MO) e células estromais derivadas do tecido adiposo (CTAs) como estratégias potenciais. Essas células têm capacidade multipotente, grande abundância e potencial regenerativo in vivo. Além disso, demonstraram maior capacidade de cicatrização e melhora dos resultados funcionais em modelos animais1. No entanto, essas....
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Este protocolo de produção de iTenócitos pode ser realizado em três etapas principais: iPSCs para iMSCs (10 dias), iMSC para iMSCSCX+ (2 semanas), iMSCSCX+ para iTenócitos (mínimo 4 dias). Cada etapa principal do protocolo pode ser pausada e reiniciada posteriormente, dependendo do cronograma experimental. Para os métodos envolvidos com a cultura de células, técnicas estéreis devem ser empregadas. Todas as células deste protocolo devem ser cultivadas a 37 °C, 5% CO2 e 95% de umidade.
1. Indução humana de iPSC em células estromais mesenquimais induzidas (iMSCs)
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Diferenciação de iPSCs humanas para iMSCs
Como descrito anteriormente, o protocolo atual para diferenciar iPSCs em iMSCs envolve a formação de corpos embrionários2. Esse processo leva aproximadamente dez dias para induzir iMSCs a partir de iPSCs (Figura 1A). No entanto, é altamente recomendável passar pelos iMSCs recém-gerados pelo menos duas vezes. Isso não só ajuda a eliminar a necessidade de placas revestidas com gelatina, mas também estabelece .......
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Neste protocolo, os iTenócitos são gerados através de três etapas principais: (1) indução de iPSCs para iMSCs, (2) superexpressão de SCX usando um vetor lentiviral e (3) maturação das células através de tensão uniaxial 2D.
O protocolo apresentado para diferenciar iPSCs em iMSCs foi previamente descrito por nosso grupo2. Desde essa publicação, vários protocolos foram desenvolvidos, incluindo um protocolo estabelecido para o uso de iMSCs em ensaios clínicos 21,22,23, bem .......
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Todos os autores não têm conflitos de interesse a declarar.
Este estudo foi parcialmente apoiado pelo NIH/NIAMS K01AR071512 e CIRM DISC0-14350 para Dmitriy Sheyn. Os dois plasmídeos de embalagem de lentivírus foram um presente do laboratório Simon Knott (Departamento de Ciências Biomédicas, Cedars-Sinai Medical Center).
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| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| 2-mercaptoetanol | Sigma Aldrich | M3148 | |
| Accutase | StemCell Technologies | 7920 | reagente de dissociação celular |
| Solução antibiótica-antimicótica | Thermofisher | 15240096 | |
| Anti-CD105 | Ancell | 326-050 | |
| APC camundongo anti-humano CD44 | BD Biosciences | 559942 | |
| APC mouse IgG2 K isotipo controle | BD Biosciences | 555745 | |
| BenchMark soro fetal bovino | GeminiBio | 100-106 | |
| Biglycan | Thermofisher | Hs00959143_m1 | |
| Albumina de soro bovino | Millipore Sigma | A3733 | |
| Colágeno tipo I alfa 1 cadeia humana Taqman primer | Thermofisher | Hs00164004_m1 | |
| Colágeno tipo III alfa 1 cadeia humana Taqman primer | Thermofisher | Hs00943809_m1 | |
| Dimetilsulfóxido | Millipore Sigma | D8418 | |
| DMEM, baixa glicose, piruvato, sem glutamina, sem fenol vermelho | Thermofisher | 11054020 | |
| meio essencial mínimo de águia (EMEM) | ATCC | 30-2003 | |
| Plasma bovino de fibronectina | Sigma Aldrich | F1141 | |
| FITC camundongo anti-humano CD90 | BD Biosciences | 555595 | |
| Gelatina de pele suína | Sigma Aldrich | G1890 | |
| Cabra anti camundongo IgG1-PE | Bio-Rad | STAR117 | |
| HEK 293T / 17 | ATCC | CRL-11268 | |
| IMDM, sem vermelho de fenol | Thermofisher | 21056023 | |
| iPSCs: 83i-cntr-33n1 | Cedars-Sinai iPSC Core Facility | N/A | https://biomanufacturing.cedars-sinai.org/product/cs83ictr-33nxx/ |
| Anticorpo de controle de isotipo, camundongo IgG2a-FITC | Miltenyi Biotec | 130-113-271 | |
| KnockOut substituição de soro | Thermofisher | 10828010 | |
| ácido L-ascórbico | Sigma Aldrich | A4544 | |
| L-glutamina | Thermofisher | 2503081 | |
| Matrigel | Corning | 354230 | matriz de membrana basal |
| MechanoCulture FX | CellScale | N/A | aparelho de alongamento |
| MEM solução de aminoácidos não essenciais | Thermofisher | 11140050 | |
| Mohawk primer humano Taqman | Thermofisher | Hs00543190_m1 | |
| mTeSR Plus | StemCell Technologies | 100-0276 | |
| PBS | Thermofisher | 10010023 | |
| Receptor de fator de crescimento derivado de plaquetas Um primer Taqman humano | Thermofisher | Hs00998018_m1 | |
| Poli(2-hidroxietil metacrilato) | Sigma Aldrich | 192066 | |
| Reagentes de infecção/transfecção Polybrene | Millipore Sigma | TR-1003 | |
| Humano recombinante TGF-beta 1 proteína humana Taqman primer | RnD Systems | 240-B | |
| Scleraxis humano Taqman primer | Thermofisher | Hs03054634_g1 | |
| SCXA (SCX) (NM_00108050514) humano marcado ORF clone | OriGene | RC224305L4 | |
| Placas de silicone | CellScale | N / A | |
| Azida de sódio | Millipore Sigma | S2002 | |
| Tenascina C primer Taqman humano | Thermofisher | Hs00370384_m1 | |
| Tenomodulin primer Taqman humano | Thermofisher | Hs00223332_m1 | |
| Trombospondina 4 primer Taqman humano | Thermofisher | Hs00170261_m1 | |
| Reagente de transfecção, BioT | Bioland Scientific LLC | B01-01 | |
| Tripsina-EDTA (0,25%) | Thermofisher | 25200072 | |
| Membro da família de proteínas promotoras de polimerização de tubulina 3 | Thermofisher | Hs03043892_m1 | |
| dicloridrato Y-27632 | Biogems | 1293823 |
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