Name: 세 가지 차원 혼합 셀 회전 타원체 공동 문화에서 Mammary 상피 세포의 분리 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-30T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 27 s
Description: 배우세요 3차원 혼합 세포 공동 배양에서 유방 상피 세포를 분리하는 방법으로, 기질 섬유아세포가 상피 세포 생물학에 미치는 영향을 분석합니다. 이 기법은 종양 미세환경 연구에 활용됩니다.

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1. 입체 공동 문화 구축 <ol><li> 공동 문화를 확립하기 전에 하루, 하룻밤은 4 ° C 냉장고에서 얼음 냉동실과 해동에서 Matrigel를 제거합니다. </li><li> 10% 소 송아지 혈청, 5 μg / ML 인슐린과 DME/F12 매체 : 실험 당일 사용되는 상피 세포에 대한 매체 (이 예에서는 HMEC 중간에 해당하는 공동 문화를 위해 매체를 준비 , 1 μg / ML의 하이드로코티손, 1 NG / ML EGF). 이전 Matrigel과 믹싱까지 얼음으로 최소한 1 시간마다 매체를 보관하십시오. </li><li> 해동 Matrigel을 희석하기 위해 Matrigel의 총 원하는 수량 결정 : 매체 (300 μL마다 잘 24 - 잘 접시) 및 얼음에 멸균 튜브에 얼음처럼 차가운 HMEC 매체의 절반 볼륨을 추가합니다. 그렇다면 1:1 희석을 달성하기 위해 튜브에 해동 Matrigel의 같은​​ 반 전체 볼륨을 추가합니다. 얼음 튜브를 유지. </li><li> 장소 50 Matrigel의 μL : 24 - 잘 접시의 지정된 우물의 중간 중간 잘 혼합하고humidified 공기 5 % CO 2와 37 ° C 배양기에서 10 분 동안 품어. </li><li> 우물에 매체를 혼합하여 다른 60 분 품어 : Matrigel의 추가 450 μL를 추가합니다. </li><li> 인큐베이션 기간 동안, 0.5 × 10의 농도에서 섬유아 세포 (여기서 GFP를 표현 H-TERT-불후의 감소 Mammary 섬유아 세포)과 상피 세포 (여기서 RFP을 표현 H-TERT-불후의 인간 Mammary 상피 세포주)의 1:1 정지를 준비 5 세포 HMEC 매체의 0.5 ML 각. </li><li> 60 분 인큐베이션 단계 후에 부드럽게 경화 젤 상단에 세포 현탁액을 떨어뜨, 그리고 보육에 문화를 반환합니다. </li><li> 2 일간 문화를 방해하지 마십시오. 이렇게하면 중간 아주 부드럽게 잘 부드럽게 신선한 HMEC 매체와 교체의 측면에서 매체를 aspirating하여 2~3일마다 변경할 수 있습니다. </li><li> 현미경 하에서 일상 회전 타원체 형성을 모니터링합니다. 문화는 10-14일 후 일반적으로 성숙입니다. 이미지로빛 또는 형광 현미경을 사용하여 적절한. 회전 타원체의 크기와 투영 길이 광 현미경 하에서 측정할 수 있습니다. </li></ol> 2. 공동 문화권 회전 타원체로부터 세포의 분리 <ol><li> 멸균 2-ML 유리 피펫을 사용하여 매우 부드럽게, 문화를 피펫 아래 10X. 또는 문화를 피펫하기 위하여 70 % 에탄올에 autoclaving 또는 침지 소독 가위를 사용하여 1000 microliter 플라스틱 피펫 팁의 끝부분을 잘라. 유리 피펫 또는 멸균 15 ML의 원심 관에 컷 플라스틱 피펫 팁 및 실온에서 2,000 rpm으로 5 분 원심 중과 문화를 전송합니다. 세포 spheroids은 침전 하단 것입니다. </li><li> 부드럽게 centrifuged 튜브의 상단에서 중단 Matrigel을 제거 멸균 파스퇴르 피펫 팁을 사용합니다. </li><li> pelleted spheroids 1 ML HMEC 매체를 추가, 최대 피펫 아래로 3 배를 멸균이 ML 유리 피펫으로, 그리고 24 우물에 잘으로 문화를 전송조직 배양 플레이트. </li><li> spheroids이 매체를 변경하기 전에 최소 48 시간 동안 접시에 연결하도록 허용합니다. 시간이지나면서 세포가 회전 타원체의 구조를 떠날 것이며 monolayers로 성장. </li><li> 세포가 50 % 합류점에 도달 통과 세포 문화. 첫 100 밀리미터 접시 (약 3~5일)에 나서 35 밀리미터 접시 (약 2-4일)에 문화를 확장합니다. 각 통로 단계로 바로 전에 수동으로 가능한 많은 잔류 &#39;유령 spheroids &quot;로 제거하는 멸균 파스퇴르 피펫을 사용합니다. </li><li> 형광 셀 정렬 필요한 경우가 적절한 세포 표면 마커 더 나아가 별도의 서로 다른 세포 인구를 사용하는 인구의 순도를위한 유동세포계측법으로 세포를 분석합니다. 원하는대로 분리된 세포는 추가 분석을 위해 지금 준비가되어 있습니다. </li></ol> 3. 대표 결과 공동 문화 입체 회전 타원체에서는 공학 Tiam1 입을와 섬유아 세포는 mA로 증가 침공을 유발mammary 상피 세포에 의해 trix (그림 1, D를 비교, E에 F, B, C). 와 섬유아 세포는 Tiam1 이상의 표현이 유방암 세포주 SUM159 (그림 1, G, H, I로 J, K, L을 비교)에 의해 감소 매트릭스 침공을 유도 설계. 그림 2와 같이 일단 공동 교양 spheroids가 설립되어, 세포 인구는 2 차원 맥락에서 다시 도금에 의한 spheroids으로부터 격리 수 있습니다. 테스트 세포의 상대적인 성장 속도에 따라 순수 인구는 시리얼 통로를 통해 등장할 수있다 (그림 3 참조) 또는 적절한 세포 마커를 사용하여 정렬할 수 있습니다. 공동의 문화 차원에서 격리 후, 상피 세포 분석을위한 충분한 기회를있게 장시간 동안 섬유아 세포와 공동으로 문화 수여 속성을 유지합니다. 이 예제에서는 Tiam1 - 결함 섬유아 세포에 노출이 주 동안 지속된 공동 교양 HMECs 증가 마이 그 레이션을 유도3 차원의 공동 문화의 fter 절연 (그림 4). <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/3760/3760fig1.jpg" /> 그림 1. 빛과 형광 현미경 하에서 공동 문화 확립 회전 타원체의 이미징. 회전 타원체 문화가 mammary 상피와 fibroblast 세포 라인과 함께 설립하여 10-14일 위해 문화에 성장할 수있게됩니다. AF : 상피 = HMEC-mCherry 전지. GL : 상피 세포 = SUM159-mCherry 전지. AC, GI : fibroblast = 컨트롤 RMF-GFP 세포. DF : fibroblast = RMF-GFP Tiam1 입을 가진. JL : fibroblast = RMF-GFP Tiam1 넘는 표현으로. 화살표는 매트릭스에 침입하는 상피 전망을 나타냅니다. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/3760/3760fig2.jpg" /> 그림 2. Matrigel 문화로부터 격리 후 빛과 형광 현미경 하에서 문화 시리얼 이미징. 데이 0 즉시 격리 후 이미징 나타내고 일 1, 2 및5 고립 후 일을 나타냅니다. 시간이 지남에 따라 회전 타원체 증가를 떠나는 세포의 코로나. 결국 거의 세포와 &quot;귀신&quot;회전 타원체는 (화살표) 남아 있습니다. 거의 spheroids 귀신 제거하고 처음 통과 후 남아 있습니다. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/3760/3760fig3.jpg" /> Matrigel 공동의 문화로부터 고립 후 세포의 그림 3. 유동세포계측법 분석. 공동 문화권 회전 타원체가 성숙되면 세포는 pipetting과 공동 문화 3D 및 passaging 시리얼으로부터 격리됩니다. 샘플 aliquots가 유동세포계측법에 의해 분석된다 (식별하는 녹색 형광과 붉은 형광을 사용하여이 예제에서 GFP를 - 표현하는 각각 섬유아 세포와 mCherry-표현 상피 세포) 상피와 fibroblast 세포의 상대 인구를 결정합니다. <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/3760/3760fig4.jpg" /> 그림 4. HMECs의 Transwell 마이 그 레이션 isolati 후에도Matrigel 공동 문화부터. 순수 인구가 문화 또는 형광 셀 정렬을 통해 얻은되고 나면 원하는대로, 세포 분석 할 수 있습니다. 여기 HMECs 중 제어 (C) 또는 천공 transwells 걸쳐 Tiam1 결함 (shT) 섬유아 세포와 공동 교양의 마이 그 레이션은 공동의 문화로부터 고립 후 2, 4 및 8 주가되면 평가되었다.

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</ol>

관심의 어떠한 충돌 선언 없습니다.

여기에 제시된 방법은 종양 세포를 포함한 상피 세포에 stromal 섬유아 세포의 효과를 분석에 대한 간단한 접근 방식을 나타냅니다. 추가 분석을 위해 모체의 세포는 쉽게 추출을 가능하게하면서 그것은 세포외 지하 멤브레인 매트릭스에서 지원하는 입체적인 맥락 내에서 직접적인 세포 - 세포 상호 작용을 허용합니다. 이것은 fibroblast 라인은 선택과 상피 라인은 그림 1에서와 같이 침략 가능성에 따라 다를 수의 신호 전달 경로에 영향을 조절할 수로 종양 - 관련 기질 연구에 적용할 수 있습니다. 3 차원 공동 배양 모델은 세포 invasiveness의 변화가 유도되었다는 시각적인 검증을 허용합니다. 격리 프로토콜 처리의 최소 3D 문화의 세포의 추출을 허용하고 셀 속성에 영향을 미칠 수 트립신 또는 매트릭스 - 용해 대리인의 사용을 방지합니다. 공동 문화 3D의 fibroblast에 대한 노출의 효과 후미 상피 세포에서 지속이후 분석 결과 (그림 4)을 촉진 3D ...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 댓글 </td></tr><tr><td> BD Matrigel </td><td> BD Biosciences </td><td> 356,237 </td><td> 무료 페놀 - 레드 </td></tr><tr><td> Hyclone 고전 액체 매체 : DMEM F12 </td><td> ThermoScientific </td><td> SH30023.01 </td><td></td></tr><tr><td> Hyclone 소의 송아지 고기 세럼 </td><td> ThermoScientific </td><td> SH3007303 </td><td></td></tr><tr><td> 인슐린 </td><td> EMD 화학 </td><td> 407,709 </td><td> 0.005N HCL에 디졸브, 0.22 μm의 필터 </td></tr><tr><td> 하이드로코티손 </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td><td> H4001 </td><td> 50% EtOH에 디졸브, 0.22 μm의 필터 </td></tr><tr><td> EGF </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td><td> E9644 </td><td> 10mM 초산에 용해, 필터는 0.22 μm의를 </td></tr></tbody></table>

세 가지 차원 혼합 셀 회전 타원체 공동 문화에서 mammary 상피 세포의 분리

Isolation of Mammary Epithelial Cells from Three-dimensional Mixed-cell Spheroid Co-culture

거대한 노력은 쉬운 세포 조작을 허용 고전적인 2 차원 세포 배양 모델을 사용하여 많은이 작품의이 완료되어 정상 및 악성 세포 행동 1-2,,에 관련된 신호 전달 경로와 분자를 식별하고 있진 않지만. 그것은 세포 내 신호 전달 경로는 차원 및 3-4 세포 표면 장력을 포함한 세포외 세력에 의해 영향을받는 것이 분명되었다. 다중 접근 방식은 더 정확하게 생물 학적 조직 구조 3 대표하는 입체적인 모델을 개발하기 위해 촬영되었습니다. 이러한 모델은 다중 차원 건축 스트레스를 통합할 수 있지만, 세포의 논리상 필연의 효과 연구 모형의 한계 및 후속 분석을 위해 세포를 추출의 어려움으로 인해 2 차원 조직 배양에보다 쉽게​​ 이해되는 것입니다. tumorigenesis 및 종양 행동 종양 주위 microenvironment의 중요한 역할 I의 점점 4 인정되고. 종양 기질은 여러 세포 유형 및 세포 분자로 구성되어 있습니다. 종양이 개발 중에 종양 세포 stromal 세포 5 사이의 양방향 신호가 없습니다. 종양 - 기질 공동 진화에 참여하는 몇 가지 요소가 확인되어 있지만, 체계적으로 파악하고 이러한 신호 6 전체 배열을 공부하는 간단한 기술을 개발할 필요가 여전히있다. 섬유아 세포는 정상이나 종양 - 관련 stromal 조직에서 가장 풍부한 셀 타입이며, 증착 및 지하 막과 paracrine 성장 요인 7의 유지에 기여한다. 많은 그룹은 종양 치료에 대한 반응, 면역 세포의 채용, 신호 전달 분자, 증식, apoptosis, angiogenesis, 그리고 침공 8-15 등 다양한 세포 기능에 섬유아 세포의 역할을 공부하고 입체 문화 시스템을 사용해 왔습니다. 우리는 엉덩이에 대한 간단한 방법을 최적화했습니다혼합 세포 인구 (공동 문화) 16-22의 입체 문화를 만드는 상용 세포외 매트릭스 모델을 사용 mammary 상피 세포에 mammary 섬유아 세포의 효과를 essing. 지속적인 공동 문화와 세포 내부에있는 섬유아 세포 클러스터링과 크게 spheroids의 외관에와 매트릭스로 멀티 셀룰러 전망을 형성 상피 세포와 spheroids를 형성하고 있습니다. 변경된 상피 세포 invasiveness로 연결 섬유아 세포의 조작이 쉽게 숫자와 상피 전망 23 길이의 변화에 의해 계량하실 수 있습니다. 더욱이, 우리는 상피 행위에 대한 fibroblast 노출의 효과 분석을 용이하게 입체 공동 문화 상피 세포를 분리하는 방법을 고안했습니다. 우리는 공동 문화의 영향이 여러 assays를 수행하기 위해 충분한 시간을 허용, 상피 세포 격리 후 몇 주 동안 지속 것으로 나타났습니다. 이 방법의 세포에 대한 적응악성 잠재력을 변화하고하는 것은 전문적인 장비를 필요하지 않습니다. 이 기술은 여러 조건 하에서 체외 세포 모델의 급속한 평가를 허용하고, 해당 결과는 생체내 동물 조직 모델뿐만 아니라 인간의 조직 샘플에서 비교할 수 있습니다.

간단한 방법은 관련 상피 세포에서 조직 섬유아 세포의 효과를 분석하는 설명되어 있습니다. 이 방법과 3 차원 조직 배양의 결합 차원에서 고립 후 세포의 분석을 용이하게하실 수 있습니다. 기술은 종양 세포에서 종양 - 관련 기질의 효과를 체계적으로 연구를 허용, 악성 잠재력을 변화의 세포에 적용됩니다.

세 가지 차원 혼합 셀 회전 타원체 공동 문화에서 Mammary 상피 세포의 분리

정상 및 악성 세포 행동에 관여하는 신호 전달 경로와 분자를 규명하기 위해 엄청난 노력이 기울여져 왔으나1-2, 이러한 연구의 상당 부분은...

본 절차의 전체적인 목적은 3차원 혼합 세포 조직 배양으로부터 상피 세포를 유도하여, 기질 섬유아세포가 상피 세포 생물학에 미치는 영향을 분석하는 것입니다. 이는 먼저 3차원 혼합 세포 스테로이드 공배양을 구축함으로써 달성됩니다. 그 후, 공배양 후의 상피 세포를 분리하기 위해 매트릭스 배양에서 구형체(spheroids)를 분리합니다.다음 단계는 공동 배양 후의 상피 세포를 분석 준비가 될 때까지 계대 배양하는 것입니다. 최종적으로, 3차원 배양에서 섬유아세포에 노출되었을 때 상피 세포의 행동에 미치는 영향은 배양물의 현미경 이미징과 공동 배양 후 분석을 통해 평가할 수 있습니다. 상피 세포의 경우, 여기에서 보여주는 매트릭스 침습의 형광 이미징 및 Transwell 이동 분석 등이 있습니다. 공동 배양을 구축한 다음 날, 저희 실험실의 연구원인 Quin이 해당 절차를 시연하겠습니다.냉동고에서 matrigel을 꺼내 4°C 냉장고 내 얼음 위에서 하룻밤 동안 해동합니다. 실험 당일에는 matrigel과 혼합하기 최소 한 시간 전에 배양액을 얼음 위에 둡니다. 해동된 matrigel을 희석합니다.공동 배양에 필요한 양의 절반에 해당하는 차가운 H Mac 배지를 얼음 위에 놓인 멸균 튜브에 넣습니다. 그 다음, 튜브를 얼음 위에 둔 상태로 해동된 matrigel을 동일한 부피만큼 추가하여 1:1 희석액을 만듭니다. 이어서, 24웰 플레이트의 지정된 웰 중앙에 matrigel 배지 혼합물 50 µL를 넣고, 습윤 공기와 5% CO2가 공급되는 37 °C 인큐베이터에서 10분 동안 배양합니다.그런 다음 웰에 matrigel 배지 혼합물을 450 µL 더 추가하고 60분 동안 더 배양합니다. 두 번째 배양 단계 동안, H me 배지 0.5 mL당 0.5 × 10⁵ cells 농도로 섬유아세포와 상피세포의 1:1 현탁액을 준비합니다. matrigel 배지 혼합물이 응고되면 세포 현탁액을 겔 상단에 조심스럽게 떨어뜨리고 배양기를 사용하여 이틀 동안 배양합니다.2~3일마다 웰의 측면에서 배지를 매우 조심스럽게 흡입하여 제거하고 신선한 HEC 배지로 부드럽게 교체하십시오. 현미경으로 매일 스페로이드 형성을 관찰하고, 필요에 따라 광학 또는 형광 현미경을 사용하여 이미지를 촬영하십시오. 멸균된 2 mL 유리 피펫을 사용하여 배양물을 10회나 상하로 피펫팅하여 시작합니다. 그런 다음 유리 피펫으로 배양물을 멸균된 15 mL 원심분리 튜브로 옮기고 실온에서 350 ×g로 10분 동안 원심분리합니다. 원심분리가 완료되면 세포 스페로이드가 튜브 바닥에 가라앉게 됩니다.멸균된 파스퇴르 피펫 팁을 사용하여 원심분리기 상단에서 분해된 매트리젤을 조심스럽게 제거하십시오. 준비 단계입니다. 이제 펠렛 형태의 스테로이드에 H mac 배지 1 mL를 첨가하고, 멸균된 2 mL 유리 피펫으로 2~3회 위아래로 섞은 후, 배양물을 24-웰 조직 배양 플레이트의 웰로 옮기십시오. 배지를 교체하기 전, 스테로이드가 플레이트에 부착될 수 있도록 최소 48시간 동안 유지하십시오.시간이 지남에 따라 세포들은 구형 구조를 벗어나 단층으로 성장하게 됩니다. 세포 배양이 50% Confluence에 도달하면 표준 프로토콜을 사용하여 35 millimeter 디쉬로 계대 배양하여 2~4일 동안 배양하고, 세포의 추가 분석 전 100 millimeter 디쉬로 계대 배양하여 3~5일 동안 배양합니다. 멸균된 pasture pipette을 사용하여 배지를 흡입한 후, 남아 있는 ghost spheroids를 가능한 한 수동으로 제거합니다. 3차원 spheroid 공배양에서 그림 D, E, F에 제시된 것과 같이 TM one silencing이 설계된 섬유아세포는 그림 A, B, C의 대조군 섬유아세포와 비교하여 유선 상피세포의 매트릭스 침습을 증가시킵니다. 그림 D와 F의 화살표로 표시된 것처럼 TM one silenced 섬유아세포가 포함된 spheroid에서 매트릭스로 침습하는 상피 돌기에 주목하십시오. 여기 그림 J, K, L에 제시된 TM one의 과발현이 설계된 섬유아세포는 그림 G, H, I의 대조군 섬유아세포와 비교하여 유방암 세포주 sum 1 59의 침습을 감소시켰습니다. 공배양 spheroid가 형성되면, 그림 G와 I의 화살표로 표시된 대조군 섬유아세포 포함 spheroid와 TM one engineered 섬유아세포 포함 spheroid에서 상피 돌기가 나타나지 않는 것을 비교하십시오.세포 집단은 2차원 환경에서 재배양함으로써 스테로이드로부터 분리할 수 있습니다. 이 합성 이미지는 matrigel 배양에서 분리한 후 광학 및 형광 현미경으로 관찰한 배양 세포의 모습을 보여줍니다. 0일째는 분리 직후의 이미징을 나타내며, 1일, 2일, 5일째는 분리 후 경과된 일수를 나타냅니다.이 스테로이드에서 빠져나오는 세포들의 코로나(corona)가 시간이 지남에 따라 증가하는지 확인하십시오. 결국, 화살표로 강조 표시된 것과 같이 세포가 거의 남아 있지 않은 고스트 스테로이드(ghost steroid) 상태가 됩니다. 고스트 제거 및 계대 배양 후에는 스테로이드가 거의 남지 않습니다.테스트된 세포들의 상대적 성장 속도에 따라 결과가 달라질 수 있습니다. 순수 집단은 연속 계대를 통해 나타나거나 적절한 세포 마커를 사용하여 분리할 수 있습니다. 본 예시에서는 유세포 분석기를 사용하여 샘플을 분석하며, 녹색 형광과 적색 형광을 이용하여 각각 GFP 발현 섬유아세포와 mCherry 발현 상피세포를 식별함으로써 상피세포와 섬유아세포의 상대적 집단 비율을 결정합니다.3D 공배양으로부터 분리한 후에도 상피세포는 섬유아세포와의 장기간 공배양을 통해 부여된 특성을 유지하므로, 분석을 위한 충분한 기회를 가질 수 있습니다. 본 예시에서는, TM one 결핍 섬유아세포에 노출된 공배양 H max가 대조군 섬유아세포(여기서는 C로 표시)에 노출된 경우와 비교하여, 3D 공배양에서 분리된 후 수 주 동안 증가된 이동성을 유지했음을 보여줍니다. 이 절차에 이어 유전자 발현 및 후성유전적 표지의 변화를 분석하는 것과 같은 다른 방법들을 수행하여, 섬유아세포가 상피세포에 미치는 영향에 관한 추가적인 질문에 답할 수 있습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

우리는 세포 - 세포 상호 작용의 차이를 수치 3D 조직 같은 spheroids 및 잠재적인 응용 프로그램을 생성하는 간단하고 빠른 방법을 설명합니다.

3D Spheroids의 생성을위한 간단한 한깅 드롭 세포 배양 프로토콜

인간의 유방 수술 폐기 자료를 처리하는 방법이 설명되어 있습니다. organoids의 형태로 처리 조직은, 무기한 정지 또는 장기 성장 문화에 배치 저장할 수 있습니다. 이 방법은 실험 정상적인 인간 내피 세포 생물학의 심사 및 외인성 섭동의 효과를 수 있습니다.

세포 배양을위한 인간 감소 Mammoplasty과 유방 절제술의 조직의 처리

호르몬 작용을 연구하기에 적합한 인간 유방 상피의 3D 배양 모델을 설명합니다.

인간의 유선 상피의 호르몬 응답 3D 문화 모델

이 원고는 3 차원 (3D)의 균일 한 배열 세포 외 기질에 둘러싸여 정의 형상의 상피 조직을 설계 할 수있는 소프트 리소그래피 기반 기술을 설명합니다. 이 방법은 세포 형태 및 실험 문맥 다양한 의무가 있고 동일한 복제의 높은 처리량의 선별을 허용한다.

세포 외 매트릭스 내에서 임베디드 공학 3 차원 상피 조직

이 프로토콜은 non-adherent / mesenchymal 유방 상피 세포에서 세포 외 소포 (EVs) / 엑소 좀을 정화, 정량화 및 특성화하고 유선 형성능을 내유성 상피 세포로 전달하는 방법을 설명합니다. 줄기 모양의 유방 상피 세포로부터 유래 된 EVs / 엑소 좀은이 세포 특성을 EVs / 엑소 좀을 섭취하는 세포로 전달할 수있다.

extracellular vesicles / exosomes를 통한 유방 기초 상피 세포와 유방 Luminal 세포 사이 유선 형성 능력의 이전

인간의 1차 전립선 상피 세포를 사용하여, 우리는 스페로이드 기반 의 라벨 보유 분석법에 의해 줄기 유사 세포의 기능적 특성화의 새로운 바이오마커 없는 방법을 보고합니다. BrdU, CFSE, 또는 파 레드 2D 셀 라벨링에 대해 단계별 프로토콜이 기재되어; 3 차원 스페로이드 형성; 면역 세포 화학에 의한 라벨-유지 줄기 유사 세포 식별; 및 FACS에 의해 격리.

3차원 스페로이드 배양에서 줄기와 같은 세포의 분리

유방 동맥은 외부 근상피 및 내부 발광 상피 세포를 포함하는 이중 층 구조입니다. 제시된 것은 차동 트립시니화를 이용하여 오르가노이드를 준비하는 프로토콜이다. 이 효율적인 방법은 연구원이 별도로 유선 양식 및 기능에 있는 그들의 역할에 관하여 질문을 탐구하기 위하여 이 2개의 세포 모형을 조작하는 것을 허용합니다.

차동 시도에 의한 모자이크 유방 오르가노이드 생성

유방 상피 세포와 내피 세포 사이 교차 토크는 중요한 유방암 진행에 기여, 종양 성장, 및 전이. 이 연구에서는, 스페로이드는 혈관 및/또는 림프 성 내피 세포와 함께 유방암 세포에서 만들어졌으며 유방암 연구를위한 체외 시스템으로서 자신의 적용성을 입증했습니다.

유방암 연구를 위한 잠재적인 기능적인 시험관 내 모형으로 유방 상피 및 내피 세포 스페로이드

본 연구는 소량의 유방 조직에서 주요 인간 유방 상피 세포(HMEC)를 효율적으로 분리하고 성장시키기 위한 더 쉽고 시간을 절약하며 경제적인 프로토콜을 보고합니다. 이 프로토콜은 실험실 및 임상 응용 분야 모두를 위한 1차 HMEC를 신속하게 생산하는 데 적합합니다.

Isolation and Culture of primary human mammary epithelial cells(원발성 인간 유방 상피세포의 분리 및 배양)

암 전이를 연구하기 위해 이세포성 누화를 캡처하는 3D 암 모델이 매우 필요합니다. 우리의 연구는 침입 및 세포 공간 분포를 연구하는 데 사용할 수 있는 골격 및 골격이 없는 환경에서 이종 다세포 기질-상피의 생성을 제시합니다.

상피암 세포의 스캐폴드가 없는 3D 배양에서 이종다세포 기질 세포(Heteromulticellular Stromal Cells in Scaffold-free 3D Cultures of Epithelial Cancer Cells to Drive Invasion)

배우세요 3차원 혼합 세포 공동 배양에서 유방 상피 세포를 분리하는 방법으로, 기질 섬유아세포가 상피 세포 생물학에 미치는 영향을 분석합니다. 이 기법은 종양 미세환경 연구에 활용됩니다.

세 가지 차원 혼합 셀 회전 타원체 공동 문화에서 Mammary 상피 세포의 분리

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