Name: Subclavian ader punctie als een alternatieve methode van bloed monster collectie bij ratten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-11-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 42 s
Description: Leer een alternatieve bloedafname-methode bij ratten via subclaviaanse vene-punctie. Dit protocol minimaliseert stress en complicaties tijdens het verzamelen van voldoende bloedvolume voor onderzoek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Geen verklaard.

Deze studie werd goedgekeurd door de centrale Zuid-Universiteit ethisch comité voor onderzoek van het dier uit het tweede Xiangya ziekenhuis (Changsha, China). Het manuscript werd voorbereid volgens aankomen (dier onderzoek: rapportage van In Vivo experimenten) richtsnoeren9.
1. materiaal en dier voorbereiding
<ol><li>Voorbereiden van benodigde materialen: epileren agent, 75% ethanol, plakband, bloed collectie buis, 2,5 mL spuit verbonden met naald (24 G, 0.6 mm x 25 mm), haar scheerapparaat, elektronische schaal en gauge (Zie Tabel van materialen).</li>
	<li>Gebruik 20 Sprague-Dawley (SD) ratten, leeftijd 8-10 weken en gewicht 153-200 g (Zie Tabel van materialen). Ratten volgens de richtsnoeren voor de zorg en het gebruik van proefdieren10te handhaven.</li>
	<li>Huis ratten onder standaardomstandigheden met gratis toegang tot voedsel en drinkwater. Houd ze in 530 cm2 kooien met hout-scheren beddengoed (2 ratten per kooi). Houden van dieren in een temperatuur gecontroleerde kamertemperatuur van ongeveer 25 ° C.</li>
	<li>Narcose induceren (natrium pentobarbital 40 mg/kg) in alle dieren door intraperitoneale injectie vóór de punctie subclavian ader.</li>
	<li>Plaats de rat in een liggende positie. Bevestigen van de achterste ledematen in een comfortabele positie en monteren van bovenste extremiteit evenwijdig aan de aslijn van de lichaam net naast de kofferbak. Opmerking: Geen mechanische ventilatie is nodig voor deze procedure (Figuur 1).</li>
	<li>Reinig beide zijden van de infraclavicular-ruimte te verwijderen bont (met haar scheerapparaat en epileren agent, Zie Tabel van materialen) en zichtbaar vuil. Veeg de nek en borstwervels huid met 75% ethanol. Houd het gebied voor punctie schoon en droog met gaas.</li>
</ol>2. bloed verzameling Procedure
Opmerking: Beide zijden van de ader van de subclavian zijn geschikt voor punctie, en hier kiezen we de rechterkant voor punctie. De locatie en richting van het juiste sleutelbeen worden geïdentificeerd door de exploitant van de linker duim (Figuur 2). De suprasternal fossae zijn zachtjes aangeraakt met de wijsvinger, zoals de suprasternal fossae is in de richting van de naald (Figuur 2).
<ol><li>Spoel een steriele 2,5 mL injectiespuit met heparine oplossing (10 IU/mL).</li>
	<li>Ga naar de site van de punctie 0.5 mm caudal aan de buitenste regio van de 1/3 van de juiste sleutelbeen (Figuur 3). Verplaats de spuit zachtjes in de huid van de punctie-site. Zodra de naald de infraclavicular huid treedt, toepassing onderdruk met de exploitant van de rechterhand (Figuur 4). Opmerking: Het volume van de gemiddelde en maximale bloed zijn 1,0 mL en 1,4 mL, respectievelijk. De richting van de naald is gepositioneerd richting de suprasternal fossae en moet bijna parallel aan de clavicula gewoon posterieure ernaar. Meestal is de subclavian ader bereikbaar door het invoegen van de naald ongeveer 2 mm in deze richting. Zodra de naald de ader ingaat, treedt bloed de spuit onder negatieve druk.<ol>
<li>Onderdruk handhaven totdat voldoende hoeveelheid bloed wordt getekend (Figuur 5).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Als de subclavian veneuze bloed collectie niet succesvol is, terugtrekken van de naald naar het subcutane gebied en draai de richting van de naald iets interieur aan het borstbeen.<ol>
<li>Als drie pogingen mislukken, Vermijd de subclavian ader vanaf dezelfde kant en gebruik van de contralaterale zijde voor bloedmonsters.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Na de bloedinzameling, verwijder de naald punctie en druk uitoefenen op de site van de lekke band voor 1-2 minuten om te stoppen met bloeden. Opmerking: De druk moet zeer zacht om te voorkomen dat verstikking.</li>
</ol>3. bloed monster Processing
<ol><li>Breng het bloedmonster in een antistollingsmiddel beklede vacuüm buis (EDTA) en Centrifugeer gedurende 10 min bij 1600 x g voor het verzamelen van plasma.</li>
	<li>Gecombineerd het supernatant om een schone buis en sla bij-80 ° C (Figuur 6).</li>
</ol>

<ol><li>Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+sample+collection+in+small+laboratory+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacology%2C+Pharmacotherapeutics%22%5BJournal%5D)">Blood sample collection in small laboratory animals.</a> Journal of Pharmacology, Pharmacotherapeutics. 1 (2), 87-93 (2010).</li>
<li>Korfmacher, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Utility+of+capillary+microsampling+for+rat+pharmacokinetic+studies%3A+Comparison+of+tail-vein+bleed+to+jugular+vein+cannula+sampling%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacological+and+Toxicological+Methods%22%5BJournal%5D)">Utility of capillary microsampling for rat pharmacokinetic studies: Comparison of tail-vein bleed to jugular vein cannula sampling.</a> Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 76, 7-14 (2015).</li>
<li>Feng, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Catheterization+of+the+carotid+artery+and+jugular+vein+to+perform+hemodynamic+measures%2C+infusions+and+blood+sampling+in+a+conscious+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Catheterization of the carotid artery and jugular vein to perform hemodynamic measures, infusions and blood sampling in a conscious rat model.</a> Journal of Visualized Experiments. (95), (2015).</li>
<li>Wickremsinhe, E. R., Renninger, M., Paulman, A., Pritt, M., Schultze, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+Repeated+Tail+Clip+and+Saphenous+Vein+Phlebotomy+on+Rats+Used+in+Toxicology+Studies%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicologic+Pathology%22%5BJournal%5D)">Impact of Repeated Tail Clip and Saphenous Vein Phlebotomy on Rats Used in Toxicology Studies.</a> Toxicologic Pathology. 44 (7), 1013-1020 (2016).</li>
<li>Takahashi, M., Makino, S., Kikkawa, T., Osumi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+rat+serum+suitable+for+mammalian+whole+embryo+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Preparation of rat serum suitable for mammalian whole embryo culture.</a> Journal of Visualized Experiments. (90), e51969(2014).</li>
<li>Cochran, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determining+Glucose+Metabolism+Kinetics+Using+18F-FDG+Micro-PET%2FCT%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Determining Glucose Metabolism Kinetics Using 18F-FDG Micro-PET/CT.</a> Journal of Visualized Experiments. (123), (2017).</li>
<li>Beeton, C., Garcia, A., Chandy, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drawing+blood+from+rats+through+the+saphenous+vein+and+by+cardiac+puncture%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Drawing blood from rats through the saphenous vein and by cardiac puncture.</a> Journal of Visualized Experiments. (7), 266(2007).</li>
<li>Zou, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeated+Blood+Collection+from+Tail+Vein+of+Non-Anesthetized+Rats+with+a+Vacuum+Blood+Collection+System%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System.</a> Journal of Visualized Experiments. (130), (2017).</li>
<li>Kilkenny, C., Altman, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improving+bioscience+research+reporting%3A+ARRIVE-ing+at+a+solution%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Animal%22%5BJournal%5D)">Improving bioscience research reporting: ARRIVE-ing at a solution.</a> Lab Animal. 44 (4), 377-378 (2010).</li>
<li>National Institute of Health. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Guide+for+the+Care+and+Use+of+Laboratory+Animals%22">Guide for the Care and Use of Laboratory Animals</a>. , 8th, National Academies Press (US). US (Washington DC). (2011).</li>
<li>Antonelli, D., Feldman, A., Freedberg, N. A., Turgeman, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axillary+vein+puncture+without+contrast+venography+for+pacemaker+and+defibrillator+leads+implantation%5BTitle%5D)+AND+%22Pacing+and+Clinical+Electrophysiology%22%5BJournal%5D)">Axillary vein puncture without contrast venography for pacemaker and defibrillator leads implantation.</a> Pacing and Clinical Electrophysiology. 36 (9), 1107-1110 (2013).</li>
<li>Luis, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microscopic+magnetic+resonance+imaging+of+the+thoracic+venous+system+in+rats+with+congenital+diaphragmatic+hernia%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Surgery+International%22%5BJournal%5D)">Microscopic magnetic resonance imaging of the thoracic venous system in rats with congenital diaphragmatic hernia.</a> Pediatric Surgery International. 27 (2), 175-180 (2011).</li>
<li>Tsukamoto, A., Serizawa, K., Sato, R., Yamazaki, J., Inomata, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vital+signs+monitoring+during+injectable+and+inhalant+anesthesia+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Animals%22%5BJournal%5D)">Vital signs monitoring during injectable and inhalant anesthesia in mice.</a> Experimental Animals. 64 (1), 57-64 (2015).</li>
</ol>

Dit werk werd gesteund door de subsidie uit nationale Natural Science Foundation van China nr. 81670269, nr. 81500355 en nr. 81500226.

Hier introduceren we een alternatieve methode om bloed te onttrekken aan de subclavian ader en we laten zien dat deze methode is van toepassing, haalbaar en veilig voor bloedmonsters bij ratten. Deze methode is afgeleid van de pacemaker-implantatie van de voorsprong voor patiënten11lekke subclavian ader. De subclavian ader ligt gewoon posterior en caudal aan het sleutelbeen en is een voortzetting van de axillaire ader. Het loopt van de buitenste rand van de eerste rib naar de mediale rand van voor...

Bloedinzameling is essentieel in het dierlijke onderzoek. De aders van de doelgroep voor bloedinzameling omvatten de retro-orbitaal plexus, de halsslagader, de saphenous ader, staart bloedvaten en de halsslagader1,2,3,4. Soms kon bloed worden verkregen van de abdominale aorta, vena cava of zelfs het hart5,6,7. Bij dergelijke gelegenheden, de dieren moeten worden opgeofferd en kunnen niet worden gebruikt voor verdere observatie; Dus, deze methoden worden gebruikt minder in dagelijkse experimenteel werk. Bloedinzameling van de ader van de staart van ratten is populair en minder stressvol ten opzichte van de hierboven genoemde methoden8.
Echter is bloedinzameling van de ader van de staart soms beperkt door een onbevredigende slagingspercentage. Af en toe, is het ook moeilijk om genoeg bloed-volume door deze methode. Zoals de subclavian ader groot genoeg is en net onder het sleutelbeen bot ligt, kunnen subclavian ader punctie een alternatieve methode voor het bloed bemonstering als routine bloed vergaringsmethoden mislukt zijn. Hier introduceren we een methode van bloed collectie door middel van subclavian ader punctie bij ratten.

<table><tbody><tr><td>ratten</td><td>Hunan SJA Laboratory Animal Co., Ltd (Changsha, Hunan Province, China)&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>statistische software</td><td>SPSS Statistics 17</td><td></td><td></td></tr><tr><td>onthaarmiddel</td><td>France Yi Sha Cosmetics Co.,Ltd(Guangzhou, Guangdong Province,China)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>2,5 mL injectiespuit</td><td>Shandong Weigao Group Medical Polymer Co.,Ltd(Weihai,Shandong Province,China)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>haarscheerder</td><td>Shanghai FLYCO Electric Co., Ltd(Shanghai,China)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>pleister</td><td>3M Deutschland GmbH(EdisonstraBe 6,59157 Kamen, Germany)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pentobarbital natrium</td><td>Merck</td><td></td><td></td></tr><tr><td>75% ethanol</td><td>Department of Pharmacy,The Second Xiangya Hospital of Central South University</td><td></td><td></td></tr><tr><td>bloedafnamebuisje</td><td>Hubei Jinxing Technology&amp;Development Co.,Ltd (Wuhan Hubei Province,China) (2ml)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>elektronische weegschaal</td><td>Dongguan Shengheng Electronics Co.,Ltd (Dongguan,Guangdng Province,China)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>canvas handschoenen</td><td>voor anesthesie</td><td></td><td></td></tr><tr><td>hepaïne</td><td>Nanjing Xinbai Pharmaceutical&nbsp; Co.,Limited (Nanjing, Jiangsu Province, China) (2mL, 12500 IU)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>fysiologische zoutoplossing</td><td>Hunan Kelun Pharmaceutical Co., Ltd(Yueyang,Hunan Province,China) (100ml)</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

subclavian ader punctie als een alternatieve methode van bloed monster collectie bij ratten

Subclavian Vein Puncture As an Alternative Method of Blood Sample Collection in Rats

Bloedinzameling met genoeg bloed volume is essentieel in dierproeven. Bloedinzameling van de ader van de staart van ratten is populair en minder stressvol vergeleken met andere meer agressieve methoden zoals retro-orbitaal plexus monster collectie. Echter wordt deze bloed collectie methode soms beperkt door een onbevredigende slagingspercentage. Hier introduceren we een methode voor bloedinzameling via de subclavian ader punctie. De subclavian ader ligt net onder het sleutelbeen en deze ader is groot genoeg om te voldoen aan de eisen van het volume van bloed collectie. Onze resultaten tonen aan dat deze methode veilig en die van toepassing zijn voor bloedmonsters van de collectie met het bloed van de vereiste volume is. Bloedinzameling via de subclavian ader punctie kan dienen als een alternatieve bloed collectie methode in het geval van mislukte staart veneuze bloedmonsters bij ratten.

Een totaal van 20 SD ratten (mannelijke n = 10, vrouwelijke n = 10) hier werden gebruikt. Bloed collectionwas uitgevoerd door ervaren ondernemers, die hebben meer dan 20 bloed bemonsteringen uitgevoerd vanaf de subclavian ader bij ratten, en de exploitanten van de beginner, die hebben geen subclavian ader punctie ervaring in ratten of andere dieren. Voor activiteiten keek beginners ten minste 3 procedures gedaan door bekwame operatoren.
<p class="jove_content" fo:keep-together.within-...

Hier presenteren we een protocol voor het verzamelen van bloedmonsters van de rat subclavian ader.

Subclavian ader punctie als een alternatieve methode van bloed monster collectie bij ratten

Blood collection with enough blood volume is essential in animal experiments. Blood collection from the tail vein of rats is popular and less stressful ...

Subclavian Vein Punctie als alternatieve methode van bloedmonsterverzameling bij ratten. Na algemene anesthesie, plaats ratten in supine positie en steriliseren infraclaviculaire ruimte met 75%ethanol. Identificeer superieure sternale fossa voor punctie.Zoek de punctieplaats, caudal naar het buitenste een derde gebied van het sleutelbeen aan dezelfde kant. De richting van de naald werd geplaatst in de richting van de superieure sternale fossa en moet bijna parallel aan het sleutelbeen, net achterste aan. Na het afhouden van het bloed, druk op de punctie site voor een tot twee minuten, om te stoppen met bloeden.Bloedafname met voldoende volume is altijd nodig in dierproeven. Bloedafname van ratten staart ader is populair en minder stressvol dan sommige agressieve methoden, zoals retro orbitale plexus monster collectie. Deze methode wordt echter beperkt door het slagingspercentage.Hier introduceren we onze methode voor bloedafname met het gewenste bloedvolume van de subclavian ader. Onze resultaten tonen aan dat deze methode veilig en praktisch is, en kan worden overwogen in het geval bloedafname van staartader is mislukt. Om te beginnen, bereiden plakband, epilating agent, 75%ethanol, bloedafname buis, twee punt vijf milliliter spuit, haar scheerapparaat, elektronische schaal, heparine, en fysiologische zoutoplossing.Huis ratten onder standaard omstandigheden, met vrije toegang tot voedsel en drinkwater, bewaard in 530 vierkante centimeter kooien met hout scheren beddengoed. Induceer algemene anesthesie bij alle dieren via intraperitoneale injectie vóór punctie. Plaats de rat in supine positie, bevestig de achterste ledematen in een comfortabele positie, en bevestig de bovenste ledematen parallel aan het lichaam, net naast de romp.Reinig beide zijden van de infraclaviculaire ruimte om de vacht en zichtbaar vuil te verwijderen. Veeg de nek en thoracale huid af met 75% ethanol en houd het gebied schoon en droog met gaas. Beide zijden van de subclavian ader zijn geschikt voor punctie, en hier kiezen we de rechterkant voor punctie.Identificeer de locatie en de richting van het rechtersleutelbeen met de linkerduim van de operator en lokaliseer de superieure sternale fossa voorzichtig met de wijsvinger. Spoel onze spuit af met 10 unit-per-milliliter heparine oplossing. Zoek de punctieplaats, punt vijf millimeter caudal aan het buitenste een derde gebied van het rechter sleutelbeen.Beweeg de spuit voorzichtig in de huid van de punctieplaats. Zodra de naald in de infraclaviculaire huid komt, voert u een actieve druk aan via de rechterhand van de operator. De richting van de naald is gepositioneerd in de richting van de superieure sternale fossa, en moet bijna parallel aan het sleutelbeen, net achterste aan.Meestal kan de subclavian ader worden bereikt door het inbrengen van de naald voor ongeveer twee millimeter in deze richting. Zodra de naald in de ader komt, komt het bloed onder actieve druk in de spuit terecht. Dan moet de actieve druk worden gehandhaafd totdat de juiste hoeveelheid bloed wordt getrokken.Na het afhouden van het bloed, verwijder de punctie naald, en druk op de punctie site voor een tot twee minuten om te stoppen met bloeden. Let op: de druk moet zeer zacht zijn om choke te voorkomen. Breng het bloedmonster in een anti-gestolde vacuümbuis met EDTA en centrifuge op 1600G gedurende 10 minuten om plasma te verzamelen.Aspirate de supernatent om opnieuw schoon buis en op te slaan bij min 18 Celsius graden. Om het slagingspercentage tussen de ervaren operators en de beginners te vergelijken, werden 20 SD-ratten willekeurig verdeeld in twee groepen. De resultaten tonen aan dat door de juiste subclavian ader, negen ratten in de geschoolde groep en acht ratten in de beginnersgroep geslaagd, respectievelijk.Dan is de bloedafname van de resterende drie ratten geslaagd via de linkerkant. Het slagingspercentage had geen significant verschil tussen deze twee groepen. De tijdskoers was in deze twee groepen iets anders.Geen ernstige complicaties, zoals pneumothorax, hemopneumothorax, en bloeding opgetreden tijdens of na de operatie. Alle dieren overleefden na de bloedafname. Om de moeilijkheden van het leren van de punctieprocedure aan te tonen, hebben we het aantal opnames tussen de geschoolde en de beginnersgroepen verder vergeleken.Zoals blijkt uit tabel twee is het gemiddelde aantal opnames in geschoolde groepen iets lager dan de beginners, maar er is geen statistische significantie. Tot slot tonen onze resultaten aan dat de subclavian ader punctiestrategie voor bloedafname veilig en haalbaar is bij ratten. Deze methode is waardevol, vooral bij gelegenheden waarin grote hoeveelheid bloed nodig is.Deze methode kan een optimaal alternatief zijn als de conventionele bloedafname mislukt.

subclavian-vein-puncture-as-an-alternative-method-blood-sample

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

Het bloed trekt nodig zijn in een groot aantal studies, bijvoorbeeld om de farmacokinetiek profiel van een verbinding studie. Hier laten we zien hoe om bloed te trekken uit ratten met behulp van twee technieken: het bloed te trekken uit de vena ader of door het hart doorboren.

Tekening Bloed van Ratten via de v. saphena en door Cardiac punctie

Bloedmonsters zijn nuttig voor het beoordelen van biomarkers van fysiologische toestanden of ziektes in vivo. Hier beschrijven we de methodologie om bloed te bemonsteren uit de laterale staarsafvoerende ader bij de rat. Deze methode levert snelle monsters met minimale pijn en invasiviteit.

Bloedafname van de Lateral staartader van de Rat

Hier beschrijven we een eenvoudige staart veneuze bloedmonsters methode bij niet-verdoofd ratten met behulp van een systeem van de buisjes opzuigen. Deze methode vermindert het risico van directe blootstelling aan bloed en vereenvoudigt meerdere bemonstering van een enkele Venapunctie.

Herhaald bloedinzameling van staart ader van niet-verdoofd ratten met een systeem voor het verzamelen van vacuüm bloed

Hier presenteren we een protocol om bloedmonsters te nemen van de subclavia ader van muizen.

Bloedafname door Subclavia ader punctie bij muizen

Het huidige protocol beschrijft een eenvoudige en efficiënte methode voor het verzamelen van bloed uit de subclavia-ader bij ratten. Het maakt snelle, tijdige en gemakkelijk identificeerbare bemonstering zonder anesthesie mogelijk en verkrijgt bloed van hoge kwaliteit door herhaalde monsterverzameling.

Repetitieve bloedafname uit de subclavia-ader van bewuste rat

Hier presenteren we een protocol om snelle, eenvoudige en betrouwbare alternatieven voor bloedafname te bieden voor het rattenmodel. We beschrijven drie verschillende bloedafnamemethoden, afhankelijk van de context: staartaderpunctie onder anesthesie of op een bewust dier en dorsale penisaderpunctie onder anesthesie.

Gemodificeerde staartader en penisaderpunctie voor bloedafname in het rattenmodel

Hier presenteren we een combinatie van effectieve rattenbeperking en subclavia-aderpunctiemethoden die snelle, veilige en herhaalde bloedafname bij ratten zonder verdoving mogelijk maken.

Bloedafname van subclavia-aderen bij bewuste ratten

De muis model van cecal ligatie en lek als een waardevol instrument voor de studie van de menselijke sepsis.

Cecal Ligatie Puncture Procedure

Biomarkers zijn direct gemeten biologische indicatoren van ziekte of gezondheid. Van de bevolking en de sociale wetenschappen, moeten biomarkers te zijn gemakkelijk te verkrijgen, het vervoer, en te analyseren. Gedroogde Blood Spot (DBS) collectie voldoet aan deze behoefte, kunnen worden verzameld in het veld met hoge respons en voor een verscheidenheid van biomarkers geanalyseerd.

Gedroogde Blood Spot Collectie van Volksgezondheid Biomarkers voor deelname aan Population Studies maximaliseren

Het huidige werk illustreert het gemak van het gebruik van sublinguale immunotherapie om de aangeboren immuunrespons in de longen te versterken en bescherming te bieden tegen acute pneumokokkenpneumonie bij muizen.

Sublinguale immunotherapie als een alternatief voor bescherming tegen acute luchtwegeninfecties Induce

Leer een alternatieve bloedafname-methode bij ratten via subclaviaanse vene-punctie. Dit protocol minimaliseert stress en complicaties tijdens het verzamelen van voldoende bloedvolume voor onderzoek.

Subclavian ader punctie als een alternatieve methode van bloed monster collectie bij ratten

Meer video's verkennen