Summary
ショウジョウバエの幼虫は味覚報酬で匂い刺激を関連付けることができます。ここでは、食欲の連想嗅覚学習の分析を可能にする単純な行動パラダイムを記述します。
Abstract
以下では、 ショウジョウバエの幼虫の食欲連想嗅覚学習の方法論の詳細について説明します。セットアップでは、遺伝的干渉との組み合わせで、シンプルな幼虫の脳に特異的に連想学習の神経細胞と分子のファンダメンタルズを分析するためのハンドルを提供します。
生物が存在する動作を調整するために過去の経験を使用することができます。潜在的な行動のような買収は、メモリ·トレース1〜4として学習し、これらのポテンシャルの物理的な拠点として定義することができます。神経科学者は、これらのプロセスは、昆虫から脊椎動物5,6に至るまでモデル生物での様々な方法を用いて脳内の分子やニューロンの変化の観点でどのように構成されるかを理解しよう。そのような努力のためにそれは簡単で、実験的にアクセス可能なモデルシステムを使用すると便利です。 ショウジョウバエの幼虫はに基づいて、これらの要求を満たすことが判明しました7-10:堅牢な行動アッセイ、トランスジェニック技術の多様性と唯一の約10,000ニューロン(認知限界、いくつかの行動オプション、および疑わしい経験の豊かある程度の譲歩とはいえ)を含む神経系の基本組織の存在の可用性。
ショウジョウバエの幼虫は臭いと砂糖11月14日のような食欲の味覚補強の間のアソシエーションを形成することができる。 B.ガーバーの研究室で確立された標準的アッセイでは、動物は、二臭逆数訓練を受ける:幼虫の最初のグループは、味覚の補強材(砂糖の報酬)と一緒に臭気にさらされ、その後臭気にさらされている補強なしの9のB。補強なし臭気が発生し、その後、(砂糖報酬)補強臭気Bにさらされながら、一方で幼虫の2番目のグループは、相互の研修を受ける。以下では、両グループはTESアール2悪臭の間に自分の好みのためのテッド。パフォーマンス指標(PI)として提示 - 報わ臭気のために比較的高い嗜好は連想的学習を反映しています。パフォーマンス·インデックスの連想性質に関する結論がバラバラに臭いや味物質、そのような臭気と報酬の露出、時間と処理の経過2グループ9の間に違いはありませんなどの他のパラメータの間に不測の事態からあるので、説得力がある。
Protocol
1。準備
- ショウジョウバエの野生型幼虫は10分の14明/暗サイクルにおける℃、60%〜80%相対湿度は25で提起されています。幼虫の正確な年齢を制御するために、常に20人の女性は、標準的なフライ食品の約6mlを含む1バイアル(6cmの高さと直径2.5cm)に10人の男性に置かれます。ハエは12時間の卵を産むために許容されていて、二日目には新しいバイアルに移しています。 25℃で飼育し、現在行動実験のために使用することができれば産卵後5-6日幼虫は摂食第3齢期に達する。しかし、人はバイアルの側面から幼虫ではない食品に残っているため、幼虫だけを取ることを保証しなければならない。これらの幼虫は、すでに"放浪第3齢段階"に達している-まもなく蛹化前に-とその使用方法は、結果の解釈を複雑にします。
- 2.5%アガロースペトリ皿(他のラボは実験を通しても1%の寒天濃度を使用して、どのように準備これまでより低い濃度は、摂食第3齢幼虫)は基板に穴を掘ることができる場合があります。100ミリリットル蒸留H 2 Oで2.5グラムアガロースを溶かすそれは沸騰開始するまで電子レンジでソリューションを温める。慎重に溶液を攪拌し、すべてのアガロースが溶けるまで電子レンジに入れます。ペトリ皿の底が完全に覆われており、アガロース溶液は、滑らかな表面を形成するようなペトリ皿に熱いアガロース溶液を注ぐ。溶液を室温まで冷却し、蓋を閉じてみましょう。それが蓋に水の凝縮を可能にするであろうため、直ちに蓋を閉じないでください。
- 2M果糖ペトリ皿の調製:100mlの蒸留H 2 O(再び、1%寒天濃度の使用が可能であるが、それは第3齢幼虫は、基板に穴を掘るために供給できるようになる場合があります)に2.5グラムアガロースを溶かす。それは沸騰開始するまで電子レンジでソリューションを温める。慎重に溶液を撹拌し、マイクロに戻してくださいすべてアガロースまで波が溶解される。慎重に熱い溶液に果糖の35グラムを加える;砂糖を沸騰遅滞を避けるために、溶解するまでゆっくりと混合物をかき混ぜる。底が完全に覆われており、フルクトースアガロース溶液が滑らかな表面を形成するようなペトリ皿にホットフルクトースアガロース溶液を注ぐ。溶液を室温まで冷却し、蓋を閉じてみましょう。それが蓋に水の凝縮を可能にするであろうため、直ちに蓋を閉じないでください。
- 1 - オクタノール(10月)臭容器の調製:テフロン臭容器カスタムメイドに純粋10月10μlを記入し、臭気の蒸発を可能にするためにいくつかの小さな穴があります蓋をして閉じます。コンテナの詳細な説明はガーバーとストッカー2007に記載されている。 10月には3つの臭容器を準備します。臭容器は、挿入された化学物質の蒸発を可能にするが、幼虫が直接連絡することができないようにしてください。具体的にこのように、ここに記載された実験味覚副作用を乱すことなく、幼虫の嗅覚学習に取り組む。
- アミル(AM)の臭容器の準備:希釈は、パラフィン油で1:50 AM。カスタムメイドテフロン臭容器に希釈液10μlを記入し、臭気の蒸発を可能にするためにいくつかの小さな穴があります蓋をして閉じます。 AMの3臭容器を準備します。希釈には、2つの匂いとの間の相対的な嗜好の学習に依存する変化にマスクをかけるかもしれません他の上のいずれか臭気に対する強い選好を避けるために、すなわち、実用的な理由のために重要である。両方の臭いのために等しい魅力はナイーブな動物で後述するテスト(2.5)を適用することにより、実験前に実験室で確認する必要があるかもしれません。ここに示された値は、最近我々の研究室9,15,16によって再現されたガーバー·ラボのいくつかの出版物に基づいています。
- ペトリ皿の標識:行動実験の前にすべてのペトリ皿には、符号化されなければならない。ことを意味すること果糖を含むペトリ皿 "Y"または "B"の "X"又は "A"とアガロースのみペトリ皿に例のためにマークされなければならない。このコードは、すべてのデータが記録された後にのみ、実験者に明らかにされるべきである。 "ブラインド"の実験を行うことにより、実験者の期待は幼虫のパフォーマンスに影響を与えることができることは可能ではありません。我々は唯一の唯一のアガロースに提示された時に果糖ペトリ皿(+)または非報わに提示されたときのいずれか報われる条件刺激(CS1またはCS2)などの悪臭についてお話します、次の中で、幅広い読者の理解を容易にするためにシャーレ( - )。
2。シュガー報酬訓練とテスト
- 食品バイアルから30給第3齢幼虫を収集します。水道水を数滴を含む最初のペトリ皿に移し、慎重にブラシで前後に移動します。またタップWA数滴を含む第二のペトリ皿に移すTERは食料ペーストが幼虫のbodywallに残っていないことを確認してください、そうでない場合は幼虫が実験中に食品の匂いを体験することができるであろう。これはおそらく、テスト状況における学習過程とそのパフォーマンスを不明瞭になります。
- 訓練は、次の政権が適用された食欲の砂糖キューと臭いを関連付けるために幼虫を育成する。含まれているので、果糖報酬(+)ペトリ皿( "ブラインド"の実験では、詳細は1.6参照用) - "X"のマークされたの左側と右側に10月臭容器を置きます。ペトリ皿の真ん中に30給餌第3齢幼虫の集団を入れて、蓋を閉じて、動物が10月に晒されていながら、5分間待ちます。幼虫は水滴の中に閉じ込められていませんし、それの表面張力を克服できることを確認してください。その幼虫が自由にペトリ皿に移動して、嗅覚および/または味覚刺激を体験することができます。
- トレーニング:湿らせたブラシでシャーレから幼虫を取り出して、転送したがって、アガロースのみ- ( - )ペトリ皿を含む- "Y"で標識された第2のペトリ皿の上メートル、その左側と右側にあり、AM臭容器を持っています。ふたを閉め、動物は、AMにさらされながら、5分間待ちます。
- トレーニング:二回繰り返し2.2)、2.3)、そのようなすべてのこと30幼虫の経験3トレーニングサイクル:CS1 /(+) - CS2 /( - ); CS1 /(+) - CS2 /( - ); CS1 /(+) - CS2 /( - )。この実験では、CS1は、AM用として10月とCS2のコードを表します。
- テスト:プレイスAM 1およびアガロース専用シャーレの反対のサイトで10月1臭容器。テストのペトリ皿の中央に訓練された動物を転送します。ふたを閉め、5分間待ちます。続いて左側、テストのペトリ皿の真ん中と右側に幼生の数を数えます。
- 30摂食第3齢幼虫の第二のグループで2.5)にステップ2.1)を繰り返しますが、AMと10月の動物は、次の訓練を受けることなどの実験的な役割を交換:CS2/(+) - CS1 /( - ); CS2 /(+) - CS1 /( - ); CS2 /(+) - CS1 /( - )。この実験では、CS1は、AM用として10月とCS2のコードを表します。
- トレーニングのための可能な配置。我々は10月/(+)のいずれかの3つのトレーニング試験の存在訓練を提示の上 - AM /( - )またはAM /(+)のも3訓練試行の逆数グループ内 - 10月/( - )。訓練中に配列依存効果を避けるためにしかし、それは完全な実験の次の繰り返しで刺激の順序を変えることが重要です。 CS1またはCS2順序、また第一又は第二の提示板で報酬プレゼンテーションを変化させることによって、訓練試行のための4つの異なる配列が可能である:
最初のグループ | CS1 /(+) - CS2 /( - ) | レシプロカル·グループ | CS2 /(+) - CS1 /( - ) |
CS1 /( - ) - CS2 /(+) | CS2 /( - ) - CS1 /(+) | ||
CS2 /(+) - CS2 /( - ) | CS1 /(+) - CS2 /( - ) | ||
CS2 /( - ) - CS1 /(+) | CS1 /( - ) - CS2 /(+) |
周囲の実験環境における刺激の系統的な影響を防止するためには、10月が左側に提示され、右側にAMれるように例の半分でテストを実行する必要があります。例他の半分で右に左にと10月に提示されるべきです。
3。タスクに関連した感覚運動学部のためのテスト
上記の実験のデザインは独自に第3齢幼虫の餌野生型で臭気砂糖学習を分析することができます。嗅覚学習がパーに依存している場合しかし、毎日の生活のラボの研究者は、通常、比較するための幼虫の2以上の異なる実験群を使用ticular遺伝子、ニューロンの特定のセット、変異株、特別なダイエット食品、別の飼育条件、有毒な化学物質が幼虫の2以上の実験グループがテストされているすべてのケースでは1がやらなければならない、このようになど、開発時に追加された幼虫の異なるグループが適切な感覚運動acuitiesを示す場合、テストするために必須のコントロール実験のセット。潜在的な表現型が必ずしも砂糖を関連付ける臭気低減又は廃止の能力によるものではないので、これは必須になります。むしろ、潜在的な学習能力の欠陥が臭い及び/又は糖の処理における感覚運動回路のいずれかの工程での欠陥に基づくことができました。変異幼虫はセンス砂糖にできない場合、または他の言葉で、それは砂糖のメモリを確立することはできません。しかし、これは幼虫が学ぶことができないと結論することはできません。詳しくは下記の対照実験は、トランスジェニック幼虫の適切な10月、AMおよび果糖処理をテストするために行わなければならない。
1。ナイーブ10月prefeのためのテストrence
食品バイアルから30給第3齢幼虫を収集します。 2.1で説明したように水道水で丁寧に洗い流してください。アガロースペトリ皿の片側にシングル10月臭容器を入れ、ペトリ皿の真ん中に幼虫を追加蓋を閉じて、幼虫は10月に向かってシャーレや東洋にクロールできるように、5分間待つ臭気源。その後真ん中にし、テストのペトリ皿の右側に、左側に幼虫の数を数えます。
2。ナイーブAMの好みのためのテスト
食品バイアルから30給第3齢幼虫を収集します。 2.1で説明したように水道水で丁寧に洗い流してください。アガロースペトリ皿の片側にシングルAM臭容器を入れ、ペトリ皿の真ん中に幼虫を追加蓋を閉じて、幼虫はAMに向かってシャーレや東洋にクロールできるように、5分間待つ臭気源。その後リットルの数を数える中間の場合、テストのペトリ皿の右側に、左側にarvae。
3。ナイーブ砂糖の好みのためのテスト
食品バイアルから30給第3齢幼虫を収集します。 2.1で説明したように水道水で丁寧に洗い流してください。半分、残りの半分の2Mフルクトースアガロース混合物中に2.5%アガロースを含むペトリ皿を準備します。シャーレ上に幼虫を追加し、幼虫は果糖含有側に向かってシャーレや東洋にクロールできるように5分間、蓋を閉じて待つ。その後真ん中にし、テストのペトリ皿の右側に、左側に幼虫の数を数えます。
2分の1〜2分の1ペトリ皿の調製:セクション1.2で上記のように通常のアガロースプレートを準備します。アガロース埋めペトリ皿が冷却されると、慎重にメスで垂直軸に沿ってアガロースを切った。シャーレからアガロースの半分を削除します。 Aペトリ皿の空の半分にddはホットフルクトースアガロース溶液(製造については1.3を参照)。両半分が一致し、定義されたエッジを形成しないように注意してください-これは幼虫の選択行動に影響を与え、むしろ困難な行動分析をレンダリング4。
シャム訓練
トランスジェニック給餌第3齢幼虫は10月と空気(3.1)、AMと空気(3.2)、砂糖、純粋なアガロース(3.3)、試験実験の追加セットの間に野生型レベルで区別することができるかどうかのテストにもかかわらず、最近になってきた(議論のためのガーバーやストッカー、2007を参照)を導入しました。これらの実験のための理論的根拠は以下の通りです。訓練中に巨大幼虫ハンドリングと連続匂いと砂糖の刺激を受けています。したがって、観測された学習の表現型は(ナイーブ臭気と砂糖知覚テストは、野生型のレベルにあるが!)誤解を招くことも可能である。確かに、それは可能ですので、トランスジェニック動物Dストレス抵抗性、動機、倦怠感、感覚適応、文脈学習、満腹の変化に対する野生型幼虫からiffer。したがって、ミケルスら (2005)が導入され与えられた変異体は、(1)あなたが報酬を省略して、単に両方にさらすことを除いて、トレーニング中にまったく同じように幼虫を扱う場合は、空臭容器対AM検出することが可能であるかどうか、そのテストを制御悪臭、(2)同じ政権の後10月を検出します。あなたが臭いを省略して、単に報酬を公開することを除き、訓練のような方法で幼虫を扱う場合、(3)、空臭容器対AM検出、および(4 )同じレジメンの後に10月を検出します。包括的な議論とメソッドの詳細についてはミケルスら (2005)とガーバーとストッカー(2007)を参照してください。
4。シュガー報酬学習のためのデータ解析
- 砂糖報酬学習プロトコルのデータを評価するために2つのレシプロのそれぞれについて、10月の選好指標(PREF OCT)を計算する的に訓練グループ:
AM / - ( - )10月/(+)は、受信した最初のグループのための研修:
左、右、中央のゾーン内のすべての幼虫の#/ - PREF 10月(10月は+ / AM-)=(#幼虫のAM側の#10月側の幼虫)
: - 10月/( - )訓練のAM /(+)を受け取った2つ目のグループ
PREF午前(AM + / 10月 - )=(#午前側の幼虫 - #10月側の幼虫)/#すべての幼虫の左、右、中央のゾーン内
- 4.1から2のPREF値に対する性能指標(PI))を計算します。 PIは臭いと罰被曝の摂動効果を打ち消すことによって連想的学習の時間及び取扱いの経過を表しています。
PI =(PREF 10月(10月は+ / AM)+ PREF午前(AM + / 10月))/ 2
したがって、PIは-1から1の範囲で指定できます。有意な正の値が食欲学習を記述するのに対し、有意な負の値は、嫌悪、学習表す。完全な実験は、通常10以上のPIで構成されます。データは、ボックスプロットincludinとして可視化される与えられた実験群のグラムは、すべての値。値の50%は、ボックス内に配置され、中央値性能指標は、ボックスプロット内の太線で示されている。
5。タスクに関連した感覚運動学部のためのデータ解析
- 適切な10月の臭気処理は次のように10月臭選好指標を計算するためにテストするときにデータを評価するには:
左、右、中央のゾーン内のすべての幼虫の#/ - 臭気PREF 10月=(#幼虫の反対側にある#幼虫の10月側) - 適切なAMの匂い知覚は次のように、AM臭選好指標を計算するためにテストするときにデータを評価するには:
臭気PREF AM =(#午前側の幼虫 - #幼虫の反対側)/#すべての幼虫の左、右、中央のゾーン内 - 適切な果糖知覚は次のように果糖選好指標を計算するためにテストするときにデータを評価するには:
PREF果糖=(#幼虫の果糖側 - #幼虫の反対側に)/#左、右、中央のゾーン内のすべての幼虫の - 偽訓練の詳細はミケルスらに与えられている。2005。
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Representative Results
図1Aは、幼虫の嗅覚連合学習の実験手順の概要を示しています。砂糖報酬幼虫を2提示臭いのいずれかを組み合わせることで報われない匂いに比べて報わ匂いに向かって魅力的な応答を表現する潜在的な動作を取得します。幼虫の2つのグループが常にどちら臭気10月またはAMと強化子を組み合わせることで訓練されています。性能指標(PI)は相互に訓練されたグループ間の嗜好の違いとして、連想機能を測定します。
連想機能がトランスジェニック幼虫で分析される場合には、基本的な感覚·運動能力のテストが必要です。これは、それらを埋め臭容器と空気との間の選択肢を提供することによって、または純粋なアガロースおよびアガロースプラス砂糖の間に行われます。 (模造の訓練はここでは示していません)。幼虫の最後の分布が特定のデータシートに記載されている( 図2)と可視れるボックスプロット( 図3)としてualized。陽性結果は選好指標とパフォーマンス指標の場合食欲学習のための魅力的な選択行動を示しています。負の値は、計算された選好の指標に対して嫌悪選択行動を示すと嫌悪パフォーマンス指標の場合に学習。
図1幼虫連想嗅覚学習、ナイーブ嗅覚嗜好やナイーブ味覚嗜好を測定するための行動実験のスキーム。
- 30 ショウジョウバエの餌第3齢幼虫を2M果糖の砂糖の報酬が含まれているアガロースシャーレに5分間入れています。同時に第一臭がテフロン容器で提供されていS(10月)。したがって幼虫は最初のトレーニング段階で陽性補強と臭気刺激を関連付けることができます。次に、幼虫は補強せずに、再び5分間、第二臭い(AM)の2番目のアガロースペトリ皿に移しています。研修は3回繰り返されます。最後に、テスト状況では幼虫の匂いの嗜好をアガロースシャーレ上の非報わ悪臭に対する報わ臭気を測定する。これは最優先指数(PREF)の計算を可能にする。幼虫の2番目のグループは相互に同様の方法で訓練を受けています。ここで、第二選好指標(PREF)を計算することができる。最後にパフォーマンスインデックス(PI)は、両方の好み指数を平均することにより算出されます。試験の順序に関する詳細情報については2.7も参照してください。
- ナイーブな匂いの嗜好を分析するため、10月またはAMのどちらかで満たされ、単一臭容器は、純粋なアガロースペトリ皿の片側に配置されます。 30摂食第3齢幼虫はナンプラーアールペトリ皿の真ん中にCEDと5分後にシャーレ上の幼虫の分布がカウントされます。得られたデータから嗅覚選好指標(PREF)を、計算されます。
- ナイーブな味覚の嗜好を分析するための2M果糖は、その反対側に純粋なアガロースが含まれてペトリ皿の半分に充填される。 30摂食第3齢幼虫をシャーレの中央に配置され、5分後にシャーレ上の幼虫の分布がカウントされます。得られたデータから味覚選好指標(PREF)を、計算されます。
図2。)砂糖報酬学習について得られたデータを登録して処理するための生データシートの例、B)はナイーブ匂いの好みおよびC)ナイーブ味覚嗜好。すべての実験のために途中で、ペトリ皿の右側に左側に幼虫の数は、記載されています。この情報選好指標のうち(PREF)が算出される。幼虫の学習は2往復訓練を受けたグループの設定項目をcomputating由来する性能指標(PI)として描かれている。 拡大図を表示するには、ここをクリックしてください 。
図3の例では、データの視覚化)糖報酬学習、B)がナイーブな臭気の嗜好やC)はナイーブ味覚嗜好に対して得られた。箱ひげ図は、次のようにデータを表す:中央値(ボックス内の太線)、上下ヒゲが他の25%ずつを表すのに対し、ボックスには、すべてのデータポイントの50%を示しています。そこで外れ値なしで最小値と最大値はウィスカの境界によって示されている。外れ値は小さな円として、それらが任意のポイント第1·第3四分位数から1.5倍以上の四分位範囲として定義されて描かれている。ウィルコクソンの順位和検定は、2つのデータ群の比較のために使用されますが、単一のデータポイントの統計分析は、Wilcoxonの符号付き順位検定を用いて行われる。有意水準はp <0.01またはp <0.001 ***に対するp <0.05、**についてのp> 0.05、*のNSとして示されている。各実験のサンプルサイズN = 15。
常に)での学習実験のための実験の逆数2優先指数(PREF)が最終的な性能指標(PI)を計算するために取られる。パフォーマンス指標(PI)は、それに応じてボックスプロットとして描かれている。
図4:幼虫の脳内での細胞の特定のセットにラベルを付け、それぞれがGAL4ラインの例。幼虫の脳の前頭葉のビューは、常にフルのz投影が示されています。ニューロンの特定のセットがanti-FasII/anti-ChAT doublestaining(マゼンタ)で可視化される全体の幼虫の中枢神経系における抗緑色蛍光タンパク質(緑)によって表記されている。)NP225ラベル投影と呼ばれる二次嗅覚ニューロンの集合、ニューロン(矢印)と現像成人の視覚システム(矢頭)。B)NP2426マーク第一嗅覚中継局における嗅覚ニューロン(矢印)のセットは、触角葉と呼ばれます。C)GR66aが専らその味覚の感覚ニューロンの集合にラベルを付ける末梢味覚感覚器官からsubeosophageal神経節へのプロジェクト(矢印)。D)NP3128ラベルニューロンの様々なタイプの集合がいくつか。矢印は神経網の領域上にプロジェクトがキノコ体と呼ばれるドーパミン作動性ニューロンのセットを強調矢じりをBに類似の触角葉の嗅覚ニューロンをマークします。E)H24マークのキノコ体ケニヨン細胞(矢印)に示すニューロンの集合を幼虫の嗅覚学習のために必要であると。 女)NP7493はさらにハエの脳を形成するために、変態時に差別化を図る開発ニューロン(矢印)のいくつかのセットを含む、比較的非特異的発現パターンの一例です。スケールバー=50μmである。
図5 Dの連想学習を研究するための成功した試みをまとめた概要rosophilaの幼虫。嗅覚刺激と同様に光が報酬や罰(無条件刺激)どちらかに関連付けられるように条件刺激として使用することができます。やりがいのある刺激は、砂糖と塩の低濃度を含んでいる;罰する刺激は、高濃度の塩、キニーネ、感電、熱、機械的振動を介した刺激(バズ)と光11,12,17-24を備える。 拡大図を表示するには、ここをクリックしてください 。
GAL4 / UASは弊社ラボで頻繁に使用される構築 | |||
略称 | タンパク質 | 機能 | 文学 |
可視化 | |||
UAS-mCD8 :: GFP | 緑色蛍光タンパク質 | MEMBRANEマーカー | Lee ら 、1999 |
UAS-N-SYB :: GFP | 緑色蛍光タンパク質 | シナプス前のマーカー | 伊藤ら 、1998 |
UAS-Dscam17.1 :: GFP | 緑色蛍光タンパク質 | シナプス後のマーカー | Wang ら 、2004 |
UAS-NLS :: GFP | 緑色蛍光タンパク質 | 細胞体マーカー | ロバートソンら 、2003 |
神経シグナルとの干渉 | |||
UAS-HID | 頭の退縮不良 | アポトーシスを誘導する | Zhou ら 、1997 |
UAS-RPR | 刈り取り機 | アポトーシスを誘導する | Zhou ら 、1997 |
UAS市TS | ダイナミンドミナントネガティブ | ブロックvesicl電子リサイクル | 北本、2001 |
UAS-Kir.2.1 :: EGFP | 内向きK +チャネルを整流 | 全く膜の脱分極ん | ベインズら 、2001 |
UAS-TRPA1 | 陽イオンチャネル | 温度依存的な活性化 | ローゼンツヴァイクら 、2005 |
UAS-ChR2 | Channelrhodopsin | 光依存活性化 | Schroll ら 、2006 |
表1。しばしば神経解剖学を視覚化し、シナプス伝達25から33を操作するためにラボで使用されるUASエフェクターコンストラクト。
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Discussion
ショウジョウバエの幼虫の記載されているセットアップは比較的初歩脳内で連想嗅覚学習の調査を行うことが可能。アプローチでは、実験室で確立するために、シンプルな安い、簡単ですし、ハイテク機器9を必要としません。我々は、果糖の報酬11によって補強食欲連想学習を研究するために、実験のバージョンを提示します。記載されているセットアップを総合的に訓練試行の数の変化、質量分析対単一のアッセイ、保持時間、使用臭気および臭気濃度とジェンダー9,15,34,35を調査パラメトリック一連の研究に基づいています。このように、描か行動セットアップは、 ショウジョウバエの高次脳機能を研究するための、非常に再現性のあるアプローチでこの情報を統合しています。最終的には、そのシンプルなセットアップに基づいて任意の溶解性物質のやりがいや罰する効果が簡単にこのアッセイを用いて試験することができる。
ve_content ">また、パラダイムのいくつかの変種が最近幼虫23,36の連想視覚学習(ガーバーら (2004)に設立された。)の調査を許可することを発表されました、そして、感電、光、熱、キニーネまたは振動も成功連想嗅覚学習9,17,19-21,37-40ための嫌悪強化子として実装されました。したがって、実験装置の包括的なセットは、 ショウジョウバエの幼虫で学習と記憶の行動、神経細胞および分子基盤を解析するために存在します( 図5)13,14,41,42 は 、ここで我々は、特に。臭気-フルクトースは、アッセイの堅牢性と達成することができ、比較的高い性能指数に起因する学習に特化した嫌悪の亜種のいくつかは小さな行動につながる変化します。ある程度この制限幼虫の長期の研究を行い、動物の発達の問題に加えて法の適用、むしろ不可能メモリ。幼虫の脳は、その全体のみ約10,000ニューロンで構成されています。したがって、相対的に単純な(数の上では)組織のためにそれは、順番に学習と記憶の分子と神経基盤に高度な研究を可能にする遺伝的干渉によくアクセスすることができます。特にGAL4/UASシステムと最近の修正は時空方法( 図4)7,10のニューロンと最大であっても単一細胞への定義されたセットの遺伝子操作が可能になります。ここにエフェクターラインの包括的なセットは、それらのニューロンの出力( 表1)を操作するためのニューロンのこれらの定義された集合のことです( 図4)の代わりに25,43またはを可視化する可能性を提供します。最も頻繁にエフェクター遺伝子は細胞自律的に細胞死を誘発するか、または神経伝達29,30,33を阻害することができることが適用されます。さらに最近では技術が開発されたアル光や温度( 表1)31,32,44によって駆動制御された人工的なニューロンの活性化のための低。
要約すると、遺伝的な干渉の洗練された方法の組み合わせが、ここでは説明し行動実験は、学習およびショウジョウバエの幼虫の素脳内のメモリの、ニューロンの分子や行動基準を暴くことができます。
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Disclosures
特別な利害関係は宣言されません。
Acknowledgments
我々は、特に彼らの実験設定と原稿のコメントに関する技術的な手順については、ガーバー·ラボのメンバーに感謝したいと思います。我々はまた、野生型カントン株式のフライケアとメンテナンスのためリュボフPankevychに感謝します。この作品は、DFG助成TH1584/1-1、SNFの助成31003A_132812 / 1およびコンスタンツ大学のZukunftskolleg(全ASTに)によってサポートされています。
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Fructose | Sigma | 47740 | 57-48-7 |
NaCl | Fluka | 71350 | 7647-14-5 |
Agarose | Sigma | A5093 | 9012-36-6 |
1-octanol | Sigma | 12012 | 111-87-5 |
Amylacetate | Sigma | 46022 | 628-63-7 |
Paraffin oil | Sigma | 18512 | 8012-95-1 |
References
- Pawlow, I. P. New Researches on Conditioned Reflexes. Science. 58, 359-361 (1923).
- Heisenberg, M. Mushroom body memoir: from maps to models. Nat. Rev. Neurosci. 4, 266-275 (2003).
- Kandel, E. R. Cellular insights into behavior and learning. Harvey Lect. 73, 19-92 (1979).
- Gerber, B., Tanimoto, H., Heisenberg, M. An engram found? Evaluating the evidence from fruit flies. Curr. Opin. Neurobiol. 14, 737-744 (2004).
- Milner, B., Squire, L. R., Kandel, E. R. Cognitive neuroscience and the study of memory. Neuron. 20, 445-468 (1998).
- Keene, A. C., Waddell, S. Drosophila olfactory memory: single genes to complex neural circuits. Nat. Rev. Neurosci. 8, (2007).
- Duffy, J. B. GAL4 system in Drosophila: a fly geneticist's Swiss army knife. Genesis. 34, 1-15 (2002).
- Gerber, B., Stocker, R. F., Tanimura, T., Thum, A. S. Smelling, tasting, learning: Drosophila as a study case. Results Probl. Cell. Differ. 47, 139-185 (2009).
- Gerber, B., Stocker, R. F. The Drosophila larva as a model for studying chemosensation and chemosensory learning: a review. Chem. Senses. 32, 65-89 (2007).
- Venken, K. J., Simpson, J. H., Bellen, H. J. Genetic manipulation of genes and cells in the nervous system of the fruit fly. Neuron. 72, 202-230 (2011).
- Gerber, B., Hendel, T. Outcome expectations drive learned behaviour in larval Drosophila. Proc. Biol. Sci. 273, 2965-2968 (2006).
- Schleyer, M., et al. A behavior-based circuit model of how outcome expectations organize learned behavior in larval Drosophila. Learn Mem. 18, 639-653 (2011).
- Pauls, D., Selcho, M., Gendre, N., Stocker, R. F., Thum, A. S. Drosophila larvae establish appetitive olfactory memories via mushroom body neurons of embryonic origin. J. Neurosci. 30, 10655-10666 (2010).
- Selcho, M., Pauls, D., Han, K. A., Stocker, R. F., Thum, A. S. The role of dopamine in Drosophila larval classical olfactory conditioning. PLoS One. 4, e5897 (2009).
- Neuser, K., Husse, J., Stock, P., Gerber, B. Appetitive olfactory learning in Drosophila larvae:effects of repetition, reward strength, age, gender, assay type and memory span. Animal Behaviour. 69, 891-898 (2005).
- Scherer, S., Stocker, R. F., Gerber, B. Olfactory learning in individually assayed Drosophila larvae. Learn Mem. 10, 217-225 (2003).
- Aceves-Pina, E. O., Quinn, W. G. Learning in normal and mutant Drosophila larvae. Science. 206, 93-96 (1979).
- Heisenberg, M., Borst, A., Wagner, S., Byers, D. Drosophila mushroom body mutants are deficient in olfactory learning. J. Neurogenet. 2, 1-30 (1985).
- Khurana, S., Abu Baker, M. B., Siddiqi, O. Odour avoidance learning in the larva of Drosophila melanogaster. J. Biosci. 34, 621-631 (2009).
- Pauls, D., et al. Electric shock-induced associative olfactory learning in Drosophila larvae. Chem. Senses. 35, 335-346 (2010).
- Eschbach, C., et al. Associative learning between odorants and mechanosensory punishment in larval Drosophila. J. Exp. Biol. 214, 3897-3905 (2011).
- von Essen, A. M., Pauls, D., Thum, A. S., Sprecher, S. G. Capacity of visual classical conditioning in Drosophila larvae. Behav. Neurosci. 125, 921-929 (2011).
- Gerber, B., et al. Visual learning in individually assayed Drosophila larvae. J. Exp. Biol. 207, 179-188 (2004).
- Rohwedder, A., et al. Nutritional Value-Dependent and Nutritional Value-Independent Effects on Drosophila melanogaster Larval Behavior. Chem. Senses. , (2012).
- Lee, T., Lee, A., Luo, L. Development of the Drosophila mushroom bodies: sequential generation of three distinct types of neurons from a neuroblast. Development. 126, 4065-4076 (1999).
- Ito, K., et al. The organization of extrinsic neurons and their implications in the functional roles of the mushroom bodies in Drosophila melanogaster Meigen. Learn Mem. 5, 52-77 (1998).
- Wang, J., et al. Transmembrane/juxtamembrane domain-dependent Dscam distribution and function during mushroom body neuronal morphogenesis. Neuron. 43, 663-672 (2004).
- Robertson, K., Mergliano, J., Minden, J. S. Dissecting Drosophila embryonic brain development using photoactivated gene expression. Dev. Biol. 260, 124-137 (2003).
- Zhou, L., et al. Cooperative functions of the reaper and head involution defective genes in the programmed cell death of Drosophila central nervous system midline cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 94, 5131-5136 (1997).
- Kitamoto, T. Conditional modification of behavior in Drosophila by targeted expression of a temperature-sensitive shibire allele in defined neurons. J. Neurobiol. 47, 81-92 (2001).
- Schroll, C., et al. Light-induced activation of distinct modulatory neurons triggers appetitive or aversive learning in Drosophila larvae. Curr. Biol. 16, 1741-1747 (2006).
- Rosenzweig, M., et al. The Drosophila ortholog of vertebrate TRPA1 regulates thermotaxis. Genes Dev. 19, 419-424 (2005).
- Baines, R. A., Uhler, J. P., Thompson, A., Sweeney, S. T., Bate, M. Altered electrical properties in Drosophila neurons developing without synaptic transmission. J. Neurosci. 21, 1523-1531 (2001).
- Chen, Y. C., Mishra, D., Schmitt, L., Schmuker, M., Gerber, B. A behavioral odor similarity "space" in larval Drosophila. Chem. Senses. 36, 237-249 (2011).
- Saumweber, T., Husse, J., Gerber, B. Innate attractiveness and associative learnability of odors can be dissociated in larval Drosophila. Chem. Senses. 36, 223-235 (2011).
- von Essen, A. M., Pauls, D., Thum, A. S., Sprecher, S. G. Capacity of visual classical conditioning in Drosophila larvae. Behav. Neurosci. , (2011).
- Honjo, K., Furukubo-Tokunaga, K. Induction of cAMP response element-binding protein-dependent medium-term memory by appetitive gustatory reinforcement in Drosophila larvae. J. Neurosci. 25, 7905-7913 (2005).
- Honjo, K., Furukubo-Tokunaga, K. Distinctive neuronal networks and biochemical pathways for appetitive and aversive memory in Drosophila larvae. J. Neurosci. 29, 852-862 (2009).
- Khurana, S., et al. Olfactory Conditioning in the Third Instar Larvae of Drosophila melanogaster Using Heat Shock Reinforcement. Behav. Genet. 42, 151-161 (2012).
- Tully, T., Cambiazo, V., Kruse, L. Memory through metamorphosis in normal and mutant. 14, 68-74 (1994).
- Michels, B., et al. Cellular site and molecular mode of synapsin action in associative learning. Learn Mem. 18, 332-344 (2011).
- Saumweber, T., et al. Behavioral and synaptic plasticity are impaired upon lack of the synaptic protein SAP47. J. Neurosci. 31, 3508-3518 (2011).
- Pfeiffer, B. D., et al. Refinement of tools for targeted gene expression in Drosophila. Genetics. 186, 735-755 (2010).
- Rosenzweig, M., Kang, K., Garrity, P. A. Distinct TRP channels are required for warm and cool avoidance in Drosophila melanogaster. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 14668-14673 (2008).