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Immunology and Infection

使用荧光免疫化学检测爱德华ictaluri(一毛虫)样品

Published: May 10, 2011 doi: 10.3791/2687

Summary

在这里,我们描述了一个程序,允许标签

Abstract

虽然爱德华ictaluri斑点叉尾毛虫的主要病原体,并已发现了近三十年 1,2,到目前为止,这些作者的知识,没有方法已发展到允许在原位可视化细菌在组织学切片。

虽然细菌的本地化已在以前的研究使用 3,辐射标记 4平板计数,或发光细菌体内确定,这些研究大多只进行总值器官水平,但有一个例外 6 。此限制的特别关注,是因为大肠杆菌ictaluri有一个复杂的感染周期1,7,和它具有的各种致病因素8,9。 E.复杂的相互作用与它的主机ictaluri是在许多方面类似伤寒沙门氏菌10,这是在同一分类家庭。

在这里,我们描述的一种技术,允许检测细菌用间接免疫组织化学,使用单克隆Ed9抗体安斯沃思等11。

简单地说,一个封闭血清应用于石蜡包埋组织切片,以防止非特定招标。然后,部分孵育与初级抗体:E. ictaluri特异性单克隆抗体Ed9。多余的抗体冲洗,加入FITC标记的抗体。冲洗后,部分安装带有荧光的具体安装介质。

这使得对大肠杆菌的检测ictaluri鮰组织的组织切片原位。

Protocol

1。细菌的挑战

  1. 细菌在一夜之间成长为30 ° C摇脑心浸液肉汤。
  2. 停止在鱼缸水的循环和添加肉汤100 1浓度(每升10毫升,例如)。
  3. 一小时后孵化,在坦克重新启动的循环水,其余的细菌冲洗出来。

2。采样

  1. 采样时间和器官取决于研究的目的,但在我们的研究中,我们使用以下采样点:1,6,16,24,36,48,60,72,96,110,125和175小时后感染。
  2. 在每一个时间点,安乐死六个鱼浸泡在水含MS222和样品(采样机关的选择是对什么是已知的感染过程中的)以下机关:鳃,沿侧线,肠,脾后的肌肉,肝,胃,心,头肾和躯干肾。
  3. 采样后,立即组织学磁带加载机关和两个小时在1%福尔马林浸泡。
  4. 固定两个小时后,从福尔马林50%的乙醇,在那里,直到嵌入保持磁带转移。
  5. 石蜡嵌入机关通宵使用纸巾- Tek的贵宾3000组织的处理器(樱花TEK,托兰斯,加利福尼亚州)和部分在5μm的,使用了Leica RM2255 microtone(徕卡显微系统,班诺克本,伊利诺斯州)。

3。切片脱蜡

  1. 沉浸在明确的仪式,让所有的蜡溶解约5分钟,一个充满染色槽部分。电梯机架和排出多余的蜡溶剂。
  2. 沉浸在一个明确的仪式5分钟,第二个容器的部分。经过几次的使用,取代溶剂之间的第一和第二的容器中的第一个容器和备用。
  3. 沉浸在100%的酒精部分,除去蜡溶剂。
  4. 沉浸在第二个100%的酒精槽部分。
  5. 浸入70%的酒精槽部分。
  6. 沉浸在运行的自来水,消除酒精的所有痕迹的章节。

4。缓冲液的制备

  1. 准备磷酸盐缓冲生理盐水溶解到1公升的蒸馏水和pH值8.0 g氯化钠,氯化钾0.2克,1.15克钠2 HPO 4和0.2克的KH 2 PO 4至7.4 。
  2. PBS稀释到0.9倍,加入900毫升的PBS到100毫升的蒸馏水。
  3. 准备阻止加入2毫升小鼠血清的血清200μLTRITON - X 100和500μLBSA的50毫升的0.9倍PBS。
  4. 准备50 mM的碳酸氢盐缓冲液是由溶解在500毫升蒸馏水H 2 O 2.1克碳酸氢钠3和4 g氯化钠和滴定,pH值8.2准备。

5。 Immunhistochemistry

  1. 补充水分在0.9倍PBS浸泡的部分。
  2. 孵育30分钟,在阻断血清的幻灯片。
  3. 孵育Ed9(100阻断血清稀释1)在一个不透明的湿盒内室温两小时的部分。
  4. 冲洗部分PBS中4次,每次10分钟。
  5. 在一个不透明的湿盒内室温孵育50μL二次抗体(羊抗鼠FITC标记的抗体,阻止血清稀释500倍)在两小时的部分。
  6. 冲洗部分缓冲液中的碳酸氢盐的3倍。
  7. 在去离子水冲洗部分简要。

6。安装

  1. 离开幻灯片,在黑暗中干燥几分钟。
  2. 安装使用permafluor。
  3. 安装介质来过夜,在黑暗阴凉的环境中,干燥,优先许可。

7。显微镜

  1. 组织切片观察,荧光显微镜下。在我们的实验中,我们使用奥林巴斯BX51显微镜配备了三重(FITC; MCA得克萨斯红)过滤器。相框软件(MicroFire,Goleta,加利福尼亚州)。

8。代表性的成果:

由于鱼组织的自体荧光是如此之高,这些组织会出现下脐橙的三滤,方便地提供了一个细菌的背景。

在此背景下,个体FITC染色细菌会出现明亮的绿色圆点,在200X棒状将识别(图1)。

坏的部分,可以构成假阳性(由于在冲洗阶段的问题),在这种情况下,会出现大量的细菌统一目前在幻灯片上。

图1
图1一块肌肉的显微照片显示两个部分 ictaluri(箭头A和B)(200X)。

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图2实验的总体方案

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Discussion

该协议的细节组织切片中的鲶鱼病原体爱德华ictaluri原位可视化技术。据我们所知,这是描述的第一个此类协议。

最关键的一步,在我们的经验,是在作为本议定书不足洗涤步骤4.4中所述的抗体冲洗,可能会导致假阳性。

这项技术的结果与解释的主要问题是组织的自体荧光。然而,人们发现,使用三滤,主要是解决问题的非特异性荧光绝大多数发生以外的绿色荧光光谱。此外,虽然这项技术是相当敏感,它可能会失败,检测细菌负荷低。

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Disclosures

没有利益冲突的声明。

Acknowledgments

作者希望认识到,发展援助和进行免疫组化米歇尔巴内斯的技术援助以及佩特里 - 汉森博士,博士鳗鱼和Timothy Brown评论。该项目是由美国农业部(USDA)CRIS项目#MISV - 0801310和密西西比州立大学兽医学院。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Brain Infusion broth BD Biosciences 237200
MS222 Argent Labs
Whole mouse Serum Cappel 55989
Goat anti-mouse FitC SouthernBiotech 1010-04
Permafluor Lab Vision Ta-030-FM
Potassium chloride (KCl) Sigma-Aldrich P-4504
Triton-X Sigma-Aldrich X100-6X500ML
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich 85040C
Potassium phosphate (KH2PO4) Sigma-Aldrich P-5379
Sodium Bicarbonate (NaHCO3) Sigma-Aldrich S-5761
Sodium chloride (NaCal) Sigma-Aldrich S-9625
Sodium phosphate dibasic(Na2HPO4) Sigma-Aldrich S-9390

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References

  1. Plumb, J. A. Fish Diseases and Disorders. Woo, P. T. K., Bruno, D. W. , CABI Publishing. New York. Vol. 3 479-479 (1998).
  2. Roberts, R. J. Fish Pathology. , third ed, WB Saunders. (2001).
  3. Lawrence, M. L. Louisiana State University. , (1997).
  4. Nusbaum, K. E., Morrisson, E. E. Entry of 35S-Labeled Edwardsiella ictaluri into Channel Catfish. Journal of Aquatic Animal Health. 8, 146-146 (1996).
  5. Karsi, A., Menanteau-Ledouble, S., Lawrence, M. L. Development of bioluminescent Edwardsiella ictaluri for noninvasive disease monitoring. FEMS Microbiology Letters. 260, 286-286 (2006).
  6. Miyazaki, T., Plumb, J. A. Histopathology of Edwardsiella ictaluri in channel catfish, Ictalurus punctatus (Rafinesque). Journal of Fish Diseases. 8, 839-839 (1985).
  7. Areechon, N., Plumb, J. A. Pathogenesis of Edwardsiella ictaluri in Channel Catfish, Ictalurus punctatus. Journal of the World Mariculture Society. 14, 249-249 (1983).
  8. Dumpala, P. R., Lawrence, M. L., Karsi, A. Proteome analysis of Edwardsiella ictaluri. Proteomics. 9, 1353-1353 (2009).
  9. Thune, R. L. Signature-Tagged Mutagenesis of Edwardsiella ictaluri Identifies Virulence-Related Genes, Including a Salmonella Pathogenicity Island 2 Class of Type III Secretion Systems. Applied and Environmental Microbiology. 73, 7934-7934 (2007).
  10. Karsi, A. High-throughput bioluminescence mutant screening strategy for identification of bacterial virulence genes. Applied and Environmental Microbiology. 75, 2166-2166 (2009).
  11. Hook, E. W. Principles and Practices of Infectious Diseases. Mandell, G. L., Douglas, G. Jr, Bennett, J. E. , Vol 1 1700-1700 (1990).
  12. Ainsworth, J., Capley, G., Waterstreet, P., Munson, D. Use of monoclonal antibodies in the indirect fluorescent antibody technique (IFA) for the diagnosis of Edwardsiella ictaluri. Journal of Fish Diseases. 9, 439-439 (1986).

Tags

免疫学,第51期,组织学,免疫组织化学,爱德华ictaluri,肠道败血病鮰鱼,鲶鱼,斑点叉尾毛虫
使用荧光免疫化学检测<em>爱德华ictaluri</em斑点叉尾鮰>(<em>一毛虫</em>)样品
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Menanteau-Ledouble, S., Lawrence, M. More

Menanteau-Ledouble, S., Lawrence, M. Use of Fluorescent Immuno-Chemistry for the detection of Edwardsiella ictaluri in channel catfish (I. punctatus) samples. J. Vis. Exp. (51), e2687, doi:10.3791/2687 (2011).

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