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Artigo de método

Rastreamento de partículas 3D para análise in vivo não invasiva da dinâmica dos microtúbulos sinápticos em dendritos e junções neuromusculares de Drosophila

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DOI:

10.3791/61159

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12 de maio de 2020

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* These authors contributed equally

Neste artigo

Resumo

Este estudo apresenta uma estratégia de imagem neuronal intravital não invasiva combinada com uma nova estratégia de software para obter rastreamento e análise automatizados e imparciais da dinâmica de microtúbulos (MT) in vivo nos dendritos sensoriais e nas junções neuromusculares de Drosophila.

Resumo

Os microtúbulos (MTs) desempenham papéis críticos no desenvolvimento neuronal, mas muitas questões permanecem sobre os mecanismos moleculares de sua regulação e função. Além disso, apesar do progresso na compreensão dos MTs pós-sinápticos, muito menos se sabe sobre as contribuições dos MTs pré-sinápticos para a morfogênese neuronal. Em particular, estudos da dinâmica de MT in vivo em dendritos sensoriais de Drosophila produziram insights significativos sobre o comportamento em nível de polímero. No entanto, os desafios técnicos e analíticos associados à imagem ao vivo da junção neuromuscular da mosca (NMJ) limitaram estudos comparáveis da dinâmica pré-sináptica da MT. Além disso, embora existam muitas estratégias de software altamente eficazes para análise automatizada da dinâmica de MT in vitro e ex vivo, os dados in vivo geralmente exigem entrada significativa do operador ou análise totalmente manual devido à relação sinal-ruído inerentemente inferior nas imagens e à morfologia celular complexa.  Para resolver isso, este estudo otimizou uma nova plataforma de software para detecção de partículas in vivo automatizada e imparcial. A análise multiparamétrica de imagens confocais de lapso de tempo ao vivo de MTs marcados com EB1-GFP foi realizada em dendritos e no NMJ de larvas de Drosophila e encontrou diferenças marcantes nos comportamentos de MT. A dinâmica da MT foi analisada após o knockdown da proteína associada à MT (MAP) dTACC, um regulador chave do desenvolvimento da sinapse de Drosophila, e identificou mudanças estatisticamente significativas na dinâmica da MT em comparação com o tipo selvagem. Esses resultados demonstram que essa nova estratégia para a análise multiparamétrica automatizada da dinâmica de MT pré e pós-sináptica no nível do polímero reduz significativamente os critérios de human-in-the-loop. Além disso, o estudo mostra a utilidade deste método na detecção de comportamentos distintos de MT após o knockdown de dTACC, indicando uma possível aplicação futura para telas funcionais de fatores que regulam a dinâmica de MT in vivo. Aplicações futuras deste método também podem se concentrar na elucidação do tipo de célula e/ou comportamentos de MT específicos do compartimento, e imagens correlativas multicoloridas de EB1-GFP com outros marcadores celulares e subcelulares de interesse.

Introdução

As células se organizam para formar estruturas funcionais por meio da coordenação de alterações intra e intercelulares via morfogênese. Um exemplo notável de morfogênese é o desenvolvimento da estrutura neuronal altamente especializada. Os neurônios exibem uma polarização notável, na qual estendem dois tipos de processos estrutural e funcionalmente distintos, dendritos e axônios1, que podem atingir comprimentos imensos. A complexidade do desenvolvimento neuronal surge não apenas do tamanho dos dendritos e axônios, mas também da dificuldade em formar suas geometrias intrincadamente ramificadas<....

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Protocolo

1. Geração de espécimes de Drosophila

  1. Selecione um marcador MT plus-end adequado. Este estudo utilizou EB1 marcado com GFP, um marcador positivo bem caracterizado com um sinal fortee claro 11,12. As alternativas incluem outros +TIPs, como EB310,13, CLASP/Orbit53 e CLIP-17054.
  2. Obtenha ou gere moscas com o marcador MT sob controle de um promotor de UAS (por exemplo, UAS-EB1-GFP).
  3. Escolha o driver Gal4 específico do tecido ap....

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Resultados

As moscas foram criadas a partir de estoques estáveis que expressam constitutivamente o transgene UAS-EB1-GFP pan-neuronalmente (elaV-Gal4; UAS-EB1-GFP)58,59 ou em neurônios sensoriais (221-Gal4; UAS-EB1-GFP)60,61. EB1 foi escolhido para este estudo porque se localiza especificamente nas extremidades de crescimento e se dissocia imediatamente após a pausa e encolhimento.......

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Discussão

Este artigo discute um protocolo para realizar imagens intravitais não invasivas da dinâmica da MT nos dendritos e na NMJ durante o desenvolvimento. A entrada humana é necessária durante as etapas experimentais, como na seleção de animais para imagem, e pode introduzir vieses no processo de coleta de dados que não podem ser razoavelmente removidos. Assim, um dos principais objetivos do protocolo é minimizar o viés sempre que possível, realizando análises automatizadas com um novo softwar.......

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Divulgações

Os autores Hoyin Lai, Michael Jones, Hideki Sasaki, Luciano A.G. Lucas, Sam Alworth (anteriormente) e James Shih-Jong Lee são funcionários da DRVision Technologies LLC, que produz o software usado neste protocolo.

Agradecimentos

Agradecemos aos nossos colegas do laboratório Van Vactor e da DRVision, além dos Drs. Max Heiman, Pascal Kaeser, David Pellman e Thomas Schwarz pela discussão útil. Agradecemos à Dra. Melissa Rolls por fornecer generosamente o elaV-Gal4; UAS-EB1-GFP; UAS-Dcr2 e 221-Gal4; Estoques UAS-EB1-GFP usados neste estudo. Agradecemos às Dras. Jennifer Waters e Anna Jost, do Nikon Imaging Center em Harvard, pela experiência em microscopia de luz. Este trabalho é financiado pelos Institutos Nacionais de Saúde (F31 NS101756-03 para VTC, SBIR 1R43MH100780-01D para JSL).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Tubo de microcentrífuga de 1,5 mLEppendorf21008-959Preparação de amostras
1000 µ L Pontas de pipeta TipOneUSA Scientific1111-2721Preparação de amostras
200 µ L TipOne pontas de pipetaUSA Scientific1120-8710Preparação de amostras
221-Gal4 moscasBloomington Drosophila Stock Center (EUA)26259Drosophila genética/cruzamentos
60x Lente objetivaNikonPlan Apo 60x ÓleoAquisição
de imagem Placa de 6 poçosBD Falcon353224Preparação de amostras
AgarMoorAgar41084Comida de Drosophila
AiviaDRVision LLCOtimizado como parte deste estudo
Clorofórmio (estabilizado com amilenos)Sigma-AldrichC2432Preparação de amostras
Pistola de CO2 (para seleção de moscas para cruzamentos)Genesee54-104Genética de Drosophila/cruzamentos
Borbulhador de CO2 (para seleção de moscas para cruzamentos)Genesee59-180Genética/cruzamentos de Drosophila
Câmera CCD refrigeradaHamamatsuORCA-R2Aquisição de imagem
FubáGenesee62-101Alimento Drosophila
Água Destilada AlimentoDrosophila
Fita dupla faceUísquePreparação
amostras Frascos de DrosophilaGenesee32-109Alimentos Drosophila
Plugues de Drosophila (plugues de espuma para frascos)Genesee59-200Drosophila food
Dumont #5 Biologie Inox ForcepsFine Science Tools11252-20Preparação
da amostra elaV-Gal4; UAS-EB1-GFP; UAS-Dcr2 voaGift of Melissa Rolls (Penn State University)N/AGenética/cruzamentos de Drosophila
Etanol (95%)VWR75811-022Drosophila food
Iluminador/fonte de luz de fibra óptica para estereomicroscópioNikonNI-150Preparação
de amostras Flypad (para seleção de moscas para cruzamentos)Genesee59-172Genética/cruzamentos de Drosophila
Forma: Câmara/Incubadora AmbientalThermoFisher3940Drosophila, genética/cruzamentos,
Óleo de halocarbono 700Sigma-AldrichH8898Preparação de amostras
Óleo de imersãoNikonMXA22168Aquisição de imagens
Kimwipe Toalhetes DelicadosFisher Scientific34120Preparação de amostras
Módulo de fusão a laserEspectral Fonteluminosa da aquisição da imagem da pesquisa aplicada LMM-5
aquisiçãoconfocalde LumencorSOLA 54-10021
Automatização & da microscopia de MetaMorph da aquisição da imagem Software de análise de imagemDispositivosAquisição de imagem
Micro Cover Glasses, Quadrado, N.º 1 1/2 (#1.5)VWR48366-205 Preparação deamostras
Microscópio invertido motorizado com sistema de focagem perfeitaNikonTI-ND6-PFS-SAquisição de imagem
Platina motorizada e obturadoresPréviaProscan IIIAquisição
de imagemTesoura multiusosScotchMMM1428Preparação de amostras
VernizSally Hansen784179032016 074170382839Preparação de amostras
Filtro ópticoChromaET480/40mAquisição de imagens
P1000 PipetmanGilsonF123602Preparação de amostras
P200 PipetmanGilsonF123601Preparação de amostras
PBS (10X) ph 7.4ThermoFisher70011044Preparação de amostras
Ácido propiônicoFisherA258-500Drosophila food
Unidade de scanner confocal de disco giratórioYokagawaCSU-X1Aquisição de imagem
EstereomicroscópioNikonSMZ800NPreparação de amostras
Açúcar (sacarose)Genesee62-112Alimento para Drosophila
Superfrost SlideVWR48311-600Preparação de amostras
TegoseptGenesee20-258Alimento para Drosophila
UAS-dtacc-RNAi voaViena Drosophila Resource Center (Viena, Áustria)VDRC-101439Genética/cruzamentos de Drosophila
Vaselina vaselina vaselinaDVOCB311003Preparação
de amostrasWinsor & Pincel Newton Regency Gold 520, Tamanho 0Grampos5012000Genética/cruzamentos de Drosophila
LeveduraVWRTorula Levedura IC90308580Drosophila alimento
Dichroic YokogawaSemrockDi01-T405/488/568/647-13x15x0.5Aquisição de imagem
de para a moleculares

Referências

  1. Rolls, M. M. Neuronal polarity in Drosophila: Sorting out axons and dendrites. Developmental Neurobiology. 71 (6), 419-429 (2011).
  2. Jan, Y. N., Jan, L. Y. Branching out: Mechanisms of dendritic arborization. Nature Reviews Neuroscience. 11 ....

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Reimpressões e permissões

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