Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Bioengineering

Инженерно-биологической основе сосудистых трансплантатов использовании пульсирующего биореактора

Published: June 14, 2011 doi: 10.3791/2646

Summary

Наша группа разработала систему биореакторов культуры, который имитирует физиологическим стрессам пульсирующей сердечно-сосудистой системы к регенерации имплантируемых малого диаметра сосудистых трансплантатов.

Protocol

Автоклав

Собрать и автоклава труб для системы потока и биореактор компонентов (биореактор себя и крышки силиконовой пробкой), как указано на рисунке 1 и рисунке 2. Кормление трубка имеет штекер на одном конце и открытый конец на другую сторону. Три коротких отрезков трубы вставляются через силиконовый колпачок для газообмена.

1. Швейные PGA Mesh

  1. Вырезать PGA сетки 1.1cm х ~ 8 см листов (в зависимости от биореактор размером).
  2. Чистая трубки силиконовые (3 мм внутренний диаметр) с дистиллированной водой (dH20) и сухой воздух перед использованием.
  3. Используйте Дексон 6,0 шва зашить PGA сетку вокруг чистой силиконовой трубкой, начиная с трех хирургических узлов следуют одно швов.

2. PGA Строительные леса для обработки поверхностей

  1. Dip PGA леса в 1 М NaOH в течение 1-2мин и записывать время лечения и использовать одновременно для всех PGA лесов.
  2. Промыть PGA лесов в ваннах dH2O в течение 2 минут 3 раза.
  3. Пэт PGA леса насухо Kimwipes между купанием в дН 2 ванны-вывода.
  4. Сухие строительные леса PGA под капотом культуре ткани высохнуть на воздухе в течение 15 минут с вентилятором далее.

3. Швейные оружия Dacron

  1. Используйте Prolene 4,0 шва шить небольшие кусочки Dacron манжетами (1 см) на каждом конце сетки PGA с перекрытием 2-3мм. Примечание: будьте осторожны, чтобы не прокалывать силиконовые трубки (рис. 3).
  2. Используйте те же шов, чтобы сшить три стежка вокруг свободного конца Dacron манжетами. Не забудьте оставить достаточно швов на свободные концы Prolene шва за шагом 5,1 (рис. 3).

4. Ассамблея биореактора (день до начала биореактор культуры)

  1. Замочите сшиты сетки и силиконовые трубки, хирургические инструменты, и тонкий провод в 70% этанола ванну на 20-30 минут.
  2. Открытое автоклаве пакетов содержащих биореактор и погрузить его в 70% этанола ванны, по крайней мере за 30 минут до сборки. Убедитесь в том, чтобы избавиться биореактор тщательно этанолом. Воздействие на все биореактор компонентов до 70% этанола шаг Помимо стерилизации. Этот шаг также удаляет эндотоксин, который не снимается в автоклаве и является вредным для сосудистых клеток.
  3. Вытяните силиконовые трубки через холодное оружие с использованием тонких провод тянуть его до конца.
  4. Возьмите биореактор из этанола ванны (держать сетку погружены в этанол). Fix PGA эшафот в биореакторе на крепление Dacron манжеты над вспыхнул губами стекла, затянув и сопутствующие вниз Prolene швов (рис. 3).
  5. Подключите одну сторону оружия биореактор стороны разъемов через силиконовые трубки.
  6. Вытяните другой стороне силиконовые трубки с достаточным напряжением и вставьте остальные два разъема в силиконовые трубки. Держитесь за силиконовые трубки плотно при установке разъемов!
  7. Вставьте биореактор в этанол ванной и на одном уровне с этанолом, осторожно потянув разъемы из боковых рукавов.
  8. Флип биореактор снова и позволит впитаться в течение 10 минут.
  9. Флип биореактор правой стороной вверх и выдержите в течение дополнительных 10 минут.
  10. Слейте все этанола.
  11. Настройка три большие чашки Петри (10 см) в ряд и место биореактор в центре блюда держать избыток этанола капала с концов труб.
  12. Флеш биореактор и PGA сетки с тканевой культуре воды, используя 5 мл или 10 мл пипетки. Также промывочной воды культуре ткани в силиконовые трубки.
  13. Тщательно слить лишнюю воду в чашки Петри по обе стороны от биореактора.
  14. Сухой биореакторе на ночь в капюшон с вентилятором на-и УФ-OFF.
  15. Дополнительные примечания: убедитесь, что стерильные мешалкой в ​​биореактор. Удостоверьтесь, чтобы не "парить" над биореактор с этого момента, чтобы избежать загрязнения. Нарежьте много парафильмом полосы и замочить их в небольшом 70% этанола ванны (большой чашке Петри работает хорошо).

5. День 1: биореактор установки

  1. Место стерильную чашку Петри на открытии каждой биореактор для защиты внутри PGA лесов от загрязнения.
  2. Соберите потока система биореактора, как показано на рисунке 4 и парафильмом все суставы соединения.
    1. Протрите разъемы сначала с спиртовые салфетки.
    2. Прикрепить инъекционным портом третьим, неиспользуемые руку биореактора.
    3. Удалить моржей трубы и синий галстук с конца солевой разбавления набор как можно ближе к Y-образного перекрестка, насколько возможно. Вытяните трубку зажим в месте, чтобы убедиться в отсутствии жидкости передаче этой части трубки
    4. Удалить IV сумку, и приложите моржей трубки (красного цвета) для дальнего конца мешок IV. Убедитесь в том, чтобы вытереть вставки порт с алкоголем уничтожить в первую очередь.
    5. Прикрепить моржей в сторону потока системы (через конца трубы белый).
    6. Вставьте 3-полосная краном в проточной системе.
    7. Удалить датчик давления и подключения к трехходовым краном.
    8. Присоединить другой конец датчика давления до середины отверстия в сумке.
  3. Соединятьсябиореактор с потоком системе через Y-образного перекрестка. Используйте 60 мл шприц, чтобы добавить 350 мл 1% Fungizone (смесь 5 мл Fungizone с 495ml ФСБ), чтобы мешок IV.
  4. Сожмите IV сумку, чтобы смыть текущей системы, регулируя остановить краны, чтобы поток PBS. Примечание: проверить внутри биореактора чтобы у пассажиров было в случае утечки.
  5. Повторное приостановить 8 x10 6 ГМК (около одной сливной T75) в 1.25ml среднего и семян на каждый PGA scafffold. Убедитесь, что клеточная суспензия была равномерно капает на PGA сетки Dacron-соединения, а также на нижней стороне PGA сетки.
  6. Протрите край биореактор с алкоголем протрите через вращающуюся биореактор боком избежать зависания.
  7. Силиконовые пробки крышки сборки (рис. 2)
    1. Пил автоклаве рюкзак осторожно, стараясь не подвергать нижней части крышки.
    2. Прикрепить инъекционным портом для питания трубки на штекер.
    3. Прикрепить PTFE 0,20 мкм фильтры для каждого из трех портов воздуха.
    4. Будьте осторожны, не подвергайте / сенсорный нижней части крышки во время этого процесса.
    5. Парафильмом инъекционным портом.
  8. Вставьте крышку силиконовые пробки в стеклянные биореактор и убедитесь, что питательная трубка внутри биореактора не касается посеяны PGA лесов. Парафильмом вокруг крышки.
  9. Место биореактор с проточной системы внутри инкубатора (на бок) и поверните биореактор каждые 5 минут в течение 25-30 минут.
  10. Заполните биореактор камеры с 400 мл наших 4-10 медиакультуры, как описано в (табл. 1). Эта культура среда "оптимизированы" для свиного инженерии артерий.

6. День 6-7: Включение насоса, и первого кормления

  1. Расти посеян леса статически без каких-либо пульсирующей прокачивая силиконовые трубки в течение 6-7 дней. Существует не нужно для средних изменить или витамина С в это время.
  2. Убедитесь, что Есть нет утечки ФСБ или перегиба потока системы трубопроводов до включения насоса.
  3. Включите насос поток системы и убедитесь, что для регулировки насоса настройки, так что давление читает примерно 270/-30mmHg.
  4. Запись давление ежедневно в течение культуре и поддерживать давление в 270/-30mmHg. Датчик давления может быть подключен к компьютеру, чтобы читать и следить за давлением.

Первое кормление

  1. Соберите инъекционным портом и PTFE фильтр на кормление крышками для изменения среды и средних отходов deposal целей.
  2. Место для подачи твердо на насос и вставьте один конец к кормлению порт биореактор, а другой конец к кормления крышкой. Убедитесь в том, чтобы вытереть инъекции этанола порты с салфетками.
  3. Использование двойного направленного Masterflex насос для откачки 200 мл среды. Затем с помощью новой трубы для перекачки кормления 200 мл свежей среды обратно в биореактор. Всегда начинайте с очень медленной скоростью, особенно когда перекачиваемой среды обратно в биореактор.
  4. Изменение средних и дополнения аскорбиновой кислоты 2x/week. Для добавления аскорбиновой кислоты, использовать 30 мл шприц, чтобы вывезти 25 мл среды и поместить его в сторону в тканях капотом. Растворите 25 мг аскорбиновой кислоты в 5 мл PBS и процеживают через 0,22 мкм фильтр. Первые вводят стерильный аскорбиновой кислоты в питательную трубку и добавить обратно 25мл среду приняты ранее. Средний рецепт приведен в таблице 1.

7. Представитель Результаты:

Рисунок 1
Рисунок 1. Труб и соединителей для сборки системы потока показано выше.

Рисунок 2
Рисунок 2. Крышка силиконовой пробкой сборка показано выше.

Рисунок 3
Рисунок 3. Схемы сборки биореактор приведены выше. Внутри манжеты биореактор Dacron крепятся на стекло оружие с синим узлов шва.

Рисунок 4
Рисунок 4. Поток связан с системой труб и биореактор показано выше. L/S18 трубка будет прокачиваться по насоса Masterflex и, таким образом, при котором поток. Датчик давления будет измерять давление перед входом в биореакторе на верхнем течении.

Рисунок 5
Рисунок 5. Изображение заготовленной инженерии судна. Engineered суда окажется непрозрачной и достичь толщины стенок около 250 мкм после 8-недельного культуры под пульсирующие условиях.

Рисунок 6
Рисунок 6. Гематоксилин-эозином окрашенных сечения инженерных судов. А и В 8-недельном непульсирующее и импульсного сосуды, соответственно.C и D. 4-недельного непульсирующее и импульсного сосуды, соответственно. L указывает сторону просвета сосудов. Бар шкал 100 мкм.

Рисунок 7
Рисунок 7. Массона Trichrome пятна для коллагена (синий) для сечений инженерных судов. А и В 8-недельном непульсирующее и импульсного сосуды, соответственно. C и D. 4-недельного непульсирующее и импульсного сосуды, соответственно. Обратите внимание, что 4-недельный импульсного судна показывает больше коллагена, чем его непульсирующее коллегой. Белые стрелки указывают на оставшиеся PGA фрагментов в судах. Бар шкал 100 мкм.

Рисунок 8
Рисунок 8. Иммунохимии окрашивание SMC маркеров в бычьей инженерии артерий. Гладкая мышца α-актин, calponin-1, а гладкие мышцы миозина тяжелой цепи (SMMHC) ранние, средние и поздние SMC сократительной маркеров, соответственно. К концу 12-недельного культуры, клеток в стенке сосуда выразить SM α-актина и умеренное количество Calponin-1 и SMMHC. Бар шкал 20 мкм.

Компонент Количество
DMEM (DME / низкая модифицированный) 500 мл
FBS (эмбриональной телячьей сыворотки) тепла инактивированной 100 мл
HEPES 1,0 М 5 мл
Витамин С (в растворенном виде в ФБР или DMEM) 25 мг
Proline / глицин / аланин 25 mg/25 мг/10 мг (растворенных в 5 мл PBS) 5 мл
CuSO 4 1,5 мкг (в растворенном виде in1 мл PBS) 1 мл
Пенициллин G по 10 000 ЕД / мл 5 мл
PDGF-BB (тромбоцитарный фактор роста-BB) на 10ng/ml 5 мкг
bFGF (основной фактор роста фибробластов) в 10ng/ml 5 мкг

Таблица 1. Компоненты "4-10" средний приведены в таблице выше. За исключением PDGF-BB и bFGF, все остальные компоненты должны быть фильтруется через фильтр 0,2 мкм до использования.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Качество инженерных судов в значительной степени диктуется качеством ГМК использоваться в культуре ткани. Важнейшие аспекты SMC фенотип включают сократительной морфологии, низкое число проход, и способность размножаться внутри биореактора. Мы рекомендуем пассаж быть не более P3 во время клеточного посева на полимеров эшафот. Более того, крайне важно, чтобы подтвердить, что SMC источники микоплазмы свободного перед использованием. Мы заметили, что микоплазмы загрязненные клетки приводят к существенному снижению клеточную пролиферацию и отложение коллагена матрица в биореакторе культуры.

Более 400,000 коронарной артерии трансплантата необходимо обойти операций каждый год, в результате высокого спроса на малого диаметра (<6 мм) сосудистых трансплантатов 12. Конечной целью является инженером функциональных малого диаметра сосудов, которые имитируют физиологические функции нативной ткани. Наши пульсирующей системой биореактор является перспективным значит составляют функциональные артериальной трансплантаты, которые могли бы восстановить и заменить больное артерий. В химически и механически управляемой среде, биореактор позволяет инженеру имплантируемых малого диаметра сосудов, которые проявляют сильное удержание шва и отличными механическими свойствами. Пульсирующей системой биореактор может быть использована для восстановления артерий из бычьего 3, свиней 6,7, и клетки человека 9 различных размеров и размеры, что делает эту систему и обобщению универсальный. Кроме того, мы изменили наш биореактор, чтобы в режиме реального времени изображения сосудистых внеклеточного матрикса, неинвазивно 8. Комбинированный подход нашего биореактора, неинвазивные методы микроскопии изображений, а также расширенные биомеханической оценки помогут нам понять и оценить отложение ECM и изменения в сосудистой механических свойств с течением времени.

Таким образом, это биореактор система обеспечивает уникальный подход к инженеру биологической основе сосудистых трансплантатов, которые могут играть важную роль в регенерации аутологичных сосудистых трансплантатов в будущих клинических приложений 10,11.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Нет конфликта интересов объявлены.

Acknowledgments

Эта работа финансируется Национальным институтом здоровья Грант R01 EB-008 836 и R01 HL083895 (как для LEN). Мы могли бы поблагодарить Дэрил Смит, стеклодув университета, для создания биореакторов для нашего исследования.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
FBS (Fetal Bovine Serum) Heat-Inactivated Hyclone SH30071
DMEM GIBCO, by Life Technologies 11885
rhFGF-basic R&D Systems 234-FSE
rrPDGF-BB R&D Systems 520-BB
Penicilin G Sigma-Aldrich PENNA
Copper(II) Sulfate Sigma-Aldrich C8027
Gylcine Sigma-Aldrich C8790
L-Alanine Sigma-Aldrich A7469-25G
L-Proline Sigma-Aldrich P5607-25G
Ascorbic Acid Sigma-Aldrich A4544-25G
HEPES Sigma-Aldrich H3375-100G
Silicone Stopper Cole-Parmer 06298-24
Masterflex tubes L/S Cole-Parmer 06508-16, 06508-18
Masterflex pump Cole-Parmer 7553-80
Dacron cuff Maquet 174406
PGA felt Concordia MO000877-01
4-0 1.5 metric Surgipro II suture Syneture VP-557-X
6-0 0.7 metric Dexon suture Syneture 7538-11
0.22μm PTFE filters Whatman, GE Healthcare 6780-2502
Three Way Stop-cock Edwards Lifesciences 593WSC
Pressure Transducer Edwards Lifesciences PX212
IV bags Baxter Internationl Inc. R4R2110
Saline dilution set Arrow International W20030
Silicone tubing Saint-Gobain F05027

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Risau, W., Flamme, I. Vasculogenesis. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 11, 73-91 (1995).
  2. Fankhauser, F., Bebie, H., Kwasniewska, S. The Influcence of mechanical Forices and Flow Mechanisms on Vessel Occlusion. Lasers in Surgery and Medicine. 6, 530-532 (1987).
  3. Niklason, L. E., Gao, J., Abbott, W. M., Hirschi, K. K., Houser, S., Marini, R., Langer, R. Functional arteries grown in vitro. Science. 284, 489-493 (1999).
  4. Prabhakar, V., Grinstaff, M. W., Alarcon, J., Knors, C., Solan, A. K., Niklason, L. E. Engineering porcine arteries: Effects of scaffold modification. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 67A, 303-311 (2003).
  5. Mitchell, S. L., Niklason, L. E. Requirements for growing tissue-engineered vascular grafts. Cardiovascular Pathology. 12, 59-64 (2003).
  6. Dahl, S. L. M., Rhim, C., Song, Y. C., Niklason, L. E. Mechanical properties and compositions of tissue engineered and native arteries. Annals of Biomedical Engineering. 35, 348-355 (2007).
  7. Quint, C., Kondo, Y., Manson, R. J., Lawson, J. H., Dardik, A., Niklason, L. E. Decellularized tissue-engineered blood vessel as an arterial conduit. Proc Natl Acad Sci U S A. 108, 9214-9219 (2011).
  8. Niklason, L. E., Yeh, A. T., Calle, E. A., Bai, Y., Valentín, A., Humphrey, J. D. Enabling Tools for Engineering Collagenous Tissues Integrating Bioreactors, Intravital Imaging, and Biomechanical Modeling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107, 3335-3339 (2010).
  9. Gong, Z., Calkins, G., Cheng, E. -c, Krause, D., Niklason, L. E. Influence of Culture Medium on Smooth Muscle Cell Differentiation from Human Bone Marrow-Derived Mesenchymal Stem Cells. Tissue Engineering Part A. 15, 319-330 (2009).
  10. Gong, Z. D., Niklason, L. E. Small-diameter human vessel wall engineered from bone marrow-derived mesenchymal stem cells (hMSCs. Faseb Journal. 22, 1635-1648 (2008).
  11. Poh, M. Blood vessels engineered from human cells. Lancet. 365, 2122-2124 (2005).
  12. American Heart Association. Biostatistical fact sheet: cardiovascular procedures. , American Heart Association. (2002).

Tags

Биоинженерия выпуск 52 биореактор сосудистых трансплантатов кровеносных сосудов инженерии судна гладкомышечных клеток
Инженерно-биологической основе сосудистых трансплантатов использовании пульсирующего биореактора
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Huang, A. H., Niklason, L. E.More

Huang, A. H., Niklason, L. E. Engineering Biological-Based Vascular Grafts Using a Pulsatile Bioreactor. J. Vis. Exp. (52), e2646, doi:10.3791/2646 (2011).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter