Summary
为了解开最早的分子机制启动前列腺癌，新颖创新的人体模型系统和方法是迫切需要的。诱导多能干细胞群形成的人类前列腺上皮细胞的潜力预前列腺泌尿生殖窦间充质（UGSM）是一个强大的实验工具，在前列腺研究。
Abstract
人源性和激素天真的模型系统，这限制了我们的能力，了解相关前列腺疾病引发的遗传和分子事件的可用性，在前列腺癌的研究进展受到严重限制。对发展更好的模型系统研究人类前列腺癌，我们和其他人利用胚胎鼠的前列腺基质亲前列腺独特的感应电势，被称为泌尿生殖窦间充质（UGSM）。当重组的目标，如胚胎干细胞的多能性的细胞群，UGSM睾酮依赖性诱导正常人类前列腺上皮细胞的形成。这种人体模型系统可用于调查和实验测试候选前列腺癌易感基因的能力比较典型的啮齿动物转基因研究加快。由于人类胚胎干细胞（胚胎）可以在全光照培养转基因克诱导基因表达或siRNA击倒向量组织重组之前，这样的模式有利于测试基因功能的后果，或基因组合，这被认为是促进或防止癌变的。
然而，分离纯人群的UGSM细胞，该技术的挑战和学习往往需要与以前的专业知识的人亲自教导。此外，肾包膜下的细胞混合物接种的免疫功能低下的主机可以是技术上的挑战。这里，我们勾勒，说明适当的隔离的UGSM从啮齿动物胚胎组织混合物形成人类前列腺上皮和肾囊的着床。这样的方法，在目前的阶段，需要在体内异种移植的胚胎干细胞，未来的应用程序可能会包括在体外腺形成或使用诱导式多能性干细胞群（iPS细胞）。
Introduction
为更好的人体模型系统对前列腺癌有一个巨大的需要。尤其是，相关的人体模型系统的正常，非恶性前列腺组织可以操纵基因直接辨别特定基因的作用在前列腺癌的启动将是令人难以置信的信息。基因组时代的来临已经确定了许多基因可能在癌症的形成有一定的作用。然而，缺乏人体实验模型系统严重损害我们的能力，功能测试和表征候选前列腺癌易感基因。一个理想的模型系统，将有利于迅速和更迅速的癌症易感基因组合与适当的转基因啮齿动物模型系统的功能分析。此外，这种人体模型系统将使前列腺癌变的信号机制向发现和验证新疗法的分子特征预防前列腺癌的形成。
人胚胎干细胞（人胚胎干细胞）是能够形成作为异种移植的人类前列腺组织。泰勒等人在2006年报道，人类胚胎干细胞可以诱导在体内与啮齿动物的泌尿生殖窦间充质（UGSM）在8-12周的时间段之内重新组合以形成前列腺上皮细胞。1这些研究是基于以前的工作库尼亚实验室表明，啮齿类动物胚胎UGSM可以促进前列腺分化的干细胞和胚胎在体内的上皮细胞群。2,3前列腺癌的发展从一个胚胎原基称为泌尿生殖窦（UGS），胚胎17天前（E17鼠标一天E18在大鼠）UGS可以删除，并在物理上分为上皮（UGSE）和间充质（UGSM）4本组织重组方法已明显使我们进一步了解前列腺的发育和癌变，特别是光年生长因子和激素信号转导途径和前列腺基质和上皮细胞的分子之间的关系。5-8此方法涉及体外的UGSM组合与干细胞或上皮细胞中的相同或不同的种属，这些细胞/组织的重组体注入和生长经过一段时间的在体内的生长和小鼠异种移植物于主机。4,9，所述植入物包含嵌入在基质组织的前列腺上皮腺状结构。进一步的染色，也可进行，以确定这样的结构是否是真正的前列腺和人类起源。10,11
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Protocol
这项研究进行了严格按照美国国立卫生研究院的实验室动物护理和使用指南的建议。该协议被批准大学芝加哥机构动物护理和使用委员会（IACUC，协议号码72066和72231）。所有的手术麻醉下进行，所有的努力都是为了最大限度地减少痛苦。收购WiCell（麦迪逊，威斯康星州）和培养人类胚胎干细胞系WA01（H1; NIH注册＃0043）使用独立的馈线协议使用mTeSR1媒体（干细胞技术;温哥华，不列颠哥伦比亚省）。胚胎干细胞被用来内10通道解冻。
1。从小鼠或大鼠胚胎的泌尿生殖窦分离
- 安乐死定时孕鼠（17.5天）或大鼠吸入CO 2（18.5天）5分钟。也证实了在大鼠的生命体征停止死亡。然后打破它的脖子人道。在R在安乐死在这一点上。喷70％乙醇消毒腹部皮肤和侧面。切腹部的皮肤和肌肉层，然后切子宫，分离大鼠胚胎的羊膜囊，剪断脐带。胚胎转移到一个50毫升的Falcon管中含有冰冷的Hank氏平衡盐溶液（HBSS）中，并保持在冰上。胎儿安乐死斩首用手术剪刀。
- 将胚胎在100毫米的培养皿。平分胚胎用剪刀在肚脐的水平（ 图1A）。取出胃和小肠。显示女性胚胎卵巢和睾丸在男性胚胎（ 图1B和1C）。 （卵巢位于尾侧磁极的肾脏，睾丸是大致水平的膀胱）。在这个发展阶段，UGSM隔离的主机的存在能够诱导前列腺上皮血统的男性和女性胚胎然而，这个发展的时间点后的睾丸激素。4，前列腺芽开始形成UGSM，和纯UGSM隔 离是非常具有挑战性的。
- 解剖显微镜下，在中间线与维纳斯剪刀露出腹部膀胱后壁切开腹壁。免费上生殖道的附件（雄性胚胎，切断输尿管，沃尔夫管和苗勒氏管;女性胚胎，切断输尿管和苗勒氏管）。从脐带释放膀胱。切耻骨直言分开杜蒙精尖镊子泌尿生殖窦前壁。最后，从直肠泌尿生殖窦后壁分开。在其下端（从尿道）剪切与膀胱的泌尿生殖窦和冰冷的HBSS中存储的泌尿生殖窦整块（膀胱）。
2。泌尿生殖窦间质细胞的分离
- 转移泌尿生殖窦含1％胰蛋白酶，钙（Ca 2 +的）和镁（Mg 2 +）的HBSS猎鹰管。管放置在冰箱中在4℃下75分钟。
- 取出胰蛋白酶和10％胎儿的鲍文血清（FBS）的DMEM/F12培养基中和胰酶消化。
- 小心地挑逗粘间充质套管针或的杜蒙细尖镊子（保持完好的上皮管上皮细胞间质污染的机会减少，这可能会导致啮齿动物的腺体形成，随着干细胞衍生的人类上皮管腺上皮细胞）（ 图1D）。
- 转移到一个新的猎鹰管含有DMEM/F12培养基+ UGSM 10％FBS + 1％青霉素/链霉素（PEN /链球菌，0.5毫克/毫升）+ 1％非必需氨基酸（NEAA）加1nm的R1881。排位一点管的培养箱中在37℃用5％CO 2下过夜。
- 组织以200×g离心，弃去上清液。洗净用磷酸盐缓冲液（PBS）（请勿打扰组织沉淀）。
- 添加0.2％胶原酶的DMEM/F12重悬组织。在37°C孵育1小时，温和的摇摆。
- 大力涡消化组织三次，直到它变成均匀的单细胞混合物中，并加DMEM/F12培养基+ 10％FBS的1％P / S + 1％NEAA + 1nm的R1881中的胶原酶。
- 在200 XG离心，然后洗重新悬浮细胞在HBSS UGSM，重复3次充分洗净UGSM的。最后暂停的DMEM/F12间质细胞计数使用血球细胞或细胞计数装置。
- 游离培养胚胎干细胞使用馈线协议（mTeSR1媒体干细胞技术，不列颠哥伦比亚省温哥华）使用的Accutase消化（Millipore公司;比尔里卡，MA）。洗净的胚胎干细胞DMEM/F12媒体在温暖他们的成长在日志记录阶段，再加入温暖的1X的Accutase解决方案，并在37℃孵育15-20分钟，直到单细胞均匀脱离殖民地。新增等量，1X定义的胰蛋白酶抑制剂（Invitrogen公司，大岛，NY）中的Accutase轻轻吸取向上和向下混合，打破了细胞团块。移液管细胞以200×g，3分钟，重新悬浮细胞沉淀中的DMEM/F12培养基到离心管中，离心。离心管3分钟在200 XG再次和去除上清，然后重新暂停在冷的HBSS或DMEM/F12所需的音量。
- 胚胎干细胞与胚胎干/间充质细胞的1:2.5的比例添加。3，这将是一个蜂窝1E 5 UGSM的4E 4每10毫升注射（单个大鼠UGS通常约2E 6间充质细胞的产率）的人类胚胎干细胞的细胞组合物。离心200×g离心5分钟，然后弃去上清液。重新暂停与75％基质胶（BD Biosciences公司，加利福尼亚州圣何塞，混有25％冷的HBSS更容易处理），然后将子肾囊注射管在冰。
3。移植肾包膜底下的组织重组
- 准备一个无菌手术区。
- 麻醉裸鼠鼠标一个男性氯胺酮/甲苯噻嗪IP，使用新鲜的组合，包含1:1:8的比例氯胺酮：甲苯噻嗪：生理盐水。给药将是100毫克/千克氯胺酮和2.5毫克/公斤甲苯噻嗪。一个脚趾捏反应迟钝的动物应该是完全由20-30分钟。
- 手术准备剃须手术部位（如果不使用裸鼠），鼠标，清洁三个交替湿巾70％的酒精，然后用优碘溶液和应用手术悬垂。
- 将眼部水分的药膏（Altalube眼膏）鼠标的眼睛，在麻醉过程中，以防止干燥。
- 在手术过程中，小鼠的呼吸速率与核心体温监控。呼吸率升ULD稳定，保持在40-90次/分钟。芯体的温度进行监控，观察粘膜和颜色的粉红色的脚底。
- 一个1.0厘米长的纵向皮肤切口的背。继续在0.5厘米纵切口切开腹壁。
- 轻轻挤压腹部和肾肾脏保持表面湿润，用无菌生理盐水滴。
- 轻轻穿刺肾包膜使用一个空的27号注射器针头。一个非常浅刺就足够了。这将是您插入您的钝针注射的细胞混合物。
- 用10微升的细胞混合物中填写的28号钝的注射器针头。慢慢插入穿刺部位和穿透肾实质面积将达肾包膜下方。注入10μl的细胞混合物以形成丸剂对肾脏肾小囊的下面。提款针。
- 肾脏阿卜杜接线腔。固定用4-0尼龙缝合腹膜肌肉层。
- 关闭的皮肤，无论是缝合或主食。
- 清洁血液从皮肤，用无菌生理盐水。
4。手术后的镇痛和监测
- 丁丙诺啡（0.1毫克/千克，每12小时）或酮洛芬（3-5毫克/公斤，盐水每隔12小时）注入动物管理手术后的疼痛，1毫升37°C生理盐水IP动物保持温暖并防止脱水。
- 将在一个干净的笼子里的动物，并把它放在一个温和的加热垫。
- 发送的动物，动物房，一旦他们恢复知觉，并正在内笼。
- 意想不到的疾病和感染迹象随后三天，每天观察动物。将小鼠观察在笼子里，包括存取的食物和水后1天可操作的活动监测。如果老鼠显示活动较少，酮洛芬是腹腔广告再次伺候，每天一次。
- 去除皮肤钉或缝线手术后2周。
- 异种移植组织可以尽早手术后8周收获。使用小动物超声（ 图2A），可以是固定的组织切片，染色用免疫组化实验（ 图3）的各种蛋白质，异种移植物可在体内成像。
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Representative Results
泰勒等人的精彩的 报告基础上，我们的实验室已研制出一种嫁接协议使用常用的H1（NIH-WA01指定，男性基因）人类胚胎干细胞系。1这行已经严格测试，质量控制和核型正常的13，当适当的培养，胚胎干细胞可以保持，扩大，并使用无饲养层培养方法（馈线系统通过干细胞技术市售温哥华BC），冷冻保存在一个未分化和多能状态。14我们协议采用结合与单细胞悬液E18大鼠UGSM的和成年男性免疫功能低下小鼠肾包膜下注入的人类胚胎干细胞的单细胞悬液。作为重要的控制，USGM植入单独产生没有明显的增长，而没有UGSM形成大的畸胎瘤（ 图2B）人类胚胎干细胞植入。根据我们的经验，植入15而从未污染大鼠上皮细胞组织生长，结果，同时通报BULLETIN UGSM重组UGSM加上强劲的增长超过80％的时间（8周后的尺寸范围从1毫米到5毫米，超过80％的组织在人类胚胎干细胞的结果含腺上皮）。在重组体同时包含人类胚胎干细胞和UGSM，早期腺形成4周后观察，8周后完全形成，前列腺特异性抗原（PSA）阳性的人前列腺上皮细胞的形成（ 图3）。这些腺体含有雄激素受体（AR）阳性管腔分泌细胞中不存在的一个星期后，主机阉割。更重要的是，这些腺体是人类特有的前列腺特异性蛋白质PSA阳性。进一步染色似乎是这样的人腺非恶性的，因为它们不表达α-甲基酰基辅酶A消旋酶（AMACR），这是一种前列腺癌特异性标记的文档16
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图1。从E18.5大鼠胚胎的泌尿生殖窦分离。 A. E18.5大鼠胚胎。白色实线表示的位置到平分胚胎。B. E18.5雄性大鼠胚胎。黑色虚线表示，膀胱，泌尿生殖窦，直肠，睾丸和发展中国家C. E18.5雌性大鼠胚胎。的黑色虚线表示膀胱癌，泌尿生殖窦和子宫。D.从E18.5大鼠胚胎除去膀胱和泌尿生殖窦。的，而实线表示的位置，以除去膀胱。虚线的黑色和白色箭头指示的上皮管。白色箭头指示的泌尿生殖窦间质细胞。
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图2。超声成像和大体形态衍生从UGSM和人类胚胎干细胞在体内组织异种移植。 ：A.超声成像的移植瘤生长允许活动物在实验过程中的分析。拍摄影像使用VEVO 2100小动物的超声（Visualsonics多伦多，ON）手术后8周。圆圈区域表示的组织异种移植肾脏表面上的生长。B.在实验终点，hES细胞结合用大鼠UGSM（rUGSM）肾表面（ 左图 ）上形成可见的组织肿块，hES细胞植入单独形成大的畸胎瘤预期（ 中间面板 ）;和UGSM单独植入不能形成任何明显的结构（ 右图 ）。
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图3。重组与灭鼠UGSM和完好的雄性裸鼠肾包膜下植入人类前列腺上皮细胞从人类胚胎干细胞系WA01（H1），ES细胞的形成 。后8周时间增长，人前列腺腺上皮形成记录AR，p63蛋白，和的人类受限制的粘合染色。主机阉割后的一个星期，AR阳性，的PSA阳性管腔层是不存在的，记录特征的雄激素依赖性。非恶性前列腺组织AMACR染色缺乏证明。此外，的CHRA阳性神经内分泌细胞的可探测性。非恶性人类前列腺组织被用作AR，PSA和p63的控制，作为阳性对照使用的前列腺肿瘤的癌特异性AMACR。
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Discussion
组织重组使用UGSM是一个非常有用的技术来探讨前列腺，导致前列腺癌症的发生的分子事件的发展。已被用于众多应用在前列腺研究中的感应电势UGSM，其中包括提高肿瘤的前列腺细胞系和肿瘤研究上皮间质的相互作用，并形成跨物种前列腺重组体。7,17-20适当的准备UGSM然而，实验成功，将导致污染啮齿动物上皮腺腔形成，可以混淆结果是至关重要的。因此，分离的UGSM从UGSE中（步骤2.4）是迄今为止在协议中最关键和最棘手的步骤。为了控制这种污染，大力鼓励使用技术来辨别物种之间，以及一个额外的实验组单独使用UGSM记录没有腺体形成从cellulaŗ污染物。
无饲养层的胚胎干培养试剂和方法的最新发展，允许纯人群胚胎干细胞培养，扩大和冻存。21,22 14此外，扩大使用慢病毒基因传递允许的稳定基因组的成立和利益的基因的表达。这些组合的进步允许纯的胚胎干培养遗传操作，感应电势前列腺胚胎UGSM的结合时，将允许在体内代人前列腺腺体的表达感兴趣的特定基因的。此外，这种技术将可以诱导多能干细胞系（iPS细胞）来自成年主机和从基因改造的细胞。23,24使用定义的蛋白质，我们表明，人类胚胎干细胞衍生的人类前列腺上皮细胞出现非常相似成人人类前列腺上皮细胞，但在一个全球性的分子水平上肯定是有某些基因表达的差异，应予以考虑。考虑到这一点，研究者应使用扩大样本规模，并考虑激光捕获显微切割（LCM）为基础的方法和比较基因表达分析平台，以验证他们的组织分子公司相比，成人的人体组织。然而，人类前列腺腺上皮使用串联培养和馈线的干细胞系的形成有可能促进前列腺功能和癌症的发生有关的众多的分子水平的研究。
我们的技术利用两个UGSM和人类胚胎干细胞，从而能够使用慢病毒感染和流量的方法，以及更精确的控制细胞数量进行排序的单细胞悬浮液。然而，这可以削弱感应电势UGSM。另一种方法是使用前的非游离UGSM（第2.5步）后，胶原酶消化），要么直接与ES细胞，或嵌入细胞内胶原溶液孵育4植入肾包膜下，这些组织的替代技术将是使切口在肾囊，肾包膜下创建一个小口袋之上肾脏和身体细胞质量放在口袋内，4,20。
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Disclosures
作者提出的工作有没有利益冲突。
Acknowledgments
我们希望大学由Arieh已Shalhav博士率领芝加哥科泌尿外科，泌尿研究嘉莉博士RINKER谢弗主任的支持表示感谢。我们还想大学芝加哥综合癌症中心（UCCCC）LE BEAU米歇尔博士领导的支持表示感谢。我们还与，感谢专家技术援助的人体组织资源中心的核心设施马克林根博士的带领下，和莱斯利·马丁和玛丽·乔·菲克特援助。我们也感谢李特丽免疫组化核心设备运行。这项工作是由芝加哥外科部泌尿外科，该科大学，美国癌症协会的研究资助机构（ACS-IRG IRG-58-004）;癌症中心的支持格兰特（P30 CA14599）;布林森基金会;阿尔文鲍姆家庭基金;大学芝加哥癌症研究基金会的董事会; S.克雷格尔由霍华德休斯医学研究所的支持：到毕业的医学研究员髋部（56006772）和癌症生物学训练津贴（T32-CA09594）。最后，我们要感谢罗伯特·克拉克，和弥敦道Stadick博士VenkateshKrishnan，都为他们的批判性评价的稿件。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Hank’s Balanced Salt Solution (HBSS) | GIBCO | 14170 | |
| DMEM/F12 | GIBCO | 11330 | |
| R1881 | Sigma | 965-93-5 | Mix to 1 ug/ml in Ethanol (1,000x stock) |
| NEAA | GIBCO | 11140 | |
| Pen-Strep Solution | GIBCO | 15070 | 100x stock |
| Matrigel | BD Biosciences | 354230 | |
| KETASET (ketamine hydrochloride) | Fort Dodge Animal Health | NDC 0856-2013-01 | 100 mg/ml; dilute 1:10 in sterile saline |
| AnaSed (xylazine) | VET-A-MIX, Inc. | NADA 139-236 | 20 mg/ml; dilute 1:10 in sterile saline |
| Trypsin | BD Biosciences | 215240 | |
| Collagenase | Sigma | C2014 | |
| Ketoprofen | Fort Dodge | NDC 0856-4396-01 | 100 mg/ml; dilute 1:1,000 in sterile saline |
| Altalube eye ointment | Altaire Pharmaceuticals, Inc. | NLC 56641-19850 | |
| Leica MZ16 F Stereomicroscope | Leica | Any good dissecting scope can be used. | |
| Vannas spring scissors | Fine Science Tools | 15001-08 | |
| Syringe | Hamilton | 84855 | |
| Hamilton Needle, Small RN, 28 gauge, 0.5inches, Point Style #3 (Blunt) | Hamilton | 7803-02 | Custom Needle |
| Ethanol Prep Pads | Fisher Scientific | 06-669-62 | |
| Sterile Gauze Pads | Fisher Scientific | 22-415-469 | |
| Ethicon Vicryl Suture (4-0 FS-2) | MedVet International | J392H | Needle-in, dissolvable suture |
| Autoclip 9 mm Wound Clips | Becton Dickenson | 427631 | |
| PVP Iodine Prep Pads | Fisher Scientific | 06-669-98 | |
| Dissector scissor with blunt end | Fine Science Tools | 14072-10 | |
| Dumont fine tip forceps | Fine Science Tools | 11252-50 | |
| Needle holder with Scissor | Fine Science Tools | 12002-14 |
References
- Taylor, R. A., et al. Formation of human prostate tissue from embryonic stem cells. Nat. Methods. 3, 179-181 (2006).
- Cunha, G. R., Chung, L. W. Stromal-epithelial interactions--I. Induction of prostatic phenotype in urothelium of testicular feminized (Tfm/y) mice. J. Steroid Biochem. 14, 1317-1324 (1981).
- Cunha, G. R., Chung, L. W., Shannon, J. M., Taguchi, O., Fujii, H. Hormone-induced morphogenesis and growth: role of mesenchymal-epithelial interactions. Recent Prog. Horm. Res. 39, 559-598 (1983).
- Staack, A., Donjacour, A. A., Brody, J., Cunha, G. R., Carroll, P. Mouse urogenital development: a practical approach. Differentiation. 71, 402-413 (2003).
- Cunha, G. R., et al. Normal and abnormal development of the male urogenital tract. Role of androgens, mesenchymal-epithelial interactions, and growth factors. J. Androl. 13, 465-475 (1992).
- Cunha, G. R., et al. Growth factors as mediators of androgen action during the development of the male urogenital tract. World J. Urol. 13, 264-276 (1995).
- Aboseif, S., El-Sakka, A., Young, P., Cunha, G. Mesenchymal reprogramming of adult human epithelial differentiation. Differentiation. 65, 113-118 (1999).
- Marker, P. C., Donjacour, A. A., Dahiya, R., Cunha, G. R. Hormonal, cellular, and molecular control of prostatic development. Dev. Biol. 253, 165-174 (2003).
- Cunha, G. R., Sekkingstad, M., Meloy, B. A. Heterospecific induction of prostatic development in tissue recombinants prepared with mouse, rat, rabbit and human tissues. Differentiation. 24, 174-180 (1983).
- Van der Griend, D. J., et al. The Role of CD133 in Normal Human Prostate Stem Cells and Malignant Cancer Initiating Cells. Cancer Res. 68, 9703-9711 (2008).
- Van der Griend, D. J., Konishi, Y., De Marzo, A. M., Isaacs, J. T., Meeker, A. K. Dual-label centromere and telomere FISH identifies human, rat, and mouse cell contribution to Multispecies recombinant urogenital sinus xenografts. Prostate. , (2009).
- Vander Griend, D. J., Konishi, Y., De Marzo, A. M., Isaacs, J. T., Meeker, A. K. Dual-label centromere and telomere FISH identifies human, rat, and mouse cell contribution to Multispecies recombinant urogenital sinus xenografts. Prostate. 69, 1557-1564 (2009).
- Thomson, J. A., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282, 1145-1147 (1998).
- Ludwig, T. E., et al. Feeder-independent culture of human embryonic stem cells. Nat. Methods. 3, 637-646 (2006).
- Prokhorova, T. A., et al. Teratoma formation by human embryonic stem cells is site dependent and enhanced by the presence of Matrigel. Stem Cells Dev. 18, 47-54 (2009).
- Hameed, O., Sublett, J., Humphrey, P. A. Immunohistochemical stains for p63 and alpha-methylacyl-CoA racemase, versus a cocktail comprising both, in the diagnosis of prostatic carcinoma: a comparison of the immunohistochemical staining of 430 foci in radical prostatectomy and needle biopsy tissues. Am. J. Surg. Pathol. 29, 579-587 (2005).
- Wang, Y. A human prostatic epithelial model of hormonal carcinogenesis. Cancer Res. 61, 6064-6072 (2001).
- Yao, V., Parwani, A., Maier, C., Heston, W. D., Bacich, D. J. Moderate expression of prostate-specific membrane antigen, a tissue differentiation antigen and folate hydrolase, facilitates prostate carcinogenesis. Cancer Res. 68, 9070-9077 (2008).
- Cunha, G. R., Cooke, P. S., Kurita, T. Role of stromal-epithelial interactions in hormonal responses. Arch. Histol. Cytol. 67, 417-434 (2004).
- Xin, L., Ide, H., Kim, Y., Dubey, P., Witte, O. N. In vivo regeneration of murine prostate from dissociated cell populations of postnatal epithelia and urogenital sinus mesenchyme. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100, Suppl 1. 11896-11903 (2003).
- Yu, X. Lentiviral vectors with two independent internal promoters transfer high-level expression of multiple transgenes to human hematopoietic stem-progenitor cells. Mol. Ther. 7, 827-838 (2003).
- Anderson, J. S., Bandi, S., Kaufman, D. S., Akkina, R. Derivation of normal macrophages from human embryonic stem (hES) cells for applications in HIV gene therapy. Retrovirology. 3, 24 (2006).
- Takahashi, K., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 126, 663-676 (2006).
- Maherali, N., et al. A high-efficiency system for the generation and study of human induced pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 3, 340-345 (2008).
