Os microtúbulos (MTs) desempenham papéis críticos no desenvolvimento neuronal, mas muitas questões permanecem sobre os mecanismos moleculares de sua regulação e função. Além disso, apesar do progresso na compreensão dos MTs pós-sinápticos, muito menos se sabe sobre as contribuições dos MTs pré-sinápticos para a morfogênese neuronal. Em particular, estudos da dinâmica de MT in vivo em dendritos sensoriais de Drosophila produziram insights significativos sobre o comportamento em nível de polímero. No entanto, os desafios técnicos e analíticos associados à imagem ao vivo da junção neuromuscular da mosca (NMJ) limitaram estudos comparáveis da dinâmica pré-sináptica da MT. Além disso, embora existam muitas estratégias de software altamente eficazes para análise automatizada da dinâmica de MT in vitro e ex vivo, os dados in vivo geralmente exigem entrada significativa do operador ou análise totalmente manual devido à relação sinal-ruído inerentemente inferior nas imagens e à morfologia celular complexa. Para resolver isso, este estudo otimizou uma nova plataforma de software para detecção de partículas in vivo automatizada e imparcial. A análise multiparamétrica de imagens confocais de lapso de tempo ao vivo de MTs marcados com EB1-GFP foi realizada em dendritos e no NMJ de larvas de Drosophila e encontrou diferenças marcantes nos comportamentos de MT. A dinâmica da MT foi analisada após o knockdown da proteína associada à MT (MAP) dTACC, um regulador chave do desenvolvimento da sinapse de Drosophila, e identificou mudanças estatisticamente significativas na dinâmica da MT em comparação com o tipo selvagem. Esses resultados demonstram que essa nova estratégia para a análise multiparamétrica automatizada da dinâmica de MT pré e pós-sináptica no nível do polímero reduz significativamente os critérios de human-in-the-loop. Além disso, o estudo mostra a utilidade deste método na detecção de comportamentos distintos de MT após o knockdown de dTACC, indicando uma possível aplicação futura para telas funcionais de fatores que regulam a dinâmica de MT in vivo. Aplicações futuras deste método também podem se concentrar na elucidação do tipo de célula e/ou comportamentos de MT específicos do compartimento, e imagens correlativas multicoloridas de EB1-GFP com outros marcadores celulares e subcelulares de interesse.