Name: misurazione In Vitro Attività ATPasi per enzimatica Caratterizzazione (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-23T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 38 s
Description: Impara a misurare l'attività ATPasi in vitro per la caratterizzazione enzimatica di proteine purificate. Questo metodo semplice e sensibile permette di valutare attivatori, inibitori e domini funzionali.

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Gli autori desiderano riconoscere il finanziamento da una sovvenzione del National Institutes of Health RO1AI049294 (a M. S.).

1. Eseguire ATP idrolisi di reazione con proteina purificata <ol><li> Preparare scorte di tutti i reagenti necessari per l&#39;incubazione con proteina purificata. <ol><li> Preparare tampone 5x HEPES / NaCl / glicerolo (HNG) contenente 100 mM HEPES pH 8,5, 65 mM NaCl, e il 5% glicerolo (o altro tampone a seconda dei casi). </li><li> Preparare 100 mM MgCl 2 (o altro metallo, se ATPasi è in metallo-dipendente) in acqua. </li><li> Preparare fresco 100 mM ATP a 200 mm Tris Base (non regolare il pH ulteriormente) con alta ATP purezza. Aliquota e memorizzare il titolo ATP a -20 ° C per non più di un paio di settimane, come l&#39;ATP si rompe nel corso del tempo, e astenersi dal congelamento e scongelamento del titolo ATP. </li><li> Premix MgCl 2 e ATP in un rapporto 1: 1 appena prima di impostare la reazione di idrolisi dell&#39;ATP. </li></ol></li><li> Preparare ed etichettare provette da 1,5 ml per la raccolta di campioni a intervalli regolari durante la reazione. Preparare le provette per raccogliere campioni al tempo 0 e al tempo 15, 30,45, e 60 min. NOTA: In alternativa, raccogliere campioni solo in fase 0 e il punto finale. <ol><li> Aggiungere 245 microlitri di buffer 1x HNG ad ogni provetta in modo da diluire campioni raccolti dalle reazioni di idrolisi dell&#39;ATP 1:50. </li></ol></li><li> Preparare un bagno di ghiaccio secco ed etanolo per il congelamento rapido campioni per arrestare la reazione. In un secchio di ghiaccio gomma o contenitore altra cassetta di sicurezza (non di plastica), aggiungere alcuni pezzi di ghiaccio secco e versare attentamente abbastanza 70-100% di etanolo per coprire il ghiaccio secco. </li><li> Diluire proteina purificata in un tampone HNG 1x, a seconda dei casi (tipicamente 5-10 micron), e tenere in ghiaccio. </li><li> Impostare le reazioni di idrolisi dell&#39;ATP. <ol><li> In separati 0,5 ml provette per ogni campione, aggiungere le seguenti reagenti (in ordine): H 2 O (fino ad un volume finale di 30 microlitri), 6 microlitri 5x HNG o altro buffer, 3 microlitri 100 mM MgCl 2 -ATP miscela, e 0,25-5 proteine ​​micron. </li><li> Includere un buffer di sola condizione di controllo negativo in cui è stata aggiunta alcuna proteina.</li></ol></li><li> Rimuovere 5 ml dalla reazione al tempo 0, diluire 1:50 nella provetta da 1,5 ml preparato contenente 245 microlitri di buffer HNG, e congelare immediatamente il campione in condizioni di asciutto bagno di ghiaccio / etanolo. </li><li> Incubare le reazioni a 37 ° C per consentire idrolisi dell&#39;ATP a verificarsi per 1 ora. Ad ogni intervallo (15, 30, 45 e 60 min), rimuovere 5 aliquote microlitri dalla reazione e aggiungere al provettoni etichettati contenenti tampone HNG come al punto 1.6. </li><li> Al termine della reazione di idrolisi dell&#39;ATP, spostare campioni diluiti in un congelatore C -80 ° per la conservazione. Per garantire tutti i campioni sono completamente congelati, attendere almeno 10 minuti prima di procedere. </li></ol> 2. I campioni Incubare contenenti libero Pi con Detection Reagent <ol><li> Scongelare i campioni diluiti contenenti aliquote reazione di idrolisi dell&#39;ATP in ogni momento (ottenuti da misure 1.6 e 1.7) a temperatura ambiente. </li><li> Impostare una piastra a 96 pozzetti contenenti i campioni e gli standard di fosfati. <ol><li> In un ml tu 0,5essere, diluire lo standard di fosfato (fornito con il reagente di rilevamento Pi) da 800 micron a 40 micron con l&#39;aggiunta di 5,5 ml di buffer HNG 800 micron standard per 104,5 ml. Mescolare bene e aggiungere 100 ml di questa 40 micron di serie Pi a ben A1 di una piastra a 96 pozzetti. </li><li> Aggiungere tampone HNG 50 microlitri di pozzi B1-H1 per 1: 1 diluizioni seriali dello standard Pi. </li><li> Rimuovere 50 ml di 40 mM Pi dal pozzetto A1 e aggiungere al tampone 50 microlitri nel pozzetto B1, mescolare, e rimuovere 50 ml da ben B1 e aggiungere al ben C1, diluizioni continui attraverso ben G1. Scartare 50 ml da ben G1 dopo la miscelazione per assicurare ogni pozzetto ha lo stesso volume. Ebbene H1 dovrebbe contenere solo buffer per creare uno standard Pi 40 a 0 pM. NOTA: Se un fattore aggiuntivo (come un inibitore) è stato aggiunto ai campioni, creare una curva standard contenente quel fattore di controllo per i cambiamenti nel rilascio fosfato o assorbanza in queste condizioni. </li><li> Aggiungere 50 ml di ogni SAMPLe in duplice copia alla piastra. Aggiungere campioni dallo stesso punto temporale in colonne verticali (campione 1 ora 0 = A2, A3; campione 2 tempo 0 = B2, B3) e differenti tempi orizzontalmente. Questo permette fino a 8 campioni e 5 punti temporali per piastra. </li></ol></li><li> Utilizzare una pipetta sterile per rimuovere abbastanza verde malachite molibdato reagente di rilevamento / Pi aggiungere 100 ml a ciascuno dei pozzetti contenenti campioni e gli standard (reagente necessario (ml) = 0,1 x numero di campioni e gli standard) e aggiungere ad un piatto per una facile pipettaggio usando una pipetta multicanale. Non versare il reagente di rilevamento direttamente nel piatto, come la contaminazione Pi è probabile che si verifichi. </li><li> Usando una pipetta multicanale, aggiungere 100 ml di reagente di rilevamento Pi in ogni pozzetto e mescolare accuratamente pipettando su e giù un consistente numero di volte senza bolle introduzione, preferibilmente nell&#39;ordine da ultimi punti temporali ai primi punti temporali. </li><li> Incubare la piastra per 25 min a temperatura ambiente, o secondo la maindicazioni nufacturer. </li></ol> 3. Risultati quantificare utilizzando un lettore di micropiastre <ol><li> Leggere l&#39;assorbanza dei campioni a 650 nm con un lettore di micropiastre assorbanza. </li><li> Effettuare una curva standard Pi. Utilizzando un software grafici, grafico i valori di assorbanza per i campioni standard Pi funzione della concentrazione al fine di trovare una equazione utilizzata per risolvere per la quantità di fosfato in ciascun campione. </li><li> Calcolare l&#39;ATPasi per ogni campione calibrando con lo standard di fosfato. Fosfato rilasciato = (OD 650 - Y intercetta) / pendio. <ol><li> Nella media del totale Pi da duplicati di ogni campione. Sottrarre lettura di assorbanza del controllo del buffer solo da questo numero. Moltiplicate questo per il fattore di diluizione (50 nel nostro esempio). </li><li> Determinare il Pi nmol rilasciato per proteine ​​micromol. Rappresentazione grafica questi valori per ogni punto temporale in un saggio cinetica dovrebbe produrre attacchi lineari di almeno R = 0,99 (figura 1); Se not, il dosaggio può essere regolato con più o meno proteina o un tempo di incubazione più lungo o più breve. </li></ol></li><li> Rappresentano i risultati come nmol Pi / mol proteina / min (figure 2, 3), o come nmol Pi / mg proteine ​​/ min se desiderato. </li></ol>

<ol><li>Hanson, P. I., Whiteheart, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AAA%2B+proteins%3A+have+engine%2C+will+work%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">AAA+ proteins: have engine, will work.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 6 (7), 519-529 (2005).</li>
<li>Baker, T. A., Sauer, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ClpXP%2C+an+ATP-powered+unfolding+and+protein-degradation+machine%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimica+et+Biophysica+Acta%22%5BJournal%5D)">ClpXP, an ATP-powered unfolding and protein-degradation machine.</a> Biochimica et Biophysica Acta. 1823 (1), 15-28 (2012).</li>
<li>Maxson, M. E., Grinstein, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+vacuolar-type+H%2B-ATPase+at+a+glance+-+more+than+a+proton+pump%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">The vacuolar-type H+-ATPase at a glance - more than a proton pump.</a> J Cell Sci. 127 (23), 4987-4993 (2014).</li>
<li>Planet, P. J., Kachlany, S. C., DeSalle, R., Figurski, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phylogeny+of+genes+for+secretion+NTPases%3A+Identification+of+the+widespread+tadA+subfamily+and+development+of+a+diagnostic+key+for+gene+classification%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Phylogeny of genes for secretion NTPases: Identification of the widespread tadA subfamily and development of a diagnostic key for gene classification.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 98 (5), 2503-2508 (2001).</li>
<li>Robien, M. A., Krumm, B. E., Sandkvist, M., Hol, W. G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crystal+Structure+of+the+Extracellular+Protein+Secretion+NTPase+EpsE+of+Vibrio+cholerae%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Crystal Structure of the Extracellular Protein Secretion NTPase EpsE of Vibrio cholerae.</a> J Mol Biol. 333 (3), 657-674 (2003).</li>
<li>Camberg, J. L., Sandkvist, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+analysis+of+the+Vibrio+cholerae+type+II+secretion+ATPase+EpsE%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Molecular analysis of the Vibrio cholerae type II secretion ATPase EpsE.</a> J Bacteriol. 187 (1), 249-256 (2005).</li>
<li>Sandkvist, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Type+II+secretion+and+pathogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Infect+Immun%22%5BJournal%5D)">Type II secretion and pathogenesis.</a> Infect Immun. 69 (6), 3523-3535 (2001).</li>
<li>Brune, M., Hunter, J. L., Corrie, J. E. T., Webb, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct%2C+Real-time+measurement+of+rapid+inorganic+phosphate+release+using+a+novel+fluorescent+probe+and+its+application+to+actomyosin+subfragment+1+ATPase%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Direct, Real-time measurement of rapid inorganic phosphate release using a novel fluorescent probe and its application to actomyosin subfragment 1 ATPase.</a> Biochemistry. 33 (27), 8262-8271 (1994).</li>
<li>Carter, S. G., Karl, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inorganic+phosphate+assay+with+malachite+green%3A+An+improvement+and+evaluation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biochem+Biophys+Methods%22%5BJournal%5D)">Inorganic phosphate assay with malachite green: An improvement and evaluation.</a> J Biochem Biophys Methods. 7 (1), 7-13 (1982).</li>
<li>Henkel, R. D., VandeBerg, J. L., Walsh, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+microassay+for+ATPase%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Biochem%22%5BJournal%5D)">A microassay for ATPase.</a> Anal Biochem. 169 (2), 312-318 (1988).</li>
<li>Harder, K. W., Owen, P., Wong, L. K. H., Aebersold, R., Clark-Lewis, I., Jirik, F. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+and+kinetic+analysis+of+the+intracellular+domain+of+human+protein+tyrosine+phosphatase+%CE%B2+%28HPTP+%CE%B2%29+using+synthetic+phosphopeptides%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+J%22%5BJournal%5D)">Characterization and kinetic analysis of the intracellular domain of human protein tyrosine phosphatase β (HPTP β) using synthetic phosphopeptides.</a> Biochem J. 298 (2), 395-401 (1994).</li>
<li>Camberg, J. L., Johnson, T. L., Patrick, M., Abendroth, J., Hol, W. G., Sandkvist, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synergistic+stimulation+of+EpsE+ATP+hydrolysis+by+EpsL+and+acidic+phospholipids%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">Synergistic stimulation of EpsE ATP hydrolysis by EpsL and acidic phospholipids.</a> EMBO J. 26 (1), 19-27 (2006).</li>
<li>McLaughlin, S. H., Smith, H. W., Jackson, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimulation+of+the+weak+ATPase+activity+of+human+Hsp90+by+a+client+protein%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Stimulation of the weak ATPase activity of human Hsp90 by a client protein.</a> J Mol Biol. 315 (4), 787-798 (2002).</li>
<li>Shiue, S., Kao, K., Leu, W., Chen, L., Chan, N., Hu, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((XpsE+oligomerization+triggered+by+ATP+binding%2C+not+hydrolysis%2C+leads+to+its+association+with+XpsL%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">XpsE oligomerization triggered by ATP binding, not hydrolysis, leads to its association with XpsL.</a> EMBO J. 25 (7), 1426-1435 (2006).</li>
<li>Ghosh, A., Hartung, S., van der Does, C., Tainer, J. A., Albers, S. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Archaeal+flagellar+ATPase+motor+shows+ATP-dependent+hexameric+assembly+and+activity+stimulation+by+specific+lipid+binding%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+J%22%5BJournal%5D)">Archaeal flagellar ATPase motor shows ATP-dependent hexameric assembly and activity stimulation by specific lipid binding.</a> Biochem J. 437 (1), 43-52 (2011).</li>
<li>Savvides, S. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VirB11+ATPases+are+dynamic+hexameric+assemblies%3A+new+insights+into+bacterial+type+IV+secretion%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">VirB11 ATPases are dynamic hexameric assemblies: new insights into bacterial type IV secretion.</a> EMBO J. 22 (9), 1969-1980 (2003).</li>
<li>Sanghera, J., Li, R., Yan, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+the+luminescent+ADP-Glo+assay+to+a+standard+radiometric+assay+for+measurement+of+protein+kinase+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Assay+Drug+Dev+Techn%22%5BJournal%5D)">Comparison of the luminescent ADP-Glo assay to a standard radiometric assay for measurement of protein kinase activity.</a> Assay Drug Dev Techn. 7 (6), 615-622 (2009).</li>
<li>Sherman, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decoupling+catalytic+activity+from+biological+function+of+the+ATPase+that+powers+lipopolysaccharide+transport%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Decoupling catalytic activity from biological function of the ATPase that powers lipopolysaccharide transport.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (13), 4982-4987 (2014).</li>
<li>Zhang, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Altered+cofactor+regulation+with+disease-associated+p97%2FVCP+mutations%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Altered cofactor regulation with disease-associated p97/VCP mutations.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 112 (14), E1705-E1714 (2015).</li>
<li>Rowlands, M. G., Newbatt, Y. M., Prodromou, C., Pearl, L. H., Workman, P., Aherne, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+screening+assay+for+inhibitors+of+heat-shock+protein+90+ATPase+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Biochem%22%5BJournal%5D)">High-throughput screening assay for inhibitors of heat-shock protein 90 ATPase activity.</a> Anal Biochem. 327 (2), 176-183 (2004).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Questo è un protocollo generale per la misurazione dell&#39;attività di ATPasi vitro di proteine ​​purificate per la caratterizzazione biochimica. Questo metodo può essere facilmente ottimizzato; per esempio, regolando la quantità di proteine, tampone e composizioni di sale, la temperatura, e variando la lunghezza del test e intervalli (compreso l&#39;aumento del numero totale di intervalli) può migliorare l&#39;attività di quantificazione. Disponibili in commercio malachite reagenti verde-based sono m...

Le ATPasi sono enzimi integrali in molti processi in tutti i regni della vita. Le ATPasi agiscono come motori molecolari che utilizzano l'energia dell'idrolisi dell'ATP per alimentare reazioni diverse come il traffico, il dispiegamento e l'assemblaggio delle proteine; replicazione e trascrizione; metabolismo cellulare; movimento muscolare; motilità cellulare; e pompaggio ionico1-3. Alcune ATPasi sono proteine transmembrana coinvolte nel trasporto di soluti attraverso le membrane, altre sono citoplasmatiche e possono essere associate a una membrana biologica come la membrana plasmatica o quelle degli organelli.
AAA+ Le ATPasi (ATPasi associate a varie attività cellulari) costituiscono un grande gruppo di ATPasi che condividono una certa sequenza e conservazione strutturale. Queste proteine contengono motivi di legame nucleotidico conservati come le scatole Walker-A e -B e formano oligomeri (generalmente esameri) nel loro stato attivo1. Grandi cambiamenti conformazionali in queste proteine al legame nucleotidico sono stati caratterizzati tra diversi membri della famiglia AAA+. L'EpsE è una ATPasi AAA+ e fa parte della sottofamiglia delle NTPasi4-6 di secrezione batterica di tipo II/IV. L'EpsE potenzia la secrezione di tipo II (T2S) nel Vibrio cholerae, l'agente eziologico del colera. Il sistema T2S è responsabile della secrezione di un'ampia varietà di proteine, come la tossina del colera che causa diarrea acquosa quando V. cholerae colonizza l'intestino tenueumano 7. 
Le tecniche per quantificare l'attività dell'ATPasi in vitro sono varie, ma comunemente misurano il rilascio di fosfato utilizzando substrati colorimetrici, fluorescenti o radioattivi8-11. Descriviamo un metodo di base per determinare l'attività dell'ATPasi in vitro di proteine purificate utilizzando un saggio colorimetrico basato su un substrato contenente verde di malachite disponibile in commercio che misura il fosfato inorganico (Pi) liberato. A pH basso, il molibdato verde di malachite forma un complesso con Pi greco e il livello di formazione del complesso può essere misurato a 650 nm. Questo test semplice e sensibile può essere utilizzato per caratterizzare funzionalmente nuove ATPasi e per valutare il ruolo di potenziali attivatori o inibitori, per determinare l'importanza di domini e/o residui specifici, o per valutare l'effetto di particolari trattamenti sull'attività enzimatica.

<table><tbody><tr><td>tampone HEPES</td><td>Fisher</td><td>BP310-500</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro di sodio</td><td>Fisher</td><td>BP358-212</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro di magnesio</td><td>Fisher</td><td>BP214-500</td><td></td></tr><tr><td>Adenosina trifosfato (ATP)</td><td>Fisher</td><td>BP41325</td><td></td></tr><tr><td>piastre a 96 pozzetti (trasparenti, fondo piatto)</td><td>VWR</td><td>82050-760</td><td></td></tr><tr><td>BIOMOL Green</td><td>Enzo Life Sciences</td><td>BML-AK111</td><td>Reagente preferito per la rilevazione del fosfato. Attenzione: irritante.</td></tr><tr><td>Lettore di</td><td></td><td></td> micropiastre <td>BioTek Synergy o</td></tr><tr><td>software</td><td></td><td></td> <td>Prism 5</td> GraphPad</tr> comparabile</tbody></table>

misurazione<em&gt; in vitro</em&gt; attività atpasi per enzimatica caratterizzazione

Measuring In Vitro ATPase Activity for Enzymatic Characterization

Adenosina trifosfato enzimi-idrolisi, o ATPasi, svolgono un ruolo critico in una gamma diversificata di funzioni cellulari. Queste proteine ​​dinamici in grado di generare energia per il lavoro meccanico, come il traffico di proteine ​​e il degrado, trasporto dei soluti, e movimenti cellulari. Il protocollo qui descritto è un metodo semplice per misurare l&#39;attività in vitro di ATPasi purificata per la caratterizzazione funzionale. Proteine ​​idrolizzano ATP in una reazione che provoca il rilascio inorganica fosfato e la quantità di fosfato liberato viene poi quantizzati utilizzando un saggio colorimetrico. Questo protocollo altamente adattabile può essere regolata per misurare l&#39;attività ATPasi in saggi cinetici o endpoint. Un protocollo rappresentativo è qui fornito in base all&#39;attività e requisiti di EPSE, AAA + ATPasi coinvolta nella secrezione di tipo II nel batterio Vibrio cholerae. La quantità di proteina purificata necessaria per misurare l&#39;attività, la lunghezza del test e la sincronizzazione e il numero di saintervalli mpling, buffer e la composizione del sale, temperatura, co-fattori, stimolanti (se presente), ecc possono variare da quelli qui descritti, e quindi un po &#39;di ottimizzazione può essere necessario. Questo protocollo fornisce un quadro di base per ATPasi caratterizzano e può essere eseguita rapidamente e facilmente regolato come necessario.

L&#39;attività in vitro del T2S ATPasi Epse può essere stimolato da copurification del Epse con il dominio citoplasmatico di EPSL (Epse-cytoEpsL) e l&#39;aggiunta di acido cardiolipina fosfolipide 12. È anche possibile determinare il ruolo di particolari residui Epse a idrolisi confrontando l&#39;attività di tipo selvatico (WT) per forme varianti della proteina utilizzando questo saggio. Qui, l&#39;effetto di sostituire due residui di lisina nel dominio zinc-binding E...

Descriviamo un protocollo di base per quantificare l'attività dell'ATPasi in vitro. Questo protocollo può essere ottimizzato in base al livello di attività e ai requisiti di una data ATPasi purificata.

misurazione<em&gt; In Vitro</em&gt; Attività ATPasi per enzimatica Caratterizzazione

Adenosine triphosphate-hydrolyzing enzymes, or ATPases, play a critical role in a diverse array of cellular functions. These dynamic proteins can generate ...

L'obiettivo generale di questa procedura è quantificare l'attività ATPasica in vitro di proteine purificate ai fini della caratterizzazione funzionale. Questo metodo può essere utilizzato per caratterizzare nuove ATPasi putative, valutare potenziali attivatori o inibitori efficaci e determinare il contributo di domini o residui specifici all'attività ATPasica. Il principale vantaggio di questa tecnica è che si tratta di un metodo semplice e sensibile per misurare l'attività ATPasica in vitro, facilmente ottimizzabile.Preparare le soluzioni di tutti i reagenti necessari per l'incubazione con la proteina purificata come indicato nel protocollo testuale. Mescolare immediatamente prima dell’allestimento della reazione di idrolisi dell’ATP una soluzione contenente cloruro di magnesio 100 millimolare e ATP 100 millimolare in rapporto uno a uno. Preparare ed etichettare provette da 1,5 millilitro per raccogliere i campioni a intervalli regolari durante la reazione.Preparare provette per raccogliere i campioni ai tempi zero e ai tempi di 15, 30, 45 e 60 minuti. Aggiungere 245 microlitri di tampone HNG 1x in ogni provetta per diluire i campioni raccolti dalle reazioni di idrolisi dell'ATP in un rapporto di diluizione di 1 a 50. Successivamente, preparare un bagno di ghiaccio secco ed etanolo per congelare rapidamente i campioni e arrestare la reazione.In un secchiello per ghiaccio in gomma o in un altro contenitore sicuro, aggiungere alcuni pezzi di ghiaccio secco e versare con attenzione una quantità sufficiente di etanolo al 70%-100% per coprire il ghiaccio secco. Diluire la proteina purificata nel buffer 1X HNG e mantenerla sul ghiaccio. Impostare le reazioni di idrolisi dell'ATP nei tubi da 0,5 millilitro preparati aggiungendo un volume precalcolato di acqua per raggiungere un volume finale di reazione di 30 microlitri.Aggiungere sei microlitri di tampone 5X HNG o un altro tampone, tre microlitri di una miscela di cloruro di magnesio 100 millimolare e ATP e da 0,25 a cinque micromoli di proteina. Incubare una condizione controllo negativo con solo tampone, alla quale non viene aggiunta alcuna proteina. Successivamente, prelevare cinque microlitri dalla reazione ai tempi zero.Quindi diluire l’aliquota uno a 50 nel tubo da 1,5 millilitri preparato contenente 245 microlitri di tampone HNG. Congelare immediatamente il campione nel bagno di ghiaccio secco ed etanolo. Incubare le reazioni a 37 gradi Celsius per consentire l’idrolisi dell’ATP per un’ora.In ogni intervallo, prelevare aliquote di cinque microlitri dalla reazione e aggiungerle a provette campione etichettate contenenti tampone HNG, come in precedenza. Al termine della reazione di idrolisi dell'ATP, trasferire i campioni diluiti in un congelatore a 80 gradi Celsius per la conservazione. Per assicurare che tutti i campioni siano completamente congelati, attendere almeno 10 minuti prima di procedere.Scongelare i campioni diluiti contenenti aliquote della reazione di idrolisi dell'ATP provenienti da ciascun punto temporale a temperatura ambiente. Successivamente, preparare una piastra a 96 pozzetti contenente i campioni e gli standard di fosfato. In un tubo da 0,5 millilitri, diluire lo standard di fosfato da 800 micromolare a 40 micromolare aggiungendo 5,5 microlitri dello standard a 104,5 microlitri di buffer HNG.Mescolare bene e aggiungere 100 microlitri di questo standard di fosfato 40 micromolare nel pozzetto A1 della piastra a 96 pozzetti. Aggiungere 50 microlitri di tampone HNG nei pozzetti da B1 a H1 per effettuare diluizioni seriali uno a uno dello standard di fosfato. Prelevare 50 microlitri di fosfato 40 micromolare dal pozzetto A1, aggiungerli ai 50 microlitri di tampone per saggio presenti nel pozzetto B1 e mescolare.Quindi rimuovere 50 microlitri dal pozzetto B1 e aggiungerli al pozzetto C1, continuando le diluizioni fino al pozzetto G1. Dopo aver mescolato, scartare 50 microlitri dal pozzetto G1 per assicurare che ogni pozzetto contenga lo stesso volume. Il pozzetto H1 deve contenere solo tampone per creare uno standard di fosfato compreso tra 40 e zero micromoli. Successivamente, aggiungere 50 microlitri di ogni campione in duplicato sulla piastra.Aggiungere i campioni dello stesso punto temporale in colonne verticali e quelli di punti temporali diversi in righe orizzontali. Questo consente di analizzare fino a otto campioni e cinque punti temporali per piastra. Utilizzare una pipetta sterile per prelevare una quantità sufficiente del reagente di rilevamento malachite green molybdate fosfato da aggiungere 100 microlitri in ciascuna delle pozzette contenenti campioni e standard.Aggiungere il reagente di rilevamento in una piastra per facilitare il prelievo con una pipetta multicanale. Non versare il reagente di rilevamento direttamente nella piastra poiché potrebbe verificarsi contaminazione da fosfato. Utilizzando una pipetta multicanale, aggiungere 100 microlitri del reagente di rilevamento del fosfato in ogni pozzetto e mescolare accuratamente aspirando e dispensando un numero costante di volte senza introdurre bolle, procedendo in ordine dal punto temporale più recente al più remoto.Lasciare la piastra a temperatura ambiente per 25 minuti o secondo le indicazioni del produttore. Per quantificare i risultati, leggere l'assorbanza dei campioni a 650 nanometri utilizzando un lettore di micropiastre a assorbanza. Vengono mostrati risultati rappresentativi di ATPasi cinetiche e a punto finale, nei quali l'attività delle forme wild type e mutante dell'ATPasi della secrezione di tipo due/EPSE viene determinata in presenza e in assenza del cardiolipina stimolante.Qui sono mostrati i risultati di un'analisi cinetica dell'ATPasi stimolata dalla cardiolipina, che dimostrano il rilascio lineare di fosfato nel tempo per il tipo selvatico di EPSE e per un mutante doppio della lisina, con l'albumina sierica bovina utilizzata come controllo negativo. Questi dati possono essere rappresentati come quantità di fosfato rilasciato al minuto diviso per la concentrazione proteica, al fine di quantificare e confrontare l'attività ATPasica di ciascuna proteina. I dati indicano che due residui di lisina, K417 e K419, contribuiscono all'attività ATPasica stimolata dalla cardiolipina di EPSE.Il confronto dell'attività ATPasica delle stesse proteine in assenza di stimolazione da cardiolipina mostra che questi due residui di lisina non contribuiscono all'attività basale ridotta di EPSE, ma piuttosto alla capacità della proteina di essere stimolata dalla cardiolipina. Dopo aver visto questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come quantificare rapidamente e con precisione l'attività ATPasica di proteine purificate. Durante l'esecuzione di questa procedura, è importante considerare la sensibilità del reagente di rilevamento del fosfato.Per evitare contaminazioni da fosfati, si raccomanda di utilizzare materiale plastico monouso e acqua ultrapura ed eseguire una cromatografia a esclusione dimensionale o a scambio ionico dopo la purificazione della proteina.

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