Name: Orthotopique l’Injection de cellules cancéreuses du sein dans les coussinets adipeux mammaire de souris (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-01-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 5 s
Description: Apprenez l'injection orthotopique de cellules cancéreuses du sein dans les coussinets adipeux mammaires de souris. Cette méthode moins invasive permet d'étudier la croissance tumorale et de tester l'efficacité des médicaments anticancéreux.

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Les auteurs tiennent à remercier la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (subvention No 81873111, 81673924, 81774039, 81503517), la Fondation des sciences naturelles de Pékin (subvention No 7172095, 7162084, 7162083) et la Xu Xia fondation de l’hôpital de Beijing de La médecine traditionnelle chinoise (subvention no, xx201701). Nous remercions le professeur Chang-Zhen Liu, du centre de recherche expérimental, China Academy of Sciences médicales chinoises, pour images bioluminescents.

Des expérimentations animales ont été effectuées conformément à la disposition et la recommandation générale de législation Administration chinoise animale expérimentale et ont été approuvées par l’Institution de la protection des animaux et l’utilisation Comité de médecine Université de la capitale (Ref pas. AEEI-2014-052). On a utilisé des souris Balb/c femelles âgés de 6 à 8 semaines.
1. préparation des cellules et des animaux
<ol><li>Un jour avant l’opération, se raser les poils autour des mamelons quatrième pour exposer la zone de fonctionnement.<ol>
<li>Utilisez une main pour bien tenir la souris vers le haut pour s’assurer que la souris ne pas se déplacer librement, vous présentez à la souris pour exposer son ventre à l’opérateur et ensuite utiliser une autre main pour raser la fourrure autour des mamelons quatrième avec un rasoir électronique.</li>
		<li>Mettez une fine couche de l’épilation à la crème autour des mamelons pendant 30-60 s, nettoyer la crème avec de l’eau distillée et ensuite sécher la souris avec papier doux.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Le jour de l’opération, recueillir des cellules cancéreuses murin (4 t 1-luc2), compter le nombre de cellules et ajuster la densité des cellules à 2 x 105 cellules/mL dans une solution saline tamponnée au phosphate (PBS) dans des tubes de microcentrifuge stérile et les conserver sur la glace. Pour chaque souris, 1 x 104 cellules/50 µL dans une seringue de 1 mL est prête.</li>
</ol>2. orthotopique Injection
<ol><li>
Anesthésie des souris
	<ol>
<li>Induire l’anesthésie. Mettre les souris dans un récipient transparent fermé et allumez automne et 2 % isoflurane gaz à anesthésier les souris pendant environ 5 min, jusqu'à ce qu’ils sont tous couchent endormi.</li>
		<li>Maintenir l’anesthésie. Transférer les souris du conteneur aux masques d’anesthésie individuelles, mettre une pommade vétérinaire sur leurs yeux pour éviter la sécheresse, maintenez les souris passivement avec leurs seins exposés à l’opérateur et qu’ils continuent à inhaler gaz isoflurane pendant quelques minutes jusqu'à ce que le injection a été réalisée.</li>
		<li>Confirmer le succès de l’anesthésie par l’absence d’un réflexe de retrait orteil pincée.</li>
		<li>Appliquer la pommade ophtalmique aux yeux des souris pour prévenir le dessèchement de le œil. Remarque : Selon la taille du conteneur et le nombre de masques d’anesthésie individuelles disponibles, un groupe de souris peut être anesthésié ensemble et injecté un sous anesthésie individuel.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Performance de l’injection
	<ol>
<li>Utiliser la tente la peau d’une main autour du mamelon quatrième avec des pincettes, de mettre en place un « tunnel » soulevé pour la seringue à suivre. Utilisez l’autre main pour tenir la seringue avec l’aiguille tournée vers le haut pour entrer dans la peau par voie sous-cutanée à 5-10 mm de mamelon ; Ensuite, suivez le « tunnel » jusqu'à ce que la pointe de l’aiguille se rapproche du mamelon, déplacer délicatement l’aiguille pointe vers le haut dans les coussinets adipeux mammaire jusqu'à ce que le chas de l’aiguille sous la pointe du mamelon, jetez la pince à épiler et injecter les cellules lentement.</li>
		<li>Tournez autour de l’aiguille un peu et rentrer la seringue lentement ; Utilisez un coton-tige pour enfoncer l’aiguille enroulée pour 10-20 s pour s’assurer il n’y a aucune infiltration de liquide.</li>
		<li>Observer le quatrième mamelon pour confirmer une injection réussie : une sphère blanche de plate transparente avec le mamelon que le centre peut être observée (Figure 1).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Gardez les souris anesthésiés pour une minute pour éviter de laisser les souris récupérer et se déplacent trop rapidement, qui provoquera l’injection enroulée pour ouvrir et les cellules tumorales à écouler.</li>
</ol>3. analyse de la croissance tumorale et les métastases
Remarque : Les tumeurs primaires sont identifiés transparents ou boursouflure comme bosses après injections, ainsi que des morceaux solides sphériques ou ellipsoïdes avec le mamelon quelques jours plus tard. La croissance tumorale est évaluée par le volume de la tumeur et de la bioluminescence de la tumeur.
<ol><li>Pour établir le volume de la tumeur, maintenez la souris d’une main. Exposer son ventre à l’opérateur et utilisez l’autre main pour étrier de la longueur (L) de la tumeur et la largeur (W). Calculer le volume de la tumeur (V) comme suit. V = (L x W2) / 2</li>
	<li>Pour capturer la bioluminescence de la tumeur, injecter D-luciférine de 150 mg/kg à l’arrière du cou de la souris, 10 min avant l’imagerie. Anesthésier les souris au gaz isoflurane 2 % pendant 5 min et de les transférer aux masques d’anesthésie individuels pour les laisser respirer des gaz isoflurane pendant plus de 5 min. Suivant les instructions du fabricant, capturer des images de la bioluminescence de la tumeur primitive et les métastases, avec temps d’exposition automatique, moyen binning et f/stop à 1.</li>
</ol>4. la cueillette de la tumeur primitive et les métastases organes pour l’analyse
Remarque : Lorsque l’atteinte du but de cette expérience, ou d’atteindre le point de terminaison sans cruauté, la tumeur primitive peut être récoltée pour complément d’étude. Dans cette étude, les tumeurs sont enlevées à 4 à 5 semaines après l’injection, lorsque le volume de la tumeur atteint environ 800 mm3. Les poumons sont enlevées à la semaine 8.
<ol><li>
Récolte de la tumeur primitive
	<ol>
<li>Effectuer la chirurgie sous une hotte stérile de maintenir une atmosphère stérile. Anesthésier les animaux par isoflurane. Confirmer le succès de l’anesthésie par l’absence de réflexes de retrait orteil pincée. Appliquer la pommade ophtalmique aux yeux des souris pour les empêcher de se dessécher.</li>
		<li>Dissocier la tumeur de la peau avec des ciseaux, goutte à goutte painkiller (1 mg/mL, tramadol, 1 goutte d’environ 50 µL par souris) pour soulager la douleur postopératoire.</li>
		<li>Piquer la peau avec une suture chirurgicale, couper les excès suture, drapé au large de l’incision.</li>
		<li>Couper la tumeur primitive en deux avec un scalpel, mettre 1/2 de la tumeur en paraformaldéhyde 4 % supplémentaire l’hématoxyline et éosine (H & E) souillant et immunohistochimie et geler immédiatement l’autre 1/2 avec l’azote liquide pour éponger occidental ou d’un ARN étude de l’isolement par la suite.</li>
		<li>Après suture, chauffer les souris avec une lampe jusqu'à ce qu’ils récupèrent, garder les souris en cage unique jusqu'à ce que complètement guéri. En permanence, administrer 10 mg/kg tramadol avec un gavage oral pendant 3 jours après la chirurgie.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Récolte d’organes métastases
	<ol>
<li>Euthanasier les souris avec une surdose de pentobarbital, ouvrir leurs coffres avec des ciseaux, doucement sortir les poumons et les laver avec du PBS. Foyers de métastases pulmonaires peuvent être identifiés comme blanc transparent bosses qui sont morphologiquement différentes et distinguer des tissus pulmonaires rose normal.</li>
		<li>Mettre les poumons en paraformaldéhyde à 4 % pour vérifier la métastase de la coloration H & E.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Torre, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+cancer+statistics%5BTitle%5D)+AND+%22CA%3A+A+Cancer+Journal+for+Clinicians%22%5BJournal%5D)">Global cancer statistics.</a> CA: A Cancer Journal for Clinicians. 65 (2), 87-108 (2012).</li>
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<li>Kalra, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Validating+the+use+of+a+luciferase+labeled+breast+cancer+cell+line%2C+MDA435LCC6%2C+as+a+means+to+monitor+tumor+progression+and+to+assess+the+therapeutic+activity+of+an+established+anticancer+drug%2C+docetaxel+%28Dt%29+alone+or+in+combination+with+the+ILK+inhibitor%2C+QLT0267%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Biology+%26+Therapy%22%5BJournal%5D)">Validating the use of a luciferase labeled breast cancer cell line, MDA435LCC6, as a means to monitor tumor progression and to assess the therapeutic activity of an established anticancer drug, docetaxel (Dt) alone or in combination with the ILK inhibitor, QLT0267.</a> Cancer Biology & Therapy. 11 (9), 826-838 (2011).</li>
<li>Hoffman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthotopic+metastatic+mouse+models+for+anticancer+drug+discovery+and+evaluation%3A+a+bridge+to+the+clinic%5BTitle%5D)+AND+%22Investigational+New+Drugs%22%5BJournal%5D)">Orthotopic metastatic mouse models for anticancer drug discovery and evaluation: a bridge to the clinic.</a> Investigational New Drugs. 17 (4), 343-359 (1999).</li>
<li>Hoffman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patient-derived+orthotopic+xenografts%3A+better+mimic+of+metastasis+than+subcutaneous+xenografts%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Cancer%22%5BJournal%5D)">Patient-derived orthotopic xenografts: better mimic of metastasis than subcutaneous xenografts.</a> Nature Reviews Cancer. 15, 451(2015).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Les cellules utilisées dans cette étude sont 4 t 1-luc2, murin triple négatif cellules cancéreuses avec luciférase d’étiquetage, qui constituent un outil utile pour investir les effets antitumoraux et antimétastatique des médicaments en raison de leur caractère très invasif2,19 . Luciférases, stables à la prochaine génération de cellule, sont utilisés pour indiquer la tumeur de la vie des cellules, à la glande mammaire, ainsi que chez les autres organes éloignés ...

Le cancer est la principale cause de mortalité féminine dans le monde entier. Avec son incidence augmentant progressivement, le cancer du sein est devenu un défi sérieux pour la santé publique1. Modèles murins de cancer sont de bonnes passerelles entre les études précliniques et cliniques, et un modèle de bonne maladie murine mimic va augmenter la précision de la recherche sur la maladie et la médecine.
Croissance de la tumeur primaire commence la progression de la maladie maligne, tandis que les métastases et les complications sont les principales causes de décès et les qualités de vie pauvre dans la plupart des patients de cancer. Plusieurs modèles murins sont utilisées pour imiter la pathologie du sein cancer2,3,4. Des modèles de xénogreffes sont largement utilisés pour l’étude sur le cancer comprendre les caractères pathologiques et à des médicaments de l’écran pour la sécurité et l’efficacité de6,5,7. Des souris génétiquement modifiées (GEM) sont générés pour imiter le cancer du sein humain en ciblant certains oncogènes ou tumeur de gènes suppresseurs8. GEM ont un fond relativement simple et uniforme, de comprendre le rôle des gènes en cours cancéreuses ; Toutefois, le milieu artificiel et l’arrière-plan sont limitées pour enquêter sur la pathologie de la métastase et associés à des thérapies9. Les cellules cancéreuses humaines, mais avec des caractéristiques pathologiques humains, peuvent seulement être implantés chez des souris immunodéficientes, et l’insuffisance de l’interaction immunitaire de tumeur-hôte peut conduire à des résultats biaisés10.
Où la tumeur solide initie a une influence directe sur les caractères biologiques et pathologiques de la maladie de12,11,13. Cancéreuses progrès étant le résultat complexe d’interactions entre les cellules tumorales, les cellules du stroma, cellules d’immunologie, des cellules inflammatoires, facteurs de croissance et des protéases, tumeurs primaires implantés in situ sera donner meilleure idée et imiter les processus cancéreux ont plus de précision que les tumeurs induites par des agents chimiques ou une injection sous-cutanée de tumeur cellules. Agents chimiques utilisés pour induire des tumeurs peuvent être nocives pour l’environnement et des chercheurs et sont même interdits dans certains pays. En raison de l’absence d’un environnement de coussinets adipeux mammaire, la progression pathologique d’une injection sous-cutanée peut-être différer avec que dans le véritable cancer, dont le cancer est originaire et irrite depuis les coussinets adipeux mammaire. Les inconvénients des injections sous-cutanées encouragent l’utilisation de modèles orthotopiques pour étudier la croissance tumorale. Dans des recherches antérieures, fortement métastatiques tumeurs MDA-MB-231, mis au point après la transplantation orthotopique sept, a indiqué l’importance de l’injection emplacement14. Récemment, l’implantation orthotopique de cellules cancéreuses du sein dans les coussinets adipeux mammaire par la chirurgie a été signalée15,16. Avec l’environnement pad mammaires, la croissance de la tumeur et la migration vers des organes éloignés de la couverture de l’ensemble du processus du cancer du sein sur sites pathologiquement concernés, qui en fait modèle miniature de la progression des maladies humaines. Cependant, après la chirurgie, la peau se tente automatiquement de se guérir lui-même, qui peut apporter le risque potentiel de porter atteinte à l’origine du cancer du sein normal et biaiser les résultats.
Nous avons comparé à certains modèles de cancer du sein et établi un modèle orthotopique minimalement invasive pour étudier l’effet potentiel des médicaments breast cancer progression17,18. Dans cette étude, un protocole vidéo sur la façon d’orthotopically injecter des cellules cancéreuses du sein dans les coussinets adipeux mammaire de manière simple, manière moins invasive est présenté. Cette méthode d’injection orthotopique sans chirurgie est avantageuse à bien des égards. Tout d’abord, l’opération est simple et rapide, environ 1 minute de chaque souris. En second lieu, avec des foyers de tumeur primitive à partir des droite pathologiques sites, elle couvre le processus tumorigène ensemble de la progression du cancer du sein de la croissance de la tumeur à autres métastases d’organes, qui fournit un bon modèle animal expérimental pour l’étude de la interaction des cellules tumorales et microenvironnement tumoral. En outre, il peut être un modèle précieux pour évaluer les effets de traitement à tous les stades du cancer du sein. L’objectif de cette méthode est de fournir un modèle animal pour la progression du cancer maximumly maternel mimic.

<table><tbody><tr><td>appareil d’anesthésie</td><td>Midmark Corporation, Dayton, OH, États-Unis</td><td>Matrx VMS</td> Système <td>d’imagerie d’anesthésie</td></tr><tr><td>In-Vivo</td><td>PerkinElmer</td><td>IVIS Spectrum</td><td>utilisé pour la détection de la bioluminescence</td></tr><tr><td>&nbsp ; isoflurane</td><td>Hebei yipin réactifs chimiques&nbsp ; société</td><td>O21400</td><td>anesthésie</td></tr><tr><td>1 ml seringue</td><td>Becton,Dickinson et&nbsp ; Société</td><td>A257</td><td>pied</td></tr> à <tr><td>coulisse numérique</td><td>d’injection de cellules Shang Hai Shen Han Measuring Tools Co., Ltd.</td><td>Mesure de volume</td> <td>S-H</td></tr><tr><td>tramadol</td><td>Mundipharma</td><td></td> <td>société-analgésique</td></tr><tr><td>D-luciferin</td><td>Gold Biotechnology Inc.</td><td>LUCK-1G</td><td>utilisé pour la détection de la bioluminescence</td></tr><tr><td>L’anticorps primaire contre le cluster de différenciation (CD) 31</td><td>Abcam</td><td>&nbsp ; ab28364</td><td>utilisé pour la détection MVD</td></tr><tr><td>Kit de coloration à l’hématoxyline et à l’eosine</td><td>&nbsp ; Pékin Zhong Shan Jinqiao Biotechnology Co., Ltd.</td><td>Histologie du ZLI-9615</td><td></td></tr><tr><td>crème dépilatoire</td><td></td> <td>Veet-crème</td> <td>dépilatoire</td></tr><tr><td>Carbomer Eye Gel</td><td>Dr.GerhardMannChem-Pharm.FabrikGmbH-aiguille</td><td></td> à coudre de <td>pommade ophtalmique</td></tr><tr><td></td><td>Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., Ltd.&nbsp ;</td><td>17U0302J</td><td>Suture</td></tr></tbody></table>

orthotopique l’injection de cellules cancéreuses du sein dans les coussinets adipeux mammaire de souris

Orthotopic Injection of Breast Cancer Cells into the Mice Mammary Fat Pad

Un modèle animal approprié est essentiel pour une meilleure compréhension des maladies. Animaux modèles établis par différentes méthodes (injections sous-cutanées, xénogreffes, manipulation génétique, induction de réactifs chimiques, etc.) ont des caractères pathologiques diverses et jouent un rôle important dans l’enquête sur certains aspects du maladies. Bien qu’aucun modèle ne peut imiter totalement la progression de la maladie humaine entière, modèles de maladies orthotopique organes avec un bon environnement stromal jouent un rôle irremplaçable dans la compréhension des maladies et de dépistage de médicaments potentiels. Dans cet article, nous décrivons comment implanter des cellules cancéreuses du sein dans les coussinets adipeux mammaire de manière simple, de manière moins invasive et facile à manipuler et suivez la métastase à des organes éloignés. Avec les fonctionnalités appropriées de croissance de la tumeur primitive, du sein et des changements pathologiques de mamelon et une fréquence élevée de métastases des autres organes, ce modèle maximumly imite la progression du cancer du sein humain. Tumeur primitive croissance in situ, métastases à longue-distance et le microenvironnement tumoral du cancer du sein peuvent être étudiées à l’aide de ce modèle.

Après une injection réussie, une sphère blanche de plate transparente avec le mamelon comme l’out-surface ronde centre peut être observé (Figure 1). Croissance de la tumeur primaire peut être mesurée par le volume des tumeurs et les tumeurs de la vie cellulaire bioluminescence (Figure 2). Fois le volume de la tumeur et le flux total a augmenté au cours de l’expérience avant la résection. À un stade précoce, métastase est introuva...

Ici, nous présentons un protocole visant à implanter des cellules cancéreuses du sein dans les coussinets adipeux mammaire de manière simple, façon invasive et facile à manipuler, moins et ce modèle murin orthotopique breast cancer avec un environnement approprié coussinets adipeux mammaire peut être utilisé pour étudier divers aspects de la cancer.

Orthotopique l’Injection de cellules cancéreuses du sein dans les coussinets adipeux mammaire de souris

A proper animal model is crucial for a better understanding of diseases. Animal models established by different methods (subcutaneous injections, ...

Cette méthode peut aider à répondre aux questions clés dans le domaine du cancer sur la façon dont le microenvironnement soutient la croissance tumorale ou si un médicament spécifique peut effectivement inhiber la progression du cancer du sein. Les principaux avantages de la technique d’induction tumorale sont qu’aucune chirurgie n’est nécessaire et c’est une manière moins invasive d’établir le cancer du sein in situ. En utilisant cette technique, les cellules tumorales se développent dans le coussin adipeux mammaire, dans l’environnement tissulaire approprié, imitant la progression du cancer du sein humain plus étroitement que l’injection sous-cutanée ou la xénogreffe aux cellules de souris.Ke-Xin Cao, notre technicien, et moi-même, aiderons Gan-Lin Zhang à démontrer cette procédure. La veille de l’opération, retenez manuellement la souris destinataire et tournez le côté ventre animal jusqu’à la fourrure pour qu’elle soit rasée autour des quatrièmes mamelons. Essuyer la fourrure avec une fine couche de crème depilatory.Utilisez de l’eau distillée pour enlever la crème après 30 à 60 secondes et séchez la souris avec des serviettes en papier souple. Le jour de l’opération, diluer la

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Dans cet article, nous discutons de la façon d’établir un modèle de cancer du sein chez les souris femelles en injectant des cellules cancéreuses du sein dans le coussinet adipeux mammaire. L’exemple de protocole illustre l’injection orthotopique.

Injection orthotopique dans le coussinet adipeux mammaire : établissement du cancer du sein chez la souris

La vidéo montre la technique d’inoculation orthotopique du cancer du sein dans un modèle murin. Cette technique produit un taux élevé de tumorigenèse avec moins de variabilité dans la taille et la forme de la tumeur par rapport à l’injection sous-cutanée ou non chirurgicale.

Injection orthotopique : implantation de cellules cancéreuses spécifiques à un tissu dans une souris adulte

Un modèle murin de cancer du cerveau de métastase est établi par échographie injection intracardiaque guidée par imagerie de cellules MDA-MB231/Br-GFP. Développement des métastases intracrâniennes multifocales a été suivie longitudinalement en utilisant à haute résolution de 9,4 T IRM.

Ultrasound Imaging guidée injection intracardiaque de développer un modèle de souris de cancer du sein métastases cérébrales Suivi par IRM longitudinale

L'activation de mutations latentes avec l'adénovirus Cre dans les résultats du système canalaire mammaire dans un cancer cliniquement pertinente du sein métastatique. L'incorporation d'un promoteur YFP permet de suivre les cellules tumorales métastatiques distales. Ce modèle est utile pour étudier la métastase latente, l'immunité anti-tumorale, et pour la conception de nouvelles immunothérapies pour traiter le cancer du sein.

Initiation de carcinome du sein métastatique en ciblant de l&#39;épithélium canalaire avec adénovirus Cre: un modèle de souris transgénique roman du cancer du sein

Le cancer est une maladie complexe qui est influencé par les tissus entourant la tumeur ainsi que locale pro- et anti-inflammatoires des médiateurs. Par conséquent, les modèles d'injection orthotropes, plutôt que sous-cutanées modèles peuvent être utiles pour étudier la progression du cancer d'une manière qui imite mieux de pathologie humaine.

Injection Orthotopique des cellules du cancer du sein dans le Fat Pad mammaire de souris pour étudier la croissance de la tumeur.

Un modèle de tumeur primaire du cancer du sein orthotopique et l'ablation chirurgicale de la tumeur primitive pour prolonger la vie de la souris pour générer des métastases spontanées sont décrites. La croissance et la progression tumorale sont surveillés et quantifiés par imagerie par fluorescence luciférase.

Un modèle de souris orthotopique du sein spontané Cancer Métastase

Nous décrivons ici le modèle et l’approche pour étudier les fonctions des macrophages alvéolaires pulmonaires dans les métastases cancéreuses. Pour démontrer le rôle de ces cellules dans les métastases, le modèle syngénique (4T1) du cancer du sein en conjonction avec la déplétion du macrophage alvéolaire avec des liposomes clodronates a été utilisé.

L&#39;étude du rôle des macrophages alvéolaires dans le cancer du sein métastase

Ce travail préséque un protocole avancé pour évaluer avec précision la charge tumorale par la détection de protéines fluorescentes vertes et de signaux de bioluminescence ainsi que l’intégration de la technique quantitative de détection moléculaire.

Étudier le cancer du sein triple négatif à l’aide d’un modèle orthotopique de cancer du sein

Les modèles de xénogreffes dérivées de patients (PDX) et les modèles murins génétiquement modifiés transplantables récapitulent fidèlement les maladies humaines et sont des modèles préférés pour la recherche fondamentale et translationnelle sur le cancer du sein. Ici, une méthode est décrite pour transplanter orthotopiquement des fragments de tumeur mammaire dans le coussinet adipeux mammaire afin d’étudier la biologie tumorale et d’évaluer la réponse médicamenteuse.

Transplantation orthotopique de tumeurs mammaires comme modèles précliniques pour le cancer du sein

Le manuscrit décrit une méthodologie pour l’établissement ainsi que le suivi longitudinal de la croissance des métastases pulmonaires spontanées à partir de tumeurs mammaires injectées orthotopiquement, susceptible d’intervention à tous les stades de la cascade métastatique.

In vivo Imagerie pour mesurer les métastases pulmonaires spontanées de cellules tumorales mammaires injectées orthotopiquement

Ce protocole décrit une méthode efficace et non chirurgicale pour l’implantation orthotopique de xénogreffes dérivées de patientes atteintes d’un cancer du sein chez la souris. La technique implique une dissociation enzymatique de la tumeur suivie d’une injection directe dans les coussinets adipeux mammaires, permettant une implantation à haut débit. Une validation complète garantit la fidélité du modèle, ce qui facilite des études rigoureuses sur divers sous-types de cancer du sein.

Dissociation à haut débit et implantation orthotopique de xénogreffes dérivées de patientes atteintes d’un cancer du sein

Apprenez l'injection orthotopique de cellules cancéreuses du sein dans les coussinets adipeux mammaires de souris. Cette méthode moins invasive permet d'étudier la croissance tumorale et de tester l'efficacité des médicaments anticancéreux.

Orthotopique l’Injection de cellules cancéreuses du sein dans les coussinets adipeux mammaire de souris

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