Name: 전체 혈액 Phenotyping 분석을 사용하여 Multicenter 임상 시험을위한 주요 말초 혈 백혈구 인구의 열거 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-09-16T14:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 45 s
Description: 배우세요 전체 혈액 표현형 분석을 통한 주요 말초 혈 백혈구 인구 열거 방법입니다. 다중 중심 임상 시험에서 유동 세포측정법을 활용하여 면역 반응을 추적하고 정확한 세포 농도 측정이 가능합니다.

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우리는이 방법, 원고 및 비디오의 개발에서의 도움을 제시카 존스, 에리카 클락, 콘 스턴스 Ducar, 도나 스미스, 로이 루이스, 릴리 Apedaile, 조앤 Wiesner, 데빈 아담스, 코리 McBain와 스티븐 Voght 감사드립니다. 이 작품은 빌과 멜린다 게이츠 재단 CAVD 보조금 38,645 (MJM)와 건강 교부금의 국립 연구소 UM1 AI068618 및 AI069481 U01 (MJM)에 의해 지원되었다. EA-N. NIH 그랜트 T32 AI007140에서 지원됩니다. 우리는 그들의 관대 한 장비 기증을 위해 제임스 B. 펜들턴 자선 신탁 감사드립니다.

참고 : 빛의 형광 - 복합 항체를 보호하기 위해 라이트와 바이오 안전 캐비넷의 모든 단계를 수행합니다. 1. 항체 염색법 패널 준비 <ol><li> 항체 염색법 패널은 표 1에서 찾을 수 있습니다. 항체 농도는 전체 피와 적정에 의해 정의하고 동일한 유동 세포 계측법 장비와 스테인드 phenotyping 샘플을 취득하는 데 사용됩니다 절차를 사용해야합니다. </li><li> 적절한 착색의 titers가 결정되면 잠금 캡 튜브에서 하나의 혼합으로 모든 항체가 조화를 이루고 있습니다. 100 μl에 총 볼륨을 가져다 흐름 세척 버퍼 (2 % 열 inactivated 태아 소 혈청과 Dulbecco의 PBS)를 추가합니다. 물들되는 샘플 수에 대한 혼합물을 확장. 이 혼합물은 최대 8 주까지에 대해 4 ° C에 저장할 수 있습니다. </li></ol> 2. 더럽히는 것 <ol><li> 수집 된 혈액은 광고에 다른 목적을 위해 사용하는 경우시간에 민감한 절차 남아있는 혈액 수행하는 동안이 분석에 dition은 따로 나누어지는을 설정할 수 있습니다. 나누어지는이 중요한 세포의 손실없이 venipuncture 후 4 시간 동안 실온에서 최대 저장할 수 있습니다. </li><li> 그대로 비드 펠렛은 Trucount 튜브 및 라벨 샘플 묻은되는 식별 할 수있는 튜브의 하단에 있다는 것을 확인합니다. HVTN 임상 실험에서 실험 데이터 관리 시스템 (프론티어 과학 기술 연구 재단, 애 머스트, NY)은 스테인드 샘플을 라벨 및 추적하는 데 사용됩니다. </li><li> 많은 번호와 모든 시약의 유효 날짜를 기록합니다. 튜브의 가방에있는 제조업체에서 제공 Trucount 관 구슬 카운트 번호를 기록하고, 가방에있는 많은 번호가 튜브에 많은 번호를 일치하는지 확인하십시오. </li><li> 정확하게 단지 금속 리테이너 위에 Trucount 튜브에 전체 혈액의 100 μl를 피펫에 pipetting 반대로 사용합니다. 관의 측면 아래로 번짐의 피를 사용하지 마십시오. </li><li&gt; Trucount 튜브에 일반 (앞으로) pipetting 기술, 혼합 항체 염색법 패널의 피펫 100 μl를 (표 1 참조)를 사용. 약 15 초 혼합하기위한 낮은 속도로 관과 소용돌이를 캡. 시각 비드 펠렛이 완전히 용해되어 있는지 확인하기 위해 튜브를 검사한다. </li><li> 어둠 속에서 실내 온도 (15-30 ° C)에서 15 분 동안 Trucount 관을 품다. </li><li> 필요한 경우, diH 2 O.를 사용하여 1X에 10 나누어지는 × FACS Lysing 솔루션을 희석 900 μl 1 × 튜브에 FACS Lysing 솔루션을 추가 할 수 있습니다. </li><li> 혼합하는 약 15 초에 낮은 속도로 철저하게 관과 소용돌이를 캡. 실험실 필름과 관 및 봉인에 위치를 잠금으로 단단히 뚜껑을 아래로 밀어 넣습니다. </li><li> -65에서 튜브를 저장 ° C -95 ° C의 예제는 중앙 분석 실험실로 배송이나 집에 분석을위한 준비가 될 때까지. 샘플은 적어도 4 주 동안이 단계에서 안정적입니다. imme을 배송 또는 시금 경우diately,이 단계는 생략 할 수 있습니다. </li></ol> 3. 해운 참고 : 다음 지침은 구체적으로 국제 항공 및 운송 협회 (IATA) 규정에 따라 운송 카테고리 B 면제 생물학적 물질을위한 SAF-T-박 주식회사에서 절연 배송 시스템을 사용합니다. 착색이 발생한 같은 위치에 샘플을 분석하는 경우, 섹션 4로 이동합니다. <ol><li> 샘플은 즉시 염색 후 배송하거나 일단은 -65에서 얼 ° C -95 ° C 사이 스테인드 표본 상자에 호일과 장소에 완전히 각 관을 넣어. 흡착제로 leakproof 폴리 가방 내부에 스테인드 표본 상자를 놓으십시오. </li><li> 가방에 가능한 한 공기와 같은과 Tyvek 가방과 인감에 leakproof 폴리 가방과 내용을 넣으십시오. </li><li> 내부 갈색 상자 안에 표본 패키지 (보조 포장 내부의 표본) 놓습니다. </li><li> 내부 갈색 B를 배치스티로폼 상자 내부의 소는 변화를 방지하기 위해 들여 쓰기로 확보. </li><li> 드라이 아이스 (약 8kg)와 스티로폼 상자를 작성하고 가슴에 단단히 뚜껑을 놓습니다. </li><li> 안전하게 테이프 배송 상자와 배는 생물 물질로 적절한 드라이 아이스 (UN1845) 표시가있는 카테고리 B은 (UN3373), IATA PI-650 지시 사항을 따르십시오. </li><li> 수령시, 샘플이 -65에 저장됩니다 ° C -95 ° C에 그들이 분석까지. </li></ol> 4. 해동 및 유동 세포 계측법 분석 <ol><li> 흐름 cytometer에 수집 전에 어둠 속에서 실온에서 해동은 냉장고에서 스테인드 샘플을 제거합니다. 하나 이상의 샘플에 대한 데이터를 수집하면 튜브가 1 시간 이상 각각에 대해 실온에서 앉아하는 일이 없도록 해동 망설으로 모든 튜브에 대한 프로세스를 표준화. </li><li> 샘플은 같은 BD LSR 적절한 필터가 장착 된 네 레이저 흐름 cytometer를 사용하여 취득해야합니다II. 데이터 수집 4 표준 cytometer 보정 및 형광 보상 방법을 사용하십시오. </li></ol> 참고 : 컬렉션 5 중 앞으로 분산 또는 측면 분산 형 임계 값을 설정하지 마십시오. Trucount 비즈는 구슬의 일부는 분석을하는 동안 설명 할 수하지 원인이 이러한 매개 변수에 대한 낮은 임계 값 설정 아래 떨어질 수 있습니다. 임계 값을 설정하려면 악기가 필요한 경우, 가장 낮은가요 시안 채널 임계 값을 설정합니다. 패널 물들 CD45 +의 백혈구는 시안이 긍정적인가되며, Trucount 구슬도 앰 시안 채널에 형광 때문에,이 적절히 수집 할 모든 관련 데이터를 허용해야합니다. <ol start="3"><li> 흐름 cytometer에로드하기 전에 5 초에 소용돌이 샘플 튜브를. Trucount 구슬은 여러 채널에서 높은 형광. PE Cy5와 APC (두 colo에 대한 높은 더블 긍정적 인 인구를 찾아서 게이트 수집하는 동안 구슬을가장 쉽게 세포에서 구슬을 구분하는 RS)은 장비에 따라 달라질 수 있습니다. 최소한 2 만 구슬이 획득되기 전까지는 중단 게이트로 구슬 문을 선택하고 기록 데이터입니다. </li><li> 이러한 FlowJo (Treestar, 애쉬 랜드, OR)와 같은 적절한 소프트웨어를 사용하여 데이터를 분석합니다. 그림 1은 대표적인 제어 혈액 추첨 다른 백혈구 인구의 분석에 활용 게이팅 구조를 보여줍니다. </li></ol> 5. Trucount 계산 <ol><li> 각 Trucount 튜브는 형광 구슬의 동결 건조 된 펠렛이 포함되어 있습니다. 관에 액체를 추가하고 vortexing 후, 구슬 동일하게 시료 전체에 분산 될 것입니다. 펠렛의 구슬의 수는 많은 번호로 약간 다르며 튜브의 저장소 가방에서 찾을 수 있습니다. </li><li> 게이트는 Trucount 비즈와 세포 인구 각 인구에 대한 이벤트 카운트를 결정하기 위해 그림 1과 같이. 이벤트의 수를 비교 전N 관 원래 구슬의 총 개수에 구슬 문은 다음 각 인구의 절대 농도 (즉, 세포 / μl)를 결정하는 데 사용할 수있는 샘플 수집의 비율을 결정 할 수 있습니다. 세포 농도 (# 세포 / μl 전체 혈액) = [/ # 인구 이벤트 (# 비드 이벤트 / # 펠렛의 총 구슬)] / 100 μl 다음 방정식이 목적을 위해 사용할 수 있습니다. </li></ol> 6. 대표 결과 <img src="/files/ftp_upload/4302/4302fig1.jpg" alt="그림 1" fo:content-width="5.5in" fo:src="/files/ftp_upload/4302/4302fig1highres.jpg" /> 그림 1. 게이팅 제도는 건강한 자원 봉사의 대표 데이터를 보여주는 주요 백혈구 인구의 분석에 활용. A) Trucount 비즈는 (i) 출입을 금지하고 세포에서 제외됩니다. 과립 성 백혈구 (II)이 구분되어 있으며 lympohcytes와 단핵 세포는 3 popluations로 구분됩니다 : CD14부정적인 림프구 (3) 모든 CD14 음성 세포 (IV), 비 림프구 (V). B) CD14 부정적인 림프구는 CD4 + T 세포 (바이올렛), CD8 + T 세포 (VII), B 세포 (VIII), CD56 밝은 NK 세포 (IX), CD56 희미 NK 세포 (X) 및 CD56 부정적인 NK 세포를 구별 할 게이트 아르 (사이). C) 모든 CD14 음성 세포는 골수 양 (XII) 및 plasmacytoid (XIII) 수지상 세포를 구별 할 수 출입을 금지합니다. D) 비 lympocytes은 비 고전 (XIV), 중급 (XV), 그리고 클래식 (XVI) 단핵 세포를 구별 할 수 출입을 금지합니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4302/4302fig1large.jpg" target="_blank">큰 그림을 보려면 여기를 클릭하십시오</a> . 그림 1 (예를 들어, NKT 세포 나 호중구)에 표시되지 않습니다보다 구체적인 셀 집합은 우리가 제시 패널을 사용하여 구별 할 수 있으며, 게이팅 스키마는 확장 또는 특정 학습 요구를 충족하도록 수정할 수 있습니다. 표시 특정 게이팅 단계는이 방법의 특징이다. 특히 메모, 포함 게이트 및제외 게이트는 Trucount 구슬 주위에 그려 서로의 상단에 위치, 계산을위한 게이트 구슬을 한, 하나는 세포 분석 (그림 1A)에서 비즈를 제외 할 수 있습니다. 사람들이 CD45 표현과 사이드 분산은 (그림 1A) 종종 필요가 있습니다를 사용하여 앞으로 분산과 측면 산란, 게이팅 셀에게이 말초 혈 mononuclear 세포에로도, 때문에 림프구, 단핵 세포, 그리고 과립 성 백혈구는 쉽게 전체 혈액에 구별되지 않습니다. CD45과 측면 분산을 사용하여 림프구와 단핵 세포 분리 할 수 없습니다 오염 과립 성 백혈구가 (원) 높은 CD16 표현 (그림 1C와 그림 1D)에 의해 일부 플롯에서 구별됩니다. 오염 과립 성 백혈구의 수는 일반적으로 작고, 그들은 단핵 세포와 NK 세포 게이팅을 방해하지 않습니다.

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<li>Hosmalin, A., Lichtner, M., Louis, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+analysis+of+dendritic+cell+subsets%3A+the+dendritogram%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Clinical analysis of dendritic cell subsets: the dendritogram.</a> Methods Mol. Biol. 415, 273-290 (2008).</li>
</ol>

관심 없음 충돌이 선언 없습니다.

이 보고서에서 우리는 유동 세포 계측법에 의해 신선한 전체 혈액의 백혈구 인구를 열거위한 구슬 기반의 방법을 제시하고 중앙 샘플 분석 multicenter 임상 시험에서의 사용에 대한 매개 변수가 필요 다룹니다. 이 방법은 토대로 및 BD Trucount 프로토콜을 최적화 multicenter 임상 실험 환경에서의 신뢰성 사용할 수 있습니다. 착색 분석은 간단하다하고 가능한 혈액 처리 연구실 기술자가 수행 할 및 분석을위한 중앙 검정 실험실에 샘플을 동결하고 배송하기 위해 만들어 수행 할 수있는 약 45 분 정도 소요됩니다. 분석은 시간과 비용이 많이 PBMC 처리의 필요성을 제거하고 표준 phenotyping의 assays보다 훨씬 적은 양을 사용하여 전체 혈액의 약 100 μl가 필요합니다. 또한, 신선한 전체 혈액을 사용하여,이 분석은보다 정확하게 세포의 생체 상태를 묘사 및 일부 세포 유형에 관찰 cryopreservation의 해로운 효과를 제거S 1-3. 이 염색 방법은 세포 농도...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td></tr><tr><td> 절대 계산 튜브를 Trucount </td><td> BD Biosciences </td><td> 340334 </td></tr><tr><td> 10X FACS는 솔루션을 Lysing </td><td> BD Biosciences </td><td> 349202 </td></tr><tr><td> 절연 카테고리 B &amp; 면제 운송 시스템, </td><td> SAF-T-박 </td><td> STP-320 </td></tr><tr><td> CD45 단클론 항체 AmCyan </td><td> BD Biosciences </td><td> 339192 </td></tr><tr><td> 3 번 CD FITC 단클론 항체 </td><td> BD Biosciences </td><td> 349201 </td></tr><tr><td> CD8 PerCp - 사 5.5 단클론 항체 </td><td> BD Biosciences </td><td> 341051 </td></tr><tr><td> CD4 알렉사 형석 700 단클론 antibo마구 </td><td> BD Biosciences </td><td> 557922 </td></tr><tr><td> HLA-DR ECD 단클론 항체 </td><td> Beckman 보습 바로 앞에 달린 풀 베는 날 </td><td> IM3636 </td></tr><tr><td> CD14 단클론 항체 v450 </td><td> BD Biosciences </td><td> 560349 </td></tr><tr><td> CD19 PE 단클론 항체 </td><td> BD Biosciences </td><td> 555413 </td></tr><tr><td> CD16 APC-H7 단클론 항체 </td><td> BD Biosciences </td><td> 560195 </td></tr><tr><td> CD56 PE-Cy7 단클론 항체 </td><td> BD Biosciences </td><td> 335791 </td></tr><tr><td> CD11c APC 단클론 항체 </td><td> BD Biosciences </td><td> 559877 </td></tr><tr><td> CD123 PE-Cy5 단클론 항체 </td><td> BD Biosciences </td><td> 551065 </td></tr></tbody></table>

전체 혈액 phenotyping 분석을 사용하여 multicenter 임상 시험을위한 주요 말초 혈 백혈구 인구의 열거

Enumeration of Major Peripheral Blood Leukocyte Populations for Multicenter Clinical Trials Using a Whole Blood Phenotyping Assay

말초 혈 백혈구의 Cryopreservation 널리 임상 실험에 면역 반응 평가를위한 세포를 보존하기 위해 사용하고 면역 평가의 용이성 및 표준화를위한 많은 장점을 제공하지만,이 과정의 해로운 효과는 같은 과립 성 백혈구와 같은 일부 세포 집합, B 세포에 관찰 된 수 있습니다 , 1-3 및 수지상 세포. 신선한 백혈구를 시금하면 세포의 생체 상태에서의보다 정확한 사진을 제공하지만, 종종 큰 임상 시험의 맥락에서 수행 할 수 어렵습니다. 신선한 세포 assays은 시간이 오래 걸릴 경우, 자신의 응용 프로그램으로 인해 실험실 직원의 필요한 노동 시간에 비현실적 일 수 자원 봉사 약속과 시간대에 의존하고. 또한, 재판이 여러 센터에서 실시하는 경우, assays을 수행하기 위해 필요한 자원과 훈련 연구소는 임상 사이트에 충분한 가까이에 위치 할 수 없습니다. 이러한 문제를 해결하기 위해, 우리는 devel이예와 같은 assays보다 더 강력한 세포 유형 특정 정보를하였으며, 표현형과 말초 혈 내의 주요 백혈구 인구를 열거, Trucount 튜브 (산호세, CA Becton 디킨슨)와 함께 사용할 수있는 11 색 항체 염색법 패널을 oped 완전한 혈액 카운트 (CBC) 또는 몇 세포 유형에 얼룩 Trucount 관을위한 상용 가능한 패널 assays. 착색 절차는 간단합니다, 신선한 전체 혈액의 약 100 μl가 필요하고 가능한 표준 혈액 처리 연구소가 수행 할 수있게 약 45 분 정도 소요됩니다. 그것은 BD Trucount 튜브 기술 데이터 시트 (에서 적응 <a href="http://www.bdbiosciences.com/external_files/is/doc/tds/Package_Inserts_CE/live/web_enabled/23-3483-06_PI_Trucount tubes_CE_EN.pdf" target="_blank">버전 2,010분의 8</a> ). 착색 항체 칵테일은 중앙 검정 실험실에서 대량으로 사전에 준비 사이트 처리 실험실로 배송 될 수 있습니다. 스테인드 튜브가 해결 될 수 있습니다및 다색의 유동 세포 계측법 분석을위한 중앙 분석 실험실에 배송을 위해 냉동. 이 착색 패널에서 생성 된 데이터는 개입과 관련하여 시간이 지남에 따라 백혈구 농도의 변화를 추적 할 쉽게 더 관심의 특정 세포 유형의 활성화 상태를 평가하기 위해 개발 될 수 사용할 수 있습니다. 이 보고서에서 우리는 신선한 전체 혈액 및 multicenter 임상 실험을 지원하는 중앙 검정 실험실에서 이러한 스테인드 샘플을 분석하는 단계에 착색을 수행 할 혈액 처리 연구실 기술자가 사용하는 절차를 보여줍니다. 비디오 정보는 HIV 백신 평가판 네트워크 (HVTN)에 임상 시험 혈액 추첨의 컨텍스트에서 수행되기 때문에 절차.

이 보고서에서, 우리는 주요 타고난 및 적응 백혈구 인구를 열거하는 신선한 전체 혈액에서 수행 phenotyping 분석의 착색 및 분석 단계를 보여줍니다. 우리는 multicenter 임상 실험의 맥락에서이 절차를 수행하기위한 고려 사항을 강조.

전체 혈액 Phenotyping 분석을 사용하여 Multicenter 임상 시험을위한 주요 말초 혈 백혈구 인구의 열거

말초혈액 백혈구의 냉동 보존은 임상 시험에서 면역 반응 평가를 위해 세포를 보존하는 데 널리 사용되며, 많은...

이 영상은 다기관 임상 시험에서 중앙 실험실 분석을 위해 신선한 전혈을 염색하는 절차를 설명합니다. 이 절차는 Fred Hutchinson Cancer Research Center의 HIV 백신 시험 네트워크(HIV Vaccine Trials Network)에서 개발되었습니다. 이 과정에서는 Becton Dickenson biosciences 사의 tru count 튜브를 사용하며, 각 튜브에는 샘플 준비 과정에서 용해되어 정해진 수의 형광 비드를 방출하는 동결 건조 펠릿이 포함되어 있습니다. 서로 다른 세포군에 특이적인 표면 마커를 염색하기 위해 형광 항체가 사용됩니다.유세포 분석 중에 이러한 서로 다른 세포 집단의 수를 형광 비드 수와 비교할 수 있으며, 중재 조치와 관련하여 전혈 내 다양한 백혈구 집단의 절대 농도를 시간에 따라 추적할 수 있습니다. 안녕하세요, 저는 HIV 백신 임상시험 네트워크(HIV Vaccine Trials Network)의 스태프 사이언티스트 에리카 앤더슨 니산(Erica Anderson Nissan)입니다. 지금부터 보실 절차는 저희가 다기관 임상시험에서 사용하기 위해 개발한 방법입니다.본 실험에서 혈액 처리 실험실 기술자는 신선한 전혈 시료를 받아 형광 표지 항체로 염색한 후, 유세포 분석기(flow cytometer)로 분석이 가능한 중앙 실험실로 시료를 운송합니다. 신선한 전혈은 비용 및 실행 가능성 문제로 인해 임상 시험 환경에서는 분석되지 않는 경우가 많으나, 본 연구팀은 말초혈액 내 주요 백혈구군을 식별할 수 있는 단일 항체 염색 패널을 개발하였습니다. 이러한 세포군에 대한 염색은 45분 이내에 완료되므로 HVTN의 임상 시험에 적용하는 것이 가능합니다. 현재 본 연구팀은 이 패널을 사용하여 HIV 후보 백신 접종 후 발생하는 초기 반응을 파악하고 있으며, 해당 PI 패널은 개별 연구자의 관심 세포형에 맞춰 추가로 수정하여 사용할 수 있습니다. 시청해 주셔서 감사드리며, 본 내용이 향후 연구에 도움이 되기를 바랍니다.표 1은 말초 혈액 내의 주요 백혈구 집단을 표현형 분석 및 수치화하기 위해 개발된 11색 항체 염색 패널을 보여줍니다. 각 사이트 간의 일관성을 보장하고, 임상 시험 샘플을 염색하기 전에 대조군 혈액 채취분으로 칵테일을 테스트할 수 있도록 항체 칵테일은 중앙 분석실에서 제작하여 처리 실험실로 발송합니다. 각 형광 결합 항체는 개별적으로 적정하며, 이후 적

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Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

자동 microfluidic 장치는 세포 손실없이 고품질의 샘플의 절연을 보장 적혈구 용해를 통해 말초 혈액에서 nucleated 세포 농축을 순환하기 위해 개발되었습니다.

Nucleated 셀을 순환의 강화를위한 자동 Microfluidic 혈액 용해 프로토콜

Source: Xu, C., et al. An Efficient and Simple Method to Establish NK and T Cell Lines from Patients with Chronic Active Epstein-Barr Virus Infection. J. Vis. Exp. (2018).This video demonstrates the phenotyping of EBV-infected T and NK cell lines using flow cytometry, highlighting the preparation, antibody staining, and analysis steps to identify lineage-specific surface markers. It shows how marker profiles confirm distinct T-cell and NK-cell populations.

Phenotyping EBV-Infected Cell Lines Using Flow Cytometry

이 동영상은 인간 말초 혈액 단핵 세포(PBMC)에서 CD4+ 및 CD8+ T 세포, γδ T 세포, B 세포, 자연 살해(NK) 세포 및 단핵구를 식별하기 위해 두 개의 형광 색소를 사용하는 유세포 분석 기반 기술을 보여줍니다. 표면 마커에 대해 형광 색소 접합 항체로 세포를 배양하면 최적의 유세포 분석 게이팅 전략을 사용하여 세포 subset을 식별할 수 있습니다.

말초 혈액 단핵 세포에서 면역 세포 subset을 식별하기 위한 유세포 분석 분석

전혈 면역표현형은 인간의 면역 체계를 모니터링하는 데 필수적입니다. 그러나 필요한 시약의 수와 사전 혼합된 칵테일에서 특정 형광 색소의 불안정성으로 인해 매일 시약을 준비해야 합니다. 여기에서는 염색 항체 칵테일의 반자동 제제가 시약 분주의 변동성을 최소화하여 신뢰할 수 있는 면역 표현형 분석을 확립하는 데 도움이 된다는 것을 보여줍니다.

사람 말초 혈액의 Immunophenotypic 분석에 대한 항체 칵테일을 준비하는 반 자동화 된 접근

또는 측정 최소 잔여 질병 (MRD)의 위험 평가 정제 하 고 급성 골수성 백혈병 (AML)에서 재발 예측에 대 한 중요 한 예 후 바이오 마커 이다. 이러한 포괄적인 지침과 일관 되 고 정확한 식별 및 MRD의 검출을 위한 모범 사례 권장 사항을 효과적인 AML 치료 결정에 도움이 수 있습니다.

샘플을 측정 하는 측정 가능한 잔여 질환과 급성 골수성 백혈병에 Leukemic 줄기 세포에 대 한 프로세스 골 포괄적인 프로토콜

여기 우리 면역 phenotypic와 기능 (세포내 cytokine 유도)를 평가 하는 단일 셀 proteomic 접근 방식을 설명 주변 전체 혈액 샘플, 대량 cytometry 통해 분석으로 변경.

Immunophenotype 및 Cytokine 생산 대량 Cytometry 통해 주변 전 혈의 단일 세포 분석

여기 선물이 monocyte 하위 집합 전체 혈액 cytometry에 의해 특성화에 대 한 프로토콜. 이 하위 게이트 그들의 표현의 표면 마커를 평가 하는 방법을 설명 하 고 (염증 성) M1 및 M2 마커 (염증)의 식 평가의 예를 포함 됩니다.

전체 혈액에 의해 인간 Monocyte 하위 집합의 Flow Cytometry 분석

이 프로토콜은 번역 바이오마커 분석에 사용될 수 있는 임상 시험 현장에서 고품질 PBMC 및 플라즈마 바이오샘플의 임상 구현 가능한 제제를 상세히 설명합니다.

바이오마커 분석을 위한 임상 시험 현장에서 단하나 혈액 무승부에서 말초 혈액 단핵 세포 펠릿 및 플라즈마의 준비

POCT 카드 기반 백혈구 분석기를 사용하여 말초 혈액 백혈구를 측정하는 프로토콜이 여기에 제시되어 있습니다. 동일한 혈액 샘플을 두 개의 자동화된 혈액학 분석기에 의해 테스트하여 결과의 일관성과 정확성을 평가했습니다. 결과는 평가된 분석기가 기준 시스템과 양호한 상관관계를 갖는다는 것을 보여주었다.

말초 혈액 백혈구 측정을 위한 POS(Point-of-Care) 테스트 분석기 평가

효과적으로 정화가 자주 필요한 면역 세포 집단의 기능을 연구합니다. 보완 고갈은 고순도와 면역 세포 인구의 격리를위한 신속하고 저렴한 방법입니다.

보완 고갈에 의해 특정 세포 집단의 고갈

배우세요 전체 혈액 표현형 분석을 통한 주요 말초 혈 백혈구 인구 열거 방법입니다. 다중 중심 임상 시험에서 유동 세포측정법을 활용하여 면역 반응을 추적하고 정확한 세포 농도 측정이 가능합니다.

전체 혈액 Phenotyping 분석을 사용하여 Multicenter 임상 시험을위한 주요 말초 혈 백혈구 인구의 열거

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