Summary
이 실험의 주된 목적은 일차 감각 뉴런은 동물에 대한 고유 정보를 공동 움직임과 위치 정보를 전달 방법을 이해하는 것입니다. 이 보고서의 추가 목적은 해부 현미경으로 해부와 뉴런의보고에 의해 준비의 해부 존재합니다.
Abstract
본 실험의 주요 목적은 동물에 대한 고유 정보를 공동 움직임과 위치의 기본 감각 신경 전달 정보를 입증하는 것입니다. 본 실험의 추가 목적은 해부 현미경 얼룩, 해부 및 신경 및 감각 구조의보고에 의해 준비 해부학을 배울 것입니다. 이것은 공동 수용체의 오르간과 얼룩 기술에서 전기 활동을 기록하는 기본 neurophysiological 장비를 사용하여 수행됩니다. 크레이 피쉬의 근육 수용체 기관 (MRO) 시스템 electrophysiological 레코딩에 대한 더 쉽게 액세스할 수있는 비교 모델로 봉사 에이즈 포유류의 intrafusal 근육 스핀들에 유사합니다. 또한, 이들은 준비 중 식별 감각 뉴런 수 있습니다. 준비는 학생 실험실 연습에 대한 의무가 있습니다 시간 동안 최소한의 호수에 가능한 것입니다. MRO는 움직임과 시스템에서 변경될 수 있습니다 증가와 함께 정적 위치의 동적 신호 modulatory 작업 및 통합의 사이트에 흥미로운 질문을 장려 neuromodulation 쉽습니다.
Protocol
1) 소개
Proprioceptors가 공동 위치, 방향, 속도, 그리고 근육 스트레칭을 감지 뉴런 있습니다. proprioceptors 대신 외부 세계에서 본문 내에 interoceptors 및 감각 자극 때문에 Proprioception는 독특한 감각 양상이다.
척추 시스템에서는, 그것은 공동과 긴장 수용체의 많은 총 고유 정보를 검색할 필요가 없다는 것을 나타납니다. 근육 섬유 annulospiral 및 flowerspray (감각 신경 엔딩) 수용체는 proprioception에 필요한 두 가지 중요한 수용체 그룹으로 절제뿐만 아니라 진동과 마취 연구에 의해 표시되었습니다 (버지스 외. 리뷰, 1982 용). 그러나, 그것은 움직임의 미세 제어에 사용되는 등 관절에있는 것과 다른 수용체, 수집한 중복 정보가있다는 것을 주목할 수 있습니다. 척추 동물과 같은 Arthropods은 관절 부속되어 있습니다. 따라서 척추 동물에 대한 설명 proprioceptors가 arthropod 팔다리와 관절에서 대응 것은 놀라운 일이 아니다.
게는에 chordotonal 장기의 해부 학적 배열은 기능에 따라 각 신경 세포의 분석을 수 있습니다. 또한, 개발 질문은 동물이 성장함에 따라 해결이나 동물이 사지 (쿠퍼와 고빈드, 1991; 하트먼와 쿠퍼, 1993)를 다시 생성하면됩니다. 게는의 일부 공동 chordotonal 기관 일차 감각 뉴런의 수백을 포함 (쿠퍼, 2008) 이러한 뉴런은 공동의 움직임과 위치의 범위 분류의 측면을 모니터링합니다. 공동 움직임과 위치를 모니터링 덜 복잡 고유 시스템 왕새우의 복부에있는 근육 수용체 기관 (MROs) (; 맥카시와 맥밀란, 1995 에커트, 1961a, B)입니다. 크레이 피쉬 복부 MROs의 mechanoreceptors는 등급 수용체 잠재력에 근육에 포함된 감각 엔딩,의 스트레치 자극을 transduce. 가능성이 임계값을 초과하면, 액션 잠재력은 축삭 기지에서 얻을 수 있습니다. 이것은 신경 생물학에서 "급증 개시의 사이트"로 정의되고 알려진 이유입니다. 이 시스템에서 세포 기관은 모니터 근육에 가까운 동격에 있습니다. 스트레치 수용체의 별개의 두 가지 유형이 감각 시스템에 존재 : 천천히 적응하고 빠르게 - 적응 수용체. 활동은 기계 스트레치의 강도에 따라 달라집니다. 크레이 피쉬의 MRO 시스템은 포유류의 intrafusal 근육 스핀들에 유사하고 근육도 포유류에 intrafusal 근육 알려져으로 근육의 긴장 자연을 유지하기 위해 efferent 제어할 수 있습니다.
포유류의 근육 스핀들 감각 뉴런 때문에 감각 엔딩의 작은 자연 electrophysiologically 조사를 도전하고 있습니다. 그것은 그들의 주변 엔딩에 지느러미 루트 신경절에 세포 기관의 위치를 추적하는 것도 어렵습니다. 비교에서, 왕새우의 MRO의 뉴런은 장기적인 레코딩을위한 세포 및 세포내 전극에 대해 쉽게 액세스할 수 있습니다. MRO 감각 뉴런의 세포 기관은 (직경 50-100 μm의) 상대적으로 큽니다. . 에드워즈 외, 1981,,. Erxleben, 1989 감각 뉴런은 뉴런 기능에 채널, 감각 뉴런의 이온 흐름, 채널 유통, 그리고 밀도 (브라운 외, 1978 "스트레칭 활성화"어떻게 대응의 모델 역할을했습니다; 사냥 외, 1978;. Purali과 Rydqvist, 1992; Rydqvist 및 Purali, 1991; Rydqvist 및 Swerup, 1991; 쿠퍼 외, 2003).. 한 세그먼트의 MRO에서 감각 입력의 통합은 다른 인접한 세그먼트 (에커트, 1961a, b)는 영향을 미칠 수 있습니다. 에서 감각 입력의 변조에 대한 몇 가지 보고서가있다 MRO (Pasztor과 맥밀란, 1990;. 쿠퍼 외, 2003). 신경 회로의 변조는 기초 과학의 미래를 수사 풍부한 지역이며 준비는 척추 동물의 척수 코드에 잠재적으로, 미래의 애플 리케이션을위한 포유류의 기초로 검색할 수 있습니다 (로시그놀 외, 2001, 2002;. Donnelan 2009)
1.1) 학습 결과
이 실험실 실험에서, 하나는 왕새우의 복부를 절개하다와 관련된 해부 및 MRO의 생리를 배우게됩니다. 하나는 세포외 레코딩로의 연결 작업을 모니터링하는 방법을 배울 수 및 일반 electrophysiological 장비를 사용할 수 있습니다. 하나는 그래프와 데이터가 제공 감각 자극에 따라 획득 해석됩니다. 감각 자극이 정적 위치뿐만 아니라 모니터링되는 세그먼트의 역동적인 움직임의 범위 것입니다. 하나는이 감각 시스템 및 그 중요성에 proprioception의 개념을 해결합니다. 감각 적응은 일련의 실험에서 관찰됩니다. 의미뿐만 아니라 감각 adaption 뒤에 잠재적인 메커니즘은 학생들이 해결될 것입니다.
2) 방법
2.1) 자료
2.2) 설치
그림 1 : 장치가 설정
- 패러데이 케이지를 설치합니다. 현미경, 높은 강도 조명기, micromanipulator 및 생리 욕조는 모두 케이지 (패러데이 케이지가 전기 녹음에 영향을 줄 수 있습니다 외부 전기 분야를 차단하는 데 사용되는) 안에 설치됩니다.
- 이것은 현미경의 무대를 바라보고있는 위치에 현미경을 설치합니다.
- 편리한 위치에 높은 강도 조명기를 놓습니다.
- Sylgard 접시에 크레이 피쉬 호수를 사용하여 호수 목욕을 준비하고 (해부 왕새우의 복부가 배치됩니다 곳입니다) 현미경으로 그것을 놓으십시오.
- 흡입 전극이 호수 목욕탕에 쉽게 접근할 수있는 위치에 micromanipulator를 놓습니다.
- 흡입관은 그것은 흡입 전극 내부의 은색 철사와 접촉에 생리 때까지. 전극의 끝부분에 가까운 흡입 전극의 컷 - 측면에 다른 전선을 마련, 두 전선이 호수 목욕탕 접촉을 받게 될 것입니다.
- 파워 랩 26T로 AC / DC 차동 증폭기 (앰프)를 연결합니다. PowerLab 26T에 입력 1에서 앰프의 출력에 적절한 코드를 연결하여이 작업을 수행합니다.
- 증폭기 악기 컨트롤은 다음과 같은 설정을 설정해야합니다 :
- 하이 패스 - DC
- 노치 필터 - OFF
- 패스 - 20kHz 낮음
- 용량 컴프 .- 반시계
- DC 오프셋 노프 - 시계 반대 파인 물론
- DC 오프셋 (+ OFF -) - OFF
- 게인 노브 - 50
- 입력 (모노 비교 GND) - 비교
- 모드 (STIM - GATE - REC) - REC
- ΩTEST - OFF
- 증폭기 악기 컨트롤은 다음과 같은 설정을 설정해야합니다 :
- '입력 프로브'앰프에에 머리 단계를 연결합니다.
- 흡입 전극에서 머리 단계로 전기 전선을 연결합니다. 와이어가 검은 중간에 녹색이 (지상), (맨 아래에있는 부정, 왼쪽 상단에 (긍정적인) 빨간색과 연결되어 있어야합니다. 이것은 그림 2에 표시됩니다. 접지 와이어가 방금 살린 욕탕에 넣어 수 있습니다.
그림 2 : 헤드 단계 구성 - 이제 노트북에 PowerLab의 26T에서 USB 코드를 연결합니다. 앰프와 PowerLab26T 모두에 연결되어 있고 컴퓨터에 LabChart7을 열기 전에이 켜져 있는지 확인하십시오.
- LabChart7를 엽니다.
- LabChart 웰컴 센터 상자가 열립니다 나타납니다. 그것을 닫습니다.
- 설정을 클릭하십시오
- 채널 설정을 클릭합니다. 확인을 누르면 1 (상자의 왼쪽 하단)에 채널 번호를 변경합니다.
- 차트의 맨 왼쪽에 2K 약 초당 사이클로 설정합니다. 약 500 200mv로 볼트 (Y 축)을 설정합니다.
- 차트의 오른쪽에 채널 1을 클릭합니다. 입력 앰프를 클릭하십시오. 않도록 설정 : AC 결합, 단일 종단, 그리고 반전 (필요한 경우 신호를 전도), 그리고 안티 - 별칭, 확인합니다.
- 기록 프레스 시작를 시작합니다.
2.3) 해부
- 신체 길이 크레이 피쉬 (Procamarus clarkii) 측정 60-10센티미터는 이미 해부가 시작하기 전에 동물을 마취하기 위해 얼음에 배치해야합니다.
- 한손으로 발톱 뒤에서 anesthetized 왕새우를 잡아. 신속, 눈 소켓에서 양쪽 머리의 중간에 잘라 다음 왕새우 (참고 : 준비에서 혈액이 완료되었을 때 그것이 마르면 때문에 도구를 씻어 쓰는 것입니다)을 참수 형에 처하다.
그림 3 : 왕새우 목베기 - 일단 크레이 피쉬는 복부 측면에 흉부와 복부 (꼬리) 사이 컷, 참수 수 있습니다. 이것은 흉부에서 복부를 분리하기 쉽게한다. 참고 : 왕새우가 남자 경우, styl 잘라에서 복부와 흉부를 분리하기 전에 ETS (남성의 생식 부분). (그림 4A 아래 참조).
그림 4 : 복부의 분리- 복부 내부, 그리고 가위 팁 멀리 측면 경계 잘라 준비에서 가리키는과 가위 중 하나 블레이드를 배치합니다. 반대편에 반복합니다.
그림 5 : 복부의 세로 절개 - 족집게의 끝에서 (# 3) 타고 거리 준비 등의 측면에서 근육과 GI 트랙트 밀어. 근육에 내려와서하지 않도록주의하십시오.
- 꼬리의 복부 측면을 제거하는 (수평쪽으로 측면) 마지막 늑골을 가로질러.
그림 6 : 복부의 복부 부분의 제거 - 크레이 피쉬 호수 (수정 반 Harreveld의 솔루션)의 준비를 등장.
- 현미경 준비 보면서 깊은 신근 중간 근육 (DEM)은 선형 섬유와의 나선으로 꼬인 섬유, 그리고 깊은 신근 측면 근육에 의해 찾을 수 있습니다 (부록 피규어 1 & 2 참조) 구별하실 수 있습니다. 첫 번째와 두 번째 늑골 (그림 7)에서 DEM 근육 사이의 복부의 말초 부분에서 midsagittal 지역의 두 개 핀.
그림 7 : 감각 MRO 신경을 포함한 신경을 기록에 대한 준비를 확보. - 표피 (그림 7) 옆에있는 측면 가장자리에서 실행 기록하는 데 사용됩니다 신경 몫이야. (그것은 준비에 타격 또는 그 운동 신경을 찾으 스포이트를 사용하여 목욕으로 생리를 드롭해야 할 수도 있습니다)
참고 :
각 복부 세그먼트는 오른쪽과 왼쪽 hemisegments에 빠르게 적응하고 천천히 MROs 두 가지가 있습니다. 관련 신경 번들은 표피 옆에있는 측면 가장자리 실행합니다. 이것은 하나의 기록됩니다 신경의 번들입니다. 그들이 DEL1 2 근육 (부록 피규어 1 & 2) 아래에 위치하기 때문에 하나는 MROs을 볼 수 없습니다. 그림 8은 복부를 분리하기 위해 만들 수있는 해부에 대한 개요를 제공합니다.
그림 8 : 복부를 분리하기 위해 일반적인 해부의 개요. A, B, 그리고 C는 왕새우를 해부에 단계 시리즈입니다.
3) 결과
3.1) 녹음
천천히, 그리고 스트레칭과 스트레칭을 유지하면서 MROs를 빠르게 - 적응에서 얻은 일반 응답 그림 9에 그려져 있습니다. 자신의 axons이 동일한 신경 번들에 포함되어있는 본 행사 중 하나는 함께 두 MROs에서 기록됩니다.
그림 9 : 왕새우는 MRO에서 뉴런의 두 가지 유형이 있습니다. 빠른 모터 axons, 그리고 느린 모터 axons에 의해 innervated하는 토닉에 의해 innervated하는 phasic. (A) 토닉 수용체가 자극되면 천천히 자극에 적응 및 행동 잠재력의 꾸준한 발사 패턴을 계속합니다. (B) phasic 수용체가 자극되면 그것은 빠르게 자극에 적응에만 실천 가능성에 대한 간단한 패턴을 발생합니다.
모터와 감각 뉴런을 포함하는 전체 신경은 (그림 10)에서 기록됩니다. 그러나 한은 모터 드라이브가 동물의 복부 신경 코드에서 단절되었다 같은 감각 뉴런을 감지합니다.
그림 10 : 레코딩 전극의 소용돌이로 신경 번들. (A) 자유 신경은 복부를 해부를 통해 떠있는 표시됩니다. (B) 신경 번들과 신경에 의해 플라스틱 흡입 전극 가까이를 설명합니다. (C) segmental 신경이 파란색으로 설명하는 흡입 전극, 정차할 수 있습니다.
하나는 지금 MROs의 전기 반응을 기록하도록 준비가되어 있습니다.
- 절개 범위에서 준비를 놓고 녹음 설정을 준비합니다.
- 전기 욕조 및 공통 접지에 다른 한쪽의 실버 염화물 접지 와이어를 배치하여 목욕을 지상. 참고 : 때때로 이것은 녹음하는 동안 전기 노이즈가 발생할 수 있습니다. 이 경우 목욕을 접지하지 않습니다.
- 기록에 신경을 찾기 위해 현미경을 사용하여
참고 : 대부분의 접근 신경으로 세그먼트를 찾습니다. 신경이 흰색이고, 또는 신경 주위에 호수를 스프레이로 피펫을 사용하여 볼 수 있습니다 가볍게 준비에 불어로. 이것은 이동에 신경을 원인과 식별하기 쉽게합니다. - 신경에 직접 신경을 통해 micromanipulator (그림 10)에서 흡입 전극을 배치 확인되었습니다 이제.
- 부드럽게 전극 (하나는 현미경의 사용으로 전극에 빨려 신경을 볼 수 있습니다)에 신경을 그릴 수있는 주사기를 당겨.
- Labscope7에있는 시작 버튼을 누릅니다.
- 족집게를 사용하면 부드럽게 180-45 90 각도에서 왕새우 꼬리를 이동 아래로. 각기 다른 각도에서 녹음의 차이를 확인합니다. (각도의 위치를 변경하면하면 화면의 관련의 연결 활동으로 각도 변화를 참고해야합니다. 이것은 소프트웨어의 주석 마커를 사용 할 수 있습니다.)
- 아래의 차트에 여러 정적 움직임에 대응 움직임을 기록합니다.
- 십오초에 45 °에서 왕새우의 꼬리를 잡아.
- LabChart7 화면에 정지 푸시. 기록된 마지막 순간 동안 발생 행동 잠재력의 수를 기록합니다.
- 일분 45 °에서 왕새우의 꼬리를 잡아.
- LabChart7 화면에 정지 푸시. 기록된 마지막 순간 동안 발생 행동 잠재력의 수를 기록합니다.
표 1 :
| 각도 (°) | # 3 초 후 일초의 액션 후보의 | # 액션 후보의 일초에 10 초 후 |
| 180 ° (플랫) | ||
| 45 ° | ||
| 90 ° | ||
이러한 실험을 실시하면서 생각하는 질문은 다음과 같습니다 패턴과 공동의 확장과 굴곡 운동 일관성있는 응답이 있습니까? 응답의 무엇이 종류의 다양한 고정 위치에서 텔슨을 달아하거나 누른 evoked입니까? 반복 때 반응은 일치하나요?
관찰된 반응의 종류주의 노트를 확인하십시오. 당신이 당신의 관찰 만족 후 데이터 파일을 저장하여이 활동의 영구적으로 기록합니다. 일단 세그먼트 3에서 만들어진 것을 관찰 만족, 세그먼트 4 또는 5의 신경에서 추가 녹음에 또는 활동을 관찰하기 위해 세그먼트 3의 반대편에 이동합니다.
하나는 neuromodulators (octopamine, 세로토닌, 그리고 proctolin) 또는 다른 물질이나 염분의 이온 자연 개조 구성이 정의된 호수에서 얻은 이들의 다양한 반응을 생산하고 있는지 확인하실 수 있습니다.
메틸렌 블루와 함께 3.2) 스테 이닝
하나는 얼룩 기술로 MROs을 보려면 (부록 참조) 근육을 절개하다 수 있습니다. 준비를 가지고 크레이 피쉬 살린 좀 따라줘. 준비와 부드럽게 소용돌이 몇 분 동안 요리를 메틸렌 블루로 솔루션의 약 5 MLS를 놓습니다. 그런 다음 쓰레기 컨테이너에 여분의 메틸렌 블루 잔하고 준비에 신선한 호수 잔. 이제 MROs를 볼 수있는 근육 해부 시작 현미경으로 접시를 놓습니다. 근육 아래 가위의 한 부분을 배치하고 근육을 따라 잘라로서 당겨 갈비뼈 (midsagittal하는 측면)을 따라 세그먼트를 잘라요. 일단 DEL 1과 2 근육은 근육을 다시 껍질 후 절단하고 근육의 얇은 층 (SEM)을 관찰해야합니다. MROs은 나선형의 근육 (그림 11)에 평행하게 누워 마지막 두 중간 섬유입니다.
"고도는 ="그림 11 "/>
그림 11 : 복부 세그먼트의 개략도는 근육 그룹 (A), 파랑 (B)가 손상 준비에 근육 그룹을 윤곽을 그리다하는 데 도움이 메틸렌과 스테인드 준비를 보여줍니다. 의 설명 영역 확대와 B로 표시됩니다. 회로도의 아래쪽에 그림과 같이 A에서와 같이 B에서 DEL1 2 근육 그룹은 버려야하지 않습니다
학생 운동에 대해 하나는 학생들이 다음과 같은 질문에 대한 답변이 그러하기를 바라는 :
- interoceptive 수용체는 무엇입니까?
- 어떻게 interoceptive 수용체가 proprioceptors 관계합니까?
- 감각 적응하고 어떻게이 연구소에 관련된 수를 설명합니다.
- 범위 분별 (분리)는 무엇입니까? 그것은 무엇을 CNS 할 수 있습니까?
- 신경 세포는 phasic 또는 강장제 타입 신경을 기록인가? 왜?
(힌트 : 당신은 모터 신경 세포 활동이 그대로 동물 이내에 감각 신경 활동과 관련하여 어떻게 생겼 을까 무엇을 가정 것입니다) - 종이 별도의 시트에 AP의 주파수 대 왕새우 꼬리의 각도의 그래프를 그립니다.
- 그래프가 관찰 수도있는 동향을 설명
Discussion
관련 동영상과 텍스트로 제공하는 내용은 충분히 현장에서 왕새우 MRO의 활동을 기록하기 위해서는 주요 단계를 제공합니다. 우리의 보고서 중 하나의 목표는 감각 생리학의 기본 개념을 가르쳐 조사 연구소를 실행 학생이 준비를위한 잠재력에 대한 인식을 높일 수 있습니다. 최소한의 호수에서 목욕을하면서 준비는 생존에 매우 강력하고 있습니다.
MRO 근육의 모터 제어는 식별하지만 전송 및 시냅스 소성뿐만 아니라 흥분성의과 억제 뉴런에 전송 효능의 잠재력에 규정 조사를 위해 빈 공간을 (Elekes와 플로리, 1987a, B, 남아있다, 플로리와 플로리 1955; Kuffler 1954; Kuffler 및 Eyzaguirre 1955 년).
이 준비는 잘 기본 연구뿐만 아니라 실증을 위해 MRO의 생물학을 이해하기 위해 실험 조건의 숫자뿐만 아니라 동물 내에서 운동의 자연 범위를 조사하는 데 사용할 수 있습니다. 에드워즈 외, 1981,,. Purali, 1997; Rydqvist 및 Purali, 1991; Rydqvist 이러한 감각 뉴런의 biophysical 속성 부분에서 유지 자극 (브라운 외, 1978과 신경 활동에 적응 그들의 본성 해결되었습니다 그리고 Swerup, 1991). 그러나 이러한 감각 수용체와 관련 근육 섬유 (쿠퍼 외, 2003.; Pasztor과 맥밀란, 1990)에서 단 몇 보고서 주소 neuromodulation. 보고서 hemolymph에있는 것으로 알려져있는 여러 화합물 중 일부만 처리합니다. 변조기의 많은 모듈 레이터와 칵테일은 MRO 복잡한 (근육과 신경)에 검사로 남아 있습니다. Pasztor과 맥밀란 (1990)는 다양한 갑각류 종 중 MROs의 활동에 neuromodulators 5 - HT 및 octopamine을 검토하고 종의 차이가있다는 것을 지적 않았다. 그들은 MRO의 다른 고정 위치에 세부 사항이 neuromodulators의 장기적인 영향이나 활동에 영향을에 검사하지 않았다.
. Rabin 외, 2009,,. 마리노 외 준비 이런 종류의 모터 유닛 abnormities (파텔 외, 2009과 인간에 대한 재활과 질병 관리에 중요한 신경 처리의 감각 인식과 규제의 기초를 이해하는 데 도움이 있습니다 ., 2010). 입력 및 접근 무척추 준비에 공동 움직임을 감시하기위한 발사 패턴의 다양한 종류의 로봇 / (맥밀란과 파툴로, 2001) 보철물에서 사용할 수 있습니다. 여러 가지 방법으로 도움이 될 수있는이 준비에 대한 답변을 기다리는 많은 질문이있을 수 있습니다.
Disclosures
관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.
Acknowledgments
켄터키 대학, 생물 학부, 학부 연구과 예술 & 과학 대학 사무실에서 지원됩니다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| PowerLab 26T |  ADInstruments |
||
| LabChart 7 | ADI Instruments, Colorado Springs, CO, USA |
References
- Alexandrowicz, J. S. Muscle receptor organs in the abdomen of Homarus vulgaris and Palinurus vulgaris. Q. J. Microsc. Sci. 92, 163-199 (1951).
- Brown, H. M., Ottoson, D., Rydqvist, B. Crayfish stretch receptor: An investigation with voltage-clamp and ion-sensitive electrodes. J. Physiol. 284, 155-179 (1978).
- Burgess, P. R., Wei, J. Y., Clark, F. J., Simon, J. Signaling of kinesthetic information by peripheral sensory receptors. Ann. Rev. Neurosci. 5, 171-187 (1982).
- Cooper, R. L. Proprioceptive neurons of chordotonal organs in the crab, Cancer magister Dana Decapoda, Brachyura). Crustaceana. 81, 447-475 (2008).
- Cooper, R. L., Govind, C. K. Axon composition of the proprioceptive PD nerve during growth and regeneration of lobster claws. J. Exp. Zool. 260, 181-193 (1991).
- Cooper, R. L., Ward, E., Braxton, R., Li, H., Warren, W. M. The effects of serotonin and ecdysone on primary sensory neurons in crayfish. Microscopy Res. Technique. 60, 336-345 (2003).
- Donelan, J. M., McVea, D. A., Pearson, K. G. Force regulation of ankle extensor muscle activity in freely walking cats. J. Neurophysiol. 101, 360-371 (2009).
- Eckert, R. O. Reflex relationships of the abdominal stretch receptors of the crayfish. I. Feedback inhibition of the receptors. J. Cell. Comp. Physiol. 57, 149-162 (1961).
- Eckert, R. O. Reflex relationships of the abdominal stretch receptors of the crayfish. II. Stretch receptor involvement during the swimming reflex. J. Cell. Comp. Physiol. 57, 163-174 (1961).
- Edwards, C., Ottoson, D., Rydqvist, B., Swerup, C. The permeability of the transducer membrane of the crayfish stretch receptor to calcium and other divalent cations. Neurosci. 6, 1455-1460 (1981).
- Elekes, K., Florey, E. New types of synaptic connections in crayfish stretch receptor organs: an electron microscopic study. J. Neurocytol. 16, 613-626 (1987).
- Elekes, K., Florey, E. Immunocytochemical evidence for the GABAergic innervation of the stretch receptor neurons in crayfish. Neurosci. 22, 1111-1122 (1987).
- Erxleben, C. Stretch-activated current through single ion channels in the abdominal stretch receptor organ of the crayfish. J. Gen. Physiol. 94, 1071-1083 (1989).
- Mill, P. J. Crustacean abdominal and thoracic muscle receptor organs. Structure and function of proprioceptors in the invertebrates. , Chapman & Hall. New York. 65-114 (1976).
- Florey, E., Florey, E. Microanatomy of the abdominal stretch receptors of the crayfish Astacus fluviatilis L. J. Gen. Physiol. 39, 69-85 (1955).
- Hartman, H. B., Cooper, R. L. Regeneration and molting effects on the proprioceptor organ in the Dungeness crab, Cancer magister. J. Neurobiol. 25, 461-471 (1994).
- Hunt, C. C., Wilkerson, R. S., Fukami, Y. Ionic basis of the receptor potential in primary endings of mammalian muscle spindles. J. Gen. Physiol. 71, 683-698 (1978).
- Kuffler, S. W. Mechanisms of activation and motor control of stretch receptors in lobster and crayfish. J. Neurophysiol. 17, 558-574 (1954).
- Kuffler, S. W., Eyzaguirre, C. Synaptic inhibition in an isolated nerve cell. J. Gen. Physiol. 39, 155-184 (1955).
- Macmillan, D. L., Patullo, B. W. Insights for robotic design from studies of the control of abdominal position in crayfish. Biol. Bull. 200, 201-205 (2001).
- Marino, B. F., Stucchi, N., Nava, E., Haggard, P., Maravita, A. Distorting the visual size of the hand affects hand pre-shaping during grasping. Exp. Brain Res. , 202-202 (2010).
- McCarthy, B. J., MacMillian, D. L. The role of the muscle receptor organ in the control of the abdominal extension in the crayfish Cherax. J. Exp. Biol. 198, 2253-2259 (1995).
- Mill, P. J., Lowe, D. A. The fine structure of the PD proprioceptor of Cancer pagurus.I. The receptor strand and the movement sensitive cells. Proc. R. Soc. Lond. B. 184, 179-197 (1973).
- Nakajima, Y., Onodera, K. Membrane properties of the stretch receptor neurons of crayfish with particular reference to mechanisms of sensory adaptation. J. Physiol. 200, 161-185 (1969).
- Nakajima, Y., Takahashi, K. Post-tetanic hyperpolarization and electrogenic Na pump in stretch receptor neurone of crayfish. J. Physiol. 187, 105-127 (1966).
- Pasztor, V. M., MacMillan, D. L. The actions of proctolin, octopamine and serotonin on the crustacean proprioceptors show species and neurone specificity. J. Exp. Biol. 152, 485-504 (1990).
- Patel, M., Fransson, P. A., Karlberg, M., Malmstrom, E. M., Magnusson, M. Change of body movement coordination during cervical proprioceptive disturbances with increased age. Gerontol. 56, 284-290 (2010).
- Patullo, B., Faulkes, Z., Macmillan, D. L. Muscle receptor organs do not mediate load compensation during body roll and defense response extensions in the crayfish Cherax destructor. J. Exp. Zool. 290, 783-790 (2001).
- Purali, N. Mechanisms of adaptation in a mechanoreceptor. A study of mechanical and ionic factors in the crayfish stretch receptors [dissertation]. , Karolinska Institutet. Stockholm, Sweden. (1988).
- Purali, N., Rydqvist, B. Block of potassium outward currents in the crayfish stretch receptor neurons by 4-aminopyridine, tetraethylammonium chloride and some other chemical substances. Acta Physiol. Scand. 146, 67-77 (1992).
- Rabin, E., Muratori, L., Svokos, K., Gordon, A. Tactile/proprioceptive integration during arm localization is intact in individuals with Parkinson's disease. Neurosci. Lett. 470, 38-42 (2010).
- Rydqvist, B., Purali, N. Potential-dependent potassium currents in the rapidly adapting stretch receptor neuron of the crayfish. Acta Physiol. Scand. 142, 67-76 (1991).
- Rydqvist, B., Swerup, C. Stimulus-response properties of the slowly adapting stretch receptor neuron of the crayfish. Acta Physiol. Scand. 143, 11-19 (1991).
- Rossignol, S. Locomotion and its recovery after spinal injury. Curr. Opin. Neurobiol. 10, 708-716 (2000).
- Rossignol, S., Giroux, N., Chau, C., Marcoux, J., Brustein, J., Reader, T. A. Pharmacological aids to locomotor training after spinal injury in the cat. J. Physiol. 533, 65-74 (2001).
- Rossignol, S., Bouyer, L., Barthelemy, D., Langlet, C., Leblond, H. Recovery of locomotion in the cat following spinal cord lesions. Brain Res. Rev. 40, 257-266 (2002).
- Sohn, J., Mykles, D. L., Cooper, R. L. The anatomical, physiological and biochemical characterization of muscles associated with the articulating membrane in the dorsal surface of the crayfish abdomen. J. Exp. Zool. 287, 353-377 (2000).
- Svensson, E., Woolley, J., Wikström, M., Grillner, S. Endogenous dopaminergic modulation of the lamprey spinal locomotor network. Brain Res. 970, 1-8 (2003).
- Swerup, C., Rydqvist, B. The abdominal stretch receptor organ of the crayfish. Comp. Biochem. Physiol. A. 103, 433-431 (1992).
- Vargas, J. G., Yu, W. Audio aided electro-tactile perception training for finger posture biofeedback. Conf. Proc. IEEE Eng. Med. Biol. Soc. 2008, 4230-4233 (2008).
- Vedel, J. P., Clarac, F. Combined reflex actions by several proprioceptive inputs in the rock lobster legs. J. Comp. Physiol. 130, 251-258 (1979).
