Name: Intubazione endotracheale in Mouse Via Laringoscopia diretta usando un otoscopio (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-04-05T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 58 s
Description: Impara l'intubazione endotracheale nei topi tramite laringoscopia diretta con otoscopio. Questa tecnica non invasiva consente misurazioni ripetute in esperimenti cronici e offre un'alternativa affidabile alla tracheotomia.

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Un merito Sovvenzione del Department of Veteran Affairs e una borsa T32-HL098062 dal NHLBI dei National Institutes of Health sostenuto questo lavoro. Vogliamo riconoscere con gratitudine i consigli di Randolph H. Hasting, MD, Ph.D. e la consulenza e il sostegno del Veterinary Medical Unità del Sistema Sanitario di VA San Diego.

1. Preparazione degli animali <ol><li> Ottenere i topi che sono più vecchi di 8 settimane e più di 20 g (i topi più piccoli possono essere intubati da un esperto). </li><li> Anestesia <ol><li> Iniettare topi con 20 mg / kg, ciascuno, di chetamina e xilazina intraperitoneale come preanesthetic. (Questa dose è sufficiente per anestetizzare completamente il mouse, ma facilita il trasferimento, dopo l&#39;intubazione, alla ventilazione meccanica.) Tuttavia, la regolazione dei dosaggi può essere necessario in base alla risposta anestetico in consultazione con il veterinario istituzionale.) </li><li> Indurre l&#39;anestesia nei topi con il 3,5% isoflurano / ossigeno in una camera di induzione per 90-120 sec. </li><li> Osservare attentamente la frequenza respiratoria. Si dovrebbe rallentare progressivamente a non meno di 45 bpm. </li></ol></li></ol> 2. Preparazione per l&#39;intubazione <ol><li> Rimuovere il mouse dalla camera di induzione e Scruff ermeticamente. </li><li> Utilizzare imbottiti pinza sottile a gently estendere la lingua dalla bocca. </li><li> Mantenere l&#39;estensione della lingua tenendo la lingua tra due dita e applicando la forza gentile. </li><li> Estrarre il mouse sulla speculum del otoscopio con un movimento verticale. </li><li> Guardare attraverso l&#39;oculare del otoscopio mentre scruffing strettamente e tirare il mouse verso l&#39;alto delicatamente la lingua e la collottola. </li><li> Guardate attentamente per le corde vocali. Essi dovrebbero essere facilmente visibile in questo momento. Il aditus laryngis (la struttura dell&#39;apertura laringeo) dovrebbe essere relativamente bianco. Dovrebbe esserci movimento delle cordicelle con ogni respiro. Se i cavi non si muovono o sono scarsamente visualizzate, ruotare leggermente l&#39;animale e iperestendersi delicatamente il collo. </li><li> Con la mano dominante, tenere il 20 G, 1 a catetere, con una lunghezza di 1 cm dalla tubazione PE10 estendentesi attraverso la punta del catetere, come una matita e inserirlo nel lato della speculum. Il tubo PE serve come uno stiletto o bougie. </li><li> Dirigere il tubi PE10ng (mandrino) attraverso le corde vocali e far avanzare il catetere G 20 (tubo endotracheale) sopra il tubo PE finché il mozzo è a livello dell&#39;incisivo inferiore. Rimuovi questo stiletto in fretta. </li><li> Estrarre delicatamente l&#39;animale fuori della speculum e verificare la posizione del tubo ponendo l&#39;animale in un ventilatore meccanico con continua 2% isoflurano per mantenere l&#39;anestesia generale tutto l&#39;esperimento. Visualizza aria espirata (bolle) passando attraverso una trappola PEEP per confermare l&#39;intubazione. Anche se l&#39;intubazione esofagea può causare alcune bolle, non sarà così pronunciati o coerente con intubazione endotracheale. Inoltre, osservare un tracciato pressione delle vie aeree per le deviazioni negative (Figura 1). Questi confermano il corretto posizionamento del tubo. In alternativa, mettere una piccola quantità di acqua nel tubo IV e collegarlo al tubo ET. Verifica circolazione con il mouse con respirazione 2. Nel caso di intubazione esofagea, il pressione tracciamento rivelerà pressioni significativamente più elevati e senza deviazioni negative. Sebbene end-tidal CO 2 sarebbe utile, tecnicamente questo sarebbe molto difficile visti i piccoli volumi correnti (~ 200 microlitri) e l&#39;attrezzatura per fare questo sarebbe molto costoso. Le semplici tecniche descritte sono pienamente sufficienti e molto meno costoso. Se l&#39;anestesia isoflurano non è disponibile, tutte le procedure possono essere effettuate utilizzando la ketamina 80-120 mg / kg in combinazione con xylazina 10-20 mg / kg per l&#39;anestesia generale. </li></ol> 3. Tecnica alternativa: laringoscopia diretta con la Tecnica otoscopio è facilmente utilizzate per altri scopi, principalmente per la diretta instillazione di sostanze di studio nei polmoni. <ol><li> Indurre anestesia negli animali con isoflurano solo per questa procedura al 3,5% per 90-120 secondi nella camera di induzione. </li><li> Scruff l&#39;animale saldamente alla base del cranio e prolungare la lingua delicatamentecon una pinza sottile. </li><li> Tenendo la lingua con delicatezza, tirare l&#39;animale verso l&#39;alto della speculum (non modificato) fino a quando l&#39;animale non può essere tirato ulteriormente. </li><li> Le corde vocali possono essere visualizzate più frequentemente questa tecnica da sola, ma ruotare l&#39;animale e iper-esteso il collo per portarli in piena vista. </li><li> Anticipo di una pipetta di caricamento del gel contenente il instillate alla glottide e infondere il liquido. Poiché la speculum fa un sigillo con nell&#39;ipofaringe il mouse aspirare qualsiasi liquido residuo che non passa attraverso le corde. Questo è facilmente verificabile dalla rhonchorous suoni il mouse ora fa quando il respiro fino a quando il liquido è distribuito pienamente nei polmoni. </li><li> In alternativa, collegare il tubo PE10 a una siringa da 0,5 ml contenente 50 ml di fluido con un bolo aria dietro il liquido. Far avanzare il tubo PE attentamente le corde vocali di 0,5 centimetri e scaricare il contenuto nelle vie aeree lentamente. Tuttavia, trauma occasionale alle vie aeree inferiori si verifica ucantare questa tecnica senza migliore consegna del campione. </li></ol>

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</ol>

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari in competizione.

In questo rapporto descriviamo una tecnica semplice e affidabile per intubare i topi che è traumatica e può essere utilizzato più volte nello stesso animale. Questa tecnica può essere realizzato con semplice laboratorio o dispositivo medico che può essere acquistato per una somma modesta. La tecnica di laringoscopia diretta, originalmente riportata da Hastings e colleghi 4, può anche essere utilizzato per una varietà di scopi, ma principalmente per fornire precisione sostanze in esame per il tratto respirator...

Il topo di laboratorio ha soppiantato quasi tutte le specie di mammiferi come il modello principale della biologia e patobiologia. Il topo di laboratorio è la più piccola specie di mammiferi che è stato chiaramente e ampiamente dimostrato di essere di valore come modello di malattia umana e si è dimostrato prezioso anticipi della nostra comprensione della biologia umana e della malattia. Il tempo di gestazione breve e un costo sostanzialmente inferiore ha permesso lo sviluppo e lo studio di topi nulli e transgenici come strumento comune nella ricerca biomedica. Tuttavia, la dimensione del topo di laboratorio media (20-25 g) ha limitato il loro studio in studi basati fisiologicamente o chirurgicamente e, di conseguenza, alcuni ricercatori studiano grandi mammiferi. Un ostacolo all&#39;utilizzo di topi in questi studi è la difficoltà incontrata con tecniche di intubazione che consentano misurazioni fisiologiche o estesi interventi chirurgici in anestesia profonda. Tracheostomia 1 è stato utilizzato come standard di TEchnique invece di intubazione per la maggiore facilità di esecuzione di questa tecnica e modesta abilità richiesto. Tuttavia, tracheostomia non è favorevole agli studi cronici o di recupero di chirurgia; quindi, è limitato agli esperimenti acuti. Tracheostomia può anche essere una variabile di confusione nella ricerca in cui l&#39;infiammazione o riflessi fisiologici sensibili sono importanti. Il nostro laboratorio ha provato più delle tecniche descritte da altri ricercatori e trovato inadeguate per una serie di motivi. Tracheostomia è troppo traumatico e induce sanguinamento e infiammazione delle vie aeree. Molto più problematico è che non possono in pratica essere ripetuto. Molte tecniche relativamente invasive che richiedono un modesto investimento in attrezzature non sono sufficientemente affidabili. Altre tecniche richiedono costose attrezzature che è difficile giustificare senza sapere se l&#39;apparecchiatura funziona in una specifica applicazione. Così, abbiamo cercato di sviluppare una tecnica non traumatica che ha richiesto non più than un modesto investimento in attrezzature specializzate, potrebbe essere realizzato in modo rapido e affidabile, potrebbe essere ripetuta in modelli cronici, e potrebbe essere utilizzata in un gran numero di animali. Qui riportiamo tale tecnica.

<table><tbody><tr><td>Testa per otoscopio operativo</td><td>Welch Allyn</td><td>21700</td><td>$188.98</td></tr><tr><td>Manico per otoscopio</td><td>Welch Allyn</td><td>71000</td><td>$112.20</td></tr><tr><td>Speculum riutilizzabile</td><td>Welch Allyn</td><td>22002</td><td>$3.98</td></tr><tr><td>Pinze fini</td><td>Miltex</td><td>18-779</td><td>$107.18</td></tr><tr><td>Piccolo supporto a morsetto per contenere l'otoscopio</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vaporizzatore di isoflurano (circuito multiplo con trattamento dei gas di scarico sottovuoto)</td><td>Summit Medical</td><td></td><td>$ 3.000</td></tr><tr><td>Flexivent (ventilatore per animali)</td><td>SCIREQ</td><td></td><td>$ 35.000</td></tr><tr><td>Catetere endovenoso (20 G, 1 pollice)</td><td>BD</td><td>381233</td><td>$ 9,62</td></tr><tr><td>Tubo in polietilene (PE10) (0,011 in ID, 0,024 in OD) 100 piedi</td><td>Intramedic, Clay-Adams</td><td>427401</td><td>$ 115,70</td></tr><tr><td>Ketamina 100 mg / ml (10 ml bottiglia)</td><td>Butler</td><td>23061</td><td>$10.00</td></tr><tr><td>Xilazina (flacone da 100 ml)</td><td>Vedco</td><td>24105</td><td>$20.00</td></tr><tr><td>Isoflurano (flacone da 250 ml)</td><td></td><td></td><td>$15.00</td></tr><tr><td>Vecuronio bromuro 10 mg/10 ml</td><td>Pfizer</td><td>NDC 0069-0094-01</td><td>$15.00</td></tr></tbody></table>

intubazione endotracheale in mouse<em&gt; via</em&gt; laringoscopia diretta usando un otoscopio

Endotracheal Intubation in Mice via Direct Laryngoscopy Using an Otoscope

Mice, sia di tipo selvatico e transgenici, sono il modello mammiferi principale nella ricerca biomedica attualmente. Intubazione e ventilazione meccanica sono necessari per gli esperimenti sugli animali integrali che richiedono un intervento chirurgico in anestesia profonde o misure della funzione polmonare. Tracheostomia è stato lo standard per intubazione delle vie aeree in questi topi per consentire la ventilazione meccanica. Intubazione orotracheale è stata riportata, ma non è stato usato con successo in molti studi per la difficoltà tecnica sostanziale o un requisito di apparecchiature altamente specializzate e costose. Qui riportiamo una tecnica di laringoscopia diretta utilizzando un otoscopio dotato di uno speculum 2,0 mm utilizzando un catetere venoso 20 G come un tubo endotracheale. Abbiamo utilizzato questa tecnica ampiamente e affidabile per intubare e condurre accurate valutazioni della funzione polmonare nei topi. Questa tecnica si è dimostrato sicuro, con essenzialmente senza perdita degli animali in mani esperte. Inoltre, questa tecnicapuò essere utilizzato per studi ripetuti di topi in modelli cronici.

Intubazione con la tecnica di cui sopra è affidabile e veloce. Il posizionamento appropriato del tubo endotracheale è più facilmente verificato osservando gorgogliare gas espirato dal espiratorio sommersa del del circuito di ventilazione (di solito in una trappola PEEP) e deviazioni negative su una pressione delle vie aeree tracciamento (Figura 1). Le deviazioni negative sulla pressione delle vie aeree tracciato sono i più affidabili. Altri hanno usato circolazione di una piccola goccia di fluido nel tu...

Abbiamo sviluppato un metodo semplice, affidabile e relativamente poco costoso per l&#39;intubazione endotracheale nei topi mediante laringoscopia diretta con un otoscopio con un speculum 2,0 millimetri. Questa tecnica è atraumatica e può essere utilizzato per misurazioni ripetute in esperimenti cronici. Troviamo superiore a tracheostomia o riportato in precedenza tecniche non chirurgiche.

Intubazione endotracheale in Mouse<em&gt; Via</em&gt; Laringoscopia diretta usando un otoscopio

Mice, both wildtype and transgenic, are the principal mammalian model in biomedical research currently. Intubation and mechanical ventilation are ...

L'obiettivo generale di questa procedura è intubare in modo affidabile i topi per via orale. Questo viene raggiunto posizionando innanzitutto con attenzione l'animale anestetizzato nell'orientamento corretto. Successivamente, con l'otoscopio, si visualizzano le corde vocali e si introduce il tubo endotracheale in gola utilizzando un filo guida.Successivamente, il mouse intubato viene posizionato su un ventilatore per verificare il corretto posizionamento del tubo. In alternativa, l'otoscopio può essere utilizzato per somministrare sostanze di prova al polmone. Infine, è possibile misurare con precisione le relazioni pressione-volume nel polmone.I principali vantaggi di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti, come la tracheostomia, sono che è rapida, non provoca sanguinamento, non causa traumi e può essere ripetuta. La dimostrazione visiva di questa tecnica è fondamentale poiché i passaggi dell'intubazione sono difficili da apprendere e le istruzioni scritte risultano poco chiare senza una contemporanea visualizzazione dell'anatomia e della meccanica dell'intubazione. Per eseguire un'intubazione endotrachea utilizzando un otoscopio, prima afferrare la nuca di un topo anestetizz

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Ripetute misurazioni della fisiologia respiratoria e roditori di campionamento di cellule infiammatorie delle vie aeree sono auspicabili, ma generalmente non realizzabili. Qui si descrive un metodo ripetibile per l'intubazione per via orale nei topi che permette misurazioni ripetute di iperreattività delle vie aeree e il campionamento di cellule infiammatorie delle vie aeree.

Un reversibile, metodo non invasivo per le misure di resistenza delle vie aeree e liquido di lavaggio broncoalveolare di campionamento nei topi

Il presente documento descrive un metodo striaghforward ed efficiente intubazione topi per le misure di funzionalità polmonare o instillazione polmonare, che consente ai topi di recuperare e da studiare in tempi successivi. La procedura prevede una fonte economica di luce a fibre ottiche che illumina direttamente la trachea.

Un metodo semplice di intubazione mouse polmone

L'uso di un modello che simula la condizione di malattie polmonari nell'uomo è fondamentale per lo studio della fisiopatologia e / o eziologia di una particolare malattia e per lo sviluppo di un intervento terapeutico. Ecco un metodo non invasivo intubazione endotracheale in grado di fornire direttamente i materiali esogeni ai polmoni del mouse è presentato.

Non invasivo intratracheale intubazione per studiare la Patologia e Fisiologia del mouse polmone

Questo articolo presenta un metodo rapido e semplice per l'amministrazione bleomicina direttamente nella trachea del mouse tramite intubazione. I principali vantaggi di questo metodo sono che è altamente riproducibile, facile da padroneggiare, e non richiede attrezzature specializzate o tempi di recupero lunghi.

Un metodo migliore per Rapid intubazione della trachea nei topi

Intubazione endotracheale in conigli è impegnativo a causa della loro anatomia insolita. Qui presentiamo una tecnica per diretto intubazione della trachea utilizzando un catetere in polipropilene come guida. Questo metodo utilizza forniture relativamente poco costosi, richiede un addestramento minimo e può essere facilmente eseguito in qualunque regolazione clinica.

Intubazione endotracheale di conigli utilizzando un catetere guida in polipropilene

L'obiettivo di questo articolo è quello di descrivere un metodo raffinato di intubazione del topo di laboratorio. Il metodo non è invasivo e, quindi, ideale per studi che richiedono il monitoraggio seriale della funzione respiratoria e/o l'instillazione di trattamenti nel polmone.

Intubazione orotrachea ripetuta nei topi

Un modello chirurgico murino per creare lesioni da ischemia polmonare sinistra (IR) mantenendo la ventilazione ed evitando l'ipossia.

Un modello murino di intubazione orotracheale e chirurgia ventilata di ischemia polmonare riperfusione

Qui, proponiamo un protocollo per la somministrazione di lipopolisaccaridi intratracheali (LPS) tramite intubazione endotracheale orofaringea non invasiva. Questo metodo riduce al minimo il trauma della procedura chirurgica per l'animale e fornisce accuratamente LPS alla trachea e quindi ai polmoni.

Instillazione di lipopolisaccaridi intratracheali non invasivi nei topi

Questo protocollo descrive un approccio di laringoscopia transorale seriale per topi e ratti che consente l'imaging video ravvicinato e senza ostacoli della laringe durante la respirazione e la deglutizione utilizzando un regime anestetico ottimizzato e tecniche di manipolazione endoscopica finemente sintonizzate.

Laringoscopia murina minimamente invasiva per l'imaging ravvicinato del movimento laringeo durante la respirazione e la deglutizione

Qui introduciamo una procedura standardizzata per l'intubazione endotracheale tramite tracheotomia seguita da toracotomia nei ratti, volta a migliorare la precisione e la riproducibilità delle applicazioni non di sopravvivenza che richiedono ventilazione invasiva ed esposizione di organi toracici in modelli di ratto in vivo .

Intubazione endotracheale tramite tracheotomia e successiva toracotomia nei ratti per applicazioni non di sopravvivenza

Questo protocollo mostra come il posizionamento ottimale di un topo e l'inserimento transorale di un otoscopio basato su telecamera consentano la visualizzazione della glottide, l'intubazione rapida con un trauma tissutale minimo e l'erogazione costante di liquidi ai polmoni.

Metodologia migliorata per l'erogazione di liquidi al polmone di topo: intubazione con un otoscopio consumer

Impara l'intubazione endotracheale nei topi tramite laringoscopia diretta con otoscopio. Questa tecnica non invasiva consente misurazioni ripetute in esperimenti cronici e offre un'alternativa affidabile alla tracheotomia.

Intubazione endotracheale in Mouse

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