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Biology

Angiogenesis 연구에 최적화된 섬유소 젤 비드 분석

Published: April 29, 2007 doi: 10.3791/186

Summary

이 동영상은 체외의 angiogenesis 분석에의 프로토콜을 보여줍니다 angiogenesis의 recapitulates 여러 단계의 것을. 시간 저속 돋아의 이미지, 루멘 형성, 분기 및 문합 - angiogenesis의 주요 기능은 - 표시됩니다.

Abstract

Angiogenesis는 angiogenic 자극에 대응, 새로운 선박은 기존 vasculature에서 만들어지는 복잡한 다단계 프로세스입니다. 이러한 단계는 다음과 같습니다 세포외 기질, 코드로 EC의 정렬에 내피 세포의 지하 막, 증식 및 마이 그 레이션 (돋아) (EC)의 저하, 분기, 루멘 형성, 문합, 새로운 지하 막 형성합니다. 시험 관내 assays의 많은이 과정을 연구하기 위해 개발하지만, 대부분의 전용 angiogenesis의 특정 단계를 모방하고, morphologically assays 내에 혈관이 자주 생체내에서 선박과 유사하지되었습니다. Nehls 및 Drenckhahn로 이전 작업을 바탕으로, 우리는 인간 제대 정맥 EC와 섬유아 세포를 이용 체외의 angiogenesis 분석에 최적화했습니다. 이 모델 recapitulates는 angiogenesis의 핵심 초기 단계의 모든하고, 중요한 혈관 편광 EC 둘러싸인 세포 특허 루멘을 표시합니다. EC는 cytodex의 microcarriers에 코팅 및 섬유소 젤에 포함됩니다. 섬유아 세포들은 EC의 구슬의 표면에서 돋아 촉진 필요한 가용성 요소를 제공하는 젤 위에 계층입니다. 며칠 후, 수많은 혈관은 쉽게 위상 대조 및 시간 경과 현미경 하에서 관찰 수있는 선물입니다. 이 동영상이 문화를 설정의 주요 단계를 보여줍니다.

Protocol

준비 CELLS

  1. FBS / 펜 - Strep (1:100) 1~2일 구슬선 전에 M199/10 %에 HUVEC와 섬유아 세포를 가져와.
  2. 섬유아 세포에 대한 퍼가기 전에 HUVEC와 하루 구슬 장식하기 전에 EGM - 2 (Clonetics) 하루 매체를 전환합니다.
  3. ~ 400 HUVEC 당 비드의 농도가 필요합니다.
  4. 물론 당 20,000 섬유아 세포이 필요합니다.

HUVEC있는 비즈 코팅 - DAY -1

  1. HUVEC을 Trypsinize.
  2. (원심 분리기하지 마십시오!) 정착 구슬을 허용합니다. 뜨는을 대기음 따뜻한 EGM - 2 배지 1 ML에 간단히 비즈 씻으십시오.
  3. 외과 튜브에 따뜻한 EGM - 2 배지의 1.5 ML에 혼합 2,500 구슬 w / 1X10 6 HUVEC. 인큐베이터에 수직으로 그것을 놓으십시오. (필요한 경우 ~ 10 우물가. 최대 규모 이것만으로도 충분하다)
  4. 관 매 20 분 흔들어, 37 ° C에서 4 시간 동안은 부화. (좋은 코팅 돋아 중요합니다.)
  5. 사시간 후, EGM - 2의 5mL의 T25 플라스크에 코팅 구슬을 전송 및 O / N.를 떠나

DAY 0 - 섬유소 젤 IN 코팅 구슬을 포함

  1. 2.0 MG / ML 피브리노겐 솔루션 (조리법 섹션을 참조하십시오) 준비합니다.
  2. 피브리노겐 솔루션 0.15 단위 / aprotinin의 ML을 추가합니다.
  3. 15mL 원뿔 관에 코팅 구슬을 전송하고 구슬 좀 쉬라 구. EGM - 2의 1mL와 1.5mL 원심 튜브로 전송에 Resuspend 구슬.
  4. 천천히 위아래 pipeting하여 EGM - 2의 1mL와 배 비즈 씻으십시오.
  5. coverslip에 구슬을 카운트하고 ~ 500 구슬 / ML의 농도에서 피브리노겐 용액에 resuspend.
  6. 각 잘하는 0.625 단위 / 트롬빈의 ML을 추가합니다.
  7. 24 - 잘 접시의 각각 잘 수있는 피브리노겐 / 비드 정지의 0.5 ML를 추가합니다.

    각 잘 대해 피펫 팁을 변경합니다!

  8. 피펫 팁로 가볍게 ~ 4-5 번 아래로 가서 의해 트롬빈과 섬유소를 섞는다. 큰 거품을하지 않도록주의하십시오.
  9. 후드 5 분 접시를 남겨, 다음 응고를 생성하기 위해 10-15 분 37 ° C - 배양기에 놓으십시오.
  10. 응고를 기다리는 동안, 섬유아 세포를 trypsinize.
  11. 1 EGM - 2의 ML 당 잘 현명한 드롭을 추가합니다.
  12. 물론 당 20,000 세포의 농도에서 섬유소 젤 위에 시드 섬유아 세포.

참고 :

일반적으로 섬유소 젤이 형성되면, 당신은 겔에 작은 거품을 볼 수 있습니다. 걱정하지 마세요, 그들은 3-4 일 내에 사라집니다.

다른 모든 일 즉, 일 2, 4, 6, 등 미디어를 변경 ...

3 일 또는 4에 의해 당신이 돋아보고 시작합니다.

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Discussion

시험 관내 angiogenesis의 assays에서 (3D) 입체은 2D 문화를 사용하여 얻을 수있는 것보다 생체내의 실제 환경에 훨씬 가까운 모델을 제공 강력히 주장하고있다. 그것은 우수한 3D 시스템은 재현성 수 있으며, angiogenesis의 주요 단계의 몇몇을 모방 수있을 것이 분명합니다. 몇 가지 이전 3D assays가 개발되었습니다 있지만, 이러한 많은도 microvascular 세포를 얻기 위해 열심히 사용, 아니면 단계의 일부를 요점을 되풀이하다. 이 비디오에서는, 우리는 설명하고 혈관 연구에 쉽게 얻을 수 있고 가장 일반적으로 사용되는 EC 인간의 배꼽 정맥 EC를 이용 체외의 angiogenesis 분석의 최적화를 수행합니다. 분석은, 며칠의 과정을 통해, 지속적으로 편광 EC 둘러싸인 명확 특허 세포 루멘 긴 선박을 재현. 선박의 EC 분기와 퓨전 (문합)의 나중 단계도 관찰됩니다. 중요한 것은,이 문화의 HUVEC이 돋아, 마이 그 레이션, 정렬, 확산, 튜브 형성, 분기 및 문합 포함하여 생체내이나 체외에서 중, microvascular EC와 함께 볼 수있는 형태학의 모든 변경 사항을 받다. 에 병렬로 HUVEC 변화의 유전자 발현 프로파일 더 밀접하게 microvascular EC의 일치합니다. 결론적으로, 우리는 체외의 angiogenesis 모델에 대한 최적화된 프로토콜을 제시 것이이 과정의 recapitulates 몇 가지 중요한 단계.

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Materials

Name Type Company Catalog Number Comments
Cytodex-3 Beads Reagent Amersham 17-0485-01 10 g/bottle. 1.0.5 g of dry beads are hydrated and swollen in 50 mL PBS (pH = 7.4) for at least 3 h at RT. Use a 50 mL tube and place it on the rocker.2.Let the beads settle down (~ 15 min). Discard the supernatant and wash the beads for a few minutes in fresh PBS (50 mL).3.Discard the PBS and replace with fresh PBS:25 mL -> 20 mg/mL => 60000 beads/mL or 50 mL -> 10 mg/mL => 30,000 beads/ mL4.Place the bead suspension in a siliconized glass bottle (Windshield Wiper or Sigmacote).5.Sterilize the beads by autoclaving for 15 min at 115°C.6.Store it at 4°C.
Aprotinin Reagent Sigma-Aldrich A-1153 10 mg/bottle. Reconstitute lyophilized aprotinin at 4 U/mL in DI water. Sterile filter. Make aliquots of 1 mL each. Store at -20 °C.
Fibrinogen Type I Reagent Sigma-Aldrich F-8630 1 g. Dissolve 2 mg/mL fibrinogen in DPBSNote clottable protein % and adjust accordingly Heat in a 37 °C-water bath to dissolve the fibrinogen. Mix by inverting the tube. Do not vortex.Sterile filter through 0.22 um
Thrombin Reagent Sigma-Aldrich T-3399 22 mg = 1,000 units. Reconstitute in sterile water at 50 U/mL. Make aliquots of 0.5 mL each. Store at -20 °C.

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References

  1. Nehls, V., Drenckhahn, D. A microcarrier-based cocultivation system for the investigation of factors and cells involved in angiogenesis in three-dimensional fibrin matrices in vitro. Histochem Cell Biol. 104, 459-466 (1995).
  2. Nehls, V., Drenckhahn, D. A novel, microcarrier-based in vitro assay for rapid and reliable quantification of three-dimensional cell migration and angiogenesis. Microvasc Res. 50, 311-322 (1995).

Tags

세포 생물학 제 3 angiogenesis 섬유소 내피에 체외 섬유아 세포
Angiogenesis 연구에 최적화된 섬유소 젤 비드 분석
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Cite this Article

Nakatsu, M. N., Davis, J., Hughes,More

Nakatsu, M. N., Davis, J., Hughes, C. C. Optimized Fibrin Gel Bead Assay for the Study of Angiogenesis. J. Vis. Exp. (3), e186, doi:10.3791/186 (2007).

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