Summary
Abstract
O nariz de mamífero é um órgão multi-funcional com estruturas internas intrincados. A cavidade nasal é revestida com vários epitélios, tais como epitélio olfatório, respiratória e escamosas que diferem acentuadamente em localizações anatômicas, morfologia e funções. Em ratinhos adultos, o nariz é coberto com vários ossos do crânio, limitando o acesso experimental para as estruturas internas, especialmente aquelas na região posterior, tais como o epitélio olfactivo principal (MOE). Aqui nós descrevemos um método eficaz para a obtenção de quase os tecidos nasais inteiros e intactos, com organização anatômica preservada. Usando ferramentas cirúrgicas sob um microscópio de dissecação, que sequencialmente remover os ossos do crânio em torno do tecido nasal. Este procedimento pode ser realizado em ambas as cabeças de pele de rato paraformaldeído fixos e recém-dissecados. O processo de desossamento inteiro leva cerca de 20-30 minutos, o que é significativamente mais curto do que o tempo necessário para experimental convencional de química baseadacalcificação. Além disso, apresentamos um método fácil para remover as bolhas de ar presas entre os cornetos, o que é fundamental para a obtenção de seções horizontais ou coronal e sagital finas intactas desde a preparação do tecido nasal. Tecido nasal preparado utilizando o nosso método pode ser utilizado para a observação de toda a montagem de todo o epitélio, bem como características morfológicas, imunocitoquímica, de hibridação de ARN in situ e os estudos fisiológicos, especialmente em estudos onde o exame específico de região e comparação de interesse.
Introduction
A cavidade nasal de mamíferos contém vários tipos de tecidos e órgãos que servem funções distintas. A cavidade nasal constitui a porção de entrada do tracto respiratório superior, o que permite viajar ar para dentro e para fora dos pulmões. Ar inalado passa através da cavidade nasal, onde é submetido a temperatura e humidade condicionado 1, bem como a limpeza ou a filtração para remover as substâncias tóxicos e irritantes e microrganismos infecciosos 2. Ambos os tratamentos são efectuados pelo epitélio nasal e subepiteliais tecidos, incluindo as glândulas e vasos e são críticos para proteger as vias aéreas inferiores e dos pulmões. Em adição ao seu papel na respiração e de defesa do epitélio, o tecido nasal também contém aparelhos sensoriais periféricos dos sistemas olfactivos e trigeminal, que detectam uma vasta gama de substâncias químicas na passagem de ar. Dependendo de qual o sistema é activado, a detecção sensorial dos produtos químicos no nariz pode provocar querum sentido de cheiro, irritação ou dor 3,4.
O sistema olfativo periférica é complexo e composto de vários órgãos sensoriais olfativos anatomicamente separados dentro da cavidade nasal. Entre eles, o epitélio olfactivo principal (MOE) é o maior, o que representa cerca de 45-52% do epitélio nasal em roedores 5 e está localizado na região posterior. Na região anteroventral, existe um par de estruturas tubulares conhecidos como o órgão vomeronasal 6, que sentar-se ao longo de cada lado do septo nasal. Dois pequenos agrupamentos adicionais de neurónios sensoriais olfactivos, conhecidos como o órgão de septo de Masera 7,8 e gânglio Grüneberg 9, reside ao longo do septo ventral e dorsal da região de entrada da cavidade nasal, respectivamente. Estes órgãos periféricos conter neuro-epitélio com características distintivas em morfologia, expressão marcador celular e função fisiológica. Juntos, eles detectar milhares de odormoléculas com requintada sensibilidade 10-12.
Além dos órgãos sensoriais olfactivos, na cavidade nasal também abriga outros sistemas sensoriais. Sabe-se que as fibras do nervo trigeminal peptidérgicas estão presentes no epitélio nasal, especialmente o epitélio respiratório 13,14. Algumas dessas fibras detectar produtos químicos tóxicos e irritantes e são responsáveis por iniciar reflexos protetores, tais como tosse e espirros 4,15. Compostos odoríferos e amargo Irritante também pode ser detectada por uma população de células recentemente descoberto quimio solitários (SCCs), muitos dos quais são inervados por fibras nervosas trigeminais 16-19. Estes CCEs estão localizados em maior densidade na região da entrada da cavidade nasal e os dutos de entrada vomeronasal, dando a entender que eles também podem ter uma função protetora 16-18. Assim, o epitélio nasal pode variar substancialmente em função, morfologia e composição celular em função da sualocalizações anatômicas.
Mesmo dentro de um epitélio único e especializado, existem diferenças regionais. O MOE é um exemplo. As linhas MOE vários cornetos, que são complicados e estruturas enrolado. Por causa deles, diferentes regiões da experiência de taxas de fluxo de ar diferentes Moe, e, portanto, diferente de difusão e taxas de depuração de moléculas de odor no ar 20. Além disso, sabe-se que os neurónios sensoriais olfactivos (ORS) que expressam um dado receptor de odor estão localizados numa das quatro zonas contornadas do MOE 21,22. Como esta diferença local afecta a resposta de um OSN a odorantes largamente não é conhecido. Além disso, algumas populações OSN exibem preferência regional. Guanilato ciclase-D (GC-D) expressando ORS têm distribuições zonais favorecendo as regiões cul-de-sac das ectoturbinates 23,24. Mais recentemente, verificou-se uma subpopulação de ORS canônicas que expressa transitória receptor potencial canal M5 (trPM5) e localiza-se preferencialmente nas regiões laterais e ventral 25. Estes resultados indicam que o MOE não é uniforme. No entanto, como estas diferenças regionais afectar codificação olfactivos não é compreendido. Isto é em parte porque a investigação aprofundada fisiológica do MOE e do nariz tem sido limitada pela dificuldade de obtenção de epitélio nasal intacto com organização anatómica preservados utilizando métodos correntes.
O epitélio nasal são predominantemente cercado pelos ossos anterior do crânio, incluindo o nasal, maxila, palatino, zigomático, e os ossos etmoidais. Em camundongos adultos e outros modelos de roedores, estes ossos são duros e difíceis de remover sem danificar o tecido nasal intimamente associada, especialmente dos cornetos delicados. Muitas vezes, descalcificação de base química é utilizada para amolecer ossos para permitir cryosectioning dos tecidos nasais para morfológica, imuno-histoquímica, e em estudos de hibridação in situ, no entanto, dependendo da idade do animal, do processo de descalcificação pode durar até durante a noite a 7 dias 24,26-28. Este tratamento também é limitada, porque requer tecido fixador ser preservada. Além disso, a descalcificação química pode ser dura e afetar a imunomarcação de alguns anticorpos sensíveis 29,30. Para os estudos fisiológicos, tecido vivo é necessário e, portanto, estas experiências são frequentemente executadas em ORS isoladas ou fatias de MOE obtidos a partir de recém-nascidos, cujos ossos do crânio são fina e macia 17,31,32. Estudos fisiológicos também podem utilizar os preparativos de montagem inteiros, dividindo a cabeça 25,33,34, mas geralmente apenas a superfície medial do nariz é facilmente acessível, limitando gravações fisiológicas em outras áreas.
Aqui, descrevemos, um método de desossa manual do efetivo para preparar tecidos nasais intactas com organização anatómica original preservada e morfologia. Nós sequencialmente remover os principais ossos do anteriorÉ necessário crânio sob um microscópio de dissecação para expor um epitélio nasal quase inteiramente intactas, mantendo os ossos finos cornetos intacta, a menos que os ratos são muito antigas e cryosectioning. Nós também estender o método para preservar a conexão entre os tecidos nasais e bolbos olfactivos, assim como o resto do cérebro, facilitando, assim, análise simultânea dos circuitos centrais e periféricos. O método pode ser utilizado para preparar o paraformaldeído fixo, bem como fresco, tecido nasal vivo. Assim, espera-se o nosso método para facilitar estudos morfológicos, imuno-histoquímica e fisiológico da respiração, olfato e nasal danos e doenças.
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Protocol
1. Rato Nariz Preparação
Usamos adultos camundongos C57BL / 6 fundo neste estudo. Todos os cuidados e procedimentos com animais são aprovados pelo Animal Care e Comitês de Uso (IACUC) da Universidade de Maryland, Baltimore County.
1.1 Adquirir o nariz de camundongos paraformaldahyde-fixados
Figura 1. Ossos de um crânio de rato A:. Vista dorsal do crânio B:. Vista ventral do crânio com a mandíbula removida. O crânio foi preparado a partir de um ratinho de idade de 40 dias. Ossos individuais são coloridos para melhor visualização. Clique aqui para ver a figura maior .
- Perfundir transcardially para corrigir camundongos individuais seguindo ªe protocolo de Lin et ai., (2008) 16. Resumidamente, os ratos foram profundamente anestesiados com tribromoetanol (Avertin 250 ug / g de peso corporal), transcardially perfundidos com tampão fosfato 0,1 M (PB, 30-50 ml), seguido por um agente fixador de fosfato tamponada, contendo 3% de paraformaldeído, 19 mM de L-lisina monocloridrato, e 0,23% de m-periodato de sódio (cerca de 35-50 mL). Pode-se também seguir as etapas no artigo Jove para perfusão animais 35.
- Utilizar um par de tesouras para cortar mandíbula (ou a mandíbula inferior) e retirar a pele da cabeça.
- Separa-se toda a cabeça do resto do corpo.
- Retire o paladar. Também, limpar e remover o tecido muscular e conjuntivo remanescente na superfície do crânio para obter a amostra representada nas Figuras 1A e 1B.
- Sob um microscópio de dissecção, remover o osso do crânio que cobre o cérebro e os bulbos olfactivos. Apare o excesso de tecido e ossos. Nãote, para a preparação de tecido estendido em que o cérebro e nariz permanecer ligado, apenas os ossos são removidos do crânio. Para as experiências de imuno-histoquímica, o tecido foi pós-fixada, durante 1,5 horas e transferidas para solução salina tamponada com fosfato 0,1 M (PBS) com 25% de sacarose durante a noite. Tecido nasal deve ser mantida durante todo o humidif dissecção por imersão na solução de sacarose tamponada várias vezes.
1.2 Adquirir o nariz de camundongos recém-sacrificados
- Ratinhos individuais foram transferidas para uma gaiola limpa e exposto a gás de CO 2, o que foi seguido por deslocamento cervical 5 min após o sopro final. Para reduzir o sangue no tecido nariz utilize uma tesoura para abrir a caixa e cortar o coração para permitir que o sangue escorra.
- Repita os passos 1.1.2 a 1.1.5, exceto a pós-fixação e crioproteção com 25% de sacarose. A amostra deve ser mantido humidificada e mantida com solução salina de Tyrode contendo (em mM): 140 de NaCl, 5 KCl, MgCl2 1, CaCl2 1, 10 piruvato de Na, 10 em D-glucose, e 10 N-2-hidroxietilpiperazina-N'-2-etanossulfónico tampão de ácido (HEPES, com pH ajustado para 7,4). Alternativamente, dobrar uma peça de Kimwipes, embeba-lo com uma solução de Tyrode, e colocar sob o espécime dissecando e ocasionalmente mergulhar o espécimen em solução a de Tyrode ou cair algumas solução sobre o tecido para o manter húmida para manter a viabilidade das células e dos tecidos .
2. Incisivo, Anterior Vomer e maxila remoção óssea
- Iniciar a partir de um ponto de vista ventral. Localize o osso vômer e quebrar o osso vômer ao longo de seu comprimento usando uma rongeur ou pinças com dentes para quebrar a maior parte ventral do osso.
- Usando fórceps serrilhados, remover os segmentos quebradas do osso vômer dobrando suavemente os fragmentos do osso para fora do órgão vomeronasal (OVN). Note-se, para os ratos menos de um mês de idade, ou se apenas interessados no MOE, estes dois steps pode ser ignorada.
- Segure a cabeça firmemente com uma pinça. Utilizar a alveolótomo para quebrar a porção frontal dos incisivos e da região anterior da maxila articulada entre os dois incisivos e do osso vômer.
- Ruptura da porção ventral da maxila direita na região imediatamente anterior ao arco zigomática até ao nível da placa zigomática dorsal.
- Virar o nariz para um ponto de vista dorsal. Use o rongeur para quebrar o anterior maxilar direito da placa zigomática dorsal. Todo o anterior maxilar direito da placa zigomática deve ser solto. Use as pinça fina para separar delicadamente qualquer tecido nasal subjacente à maxila, e em seguida, levante suavemente o fragmento de osso.
- Repita os passos 2.4 e 2.5 para soltar o dente incisivo esquerdo e maxilar anterior esquerda e depois removê-los do osso nasal foi removido.
3. Osso nasal e Dorsal retirada da placa zigomático
- Usar o fórceps ou serrilhada o alveolótomo remover o restante dos ossos frontal apenas caudais para os ossos nasais. Depois de retirar esse pedaço de osso, a parte caudal do osso nasal pode ser tomado com a pinça.
- Utilizar a alveolótomo para quebrar a porção anterior da arcada zigomática, o qual está ligado à placa zigomática.
- Aqui as pinça fina na borda lateral da extremidade dorsal da placa zigomática e virar suavemente o osso e removê-lo. Se o osso não está solto, utilize o rongeur para apertá-lo suavemente para soltá-lo para remoção.
- Utilizar as pinças finas ou uma lâmina de barbear para soltar o fio de sutura medial entre os ossos nasais direita e esquerda.
- Use o serrilhada pinça para agarrar a extremidade caudal do osso nasal direita. Mova cuidadosamente o osso de um lado para outro para separá-lo do tecido subjacente. É útil para mover as pinças ao longo do terceiro caudal do osso nasal para mover o lado do osso para o outro. À medida que o separa do osso nasal, lentamente levantar o osso a partir da extremidade caudal.
- Enquanto tele osso nasal é ligeiramente levantada, incline lateralmente o osso para revelar um afloramento laterais do osso que é forrado com tecido epitelial respiratória fina. Use uma pinça fina para libertar suavemente este tecido do osso nasal. Continue a levantar o osso nasal. Quando o osso está completamente separado do tecido subjacente, use uma tesoura para cortar o osso nasal no final rostral.
- Repita os passos 3.1, 3.5 e 3.6 para a remoção de osso nasal esquerda.
- Repita os passos 3.2 e 3.3 para o lado esquerdo do nariz.
4. Lateral retirada da placa zigomático
- Remova a placa zigomática um lado de cada vez. Ou placa zigomática pode ser removido primeiro.
- Do ponto de vista ventral, quebrar o maxilar inferior do arco zigomático até a ruptura atinge o arco zigomático.
- Do ponto de vista dorsal, pegue suavemente o arco zigomático e levantar a frente e lateral. Se a placa zigomática ainda está ligado a qualquer tecido, tomar a multafórceps e separam cuidadosamente as ligações entre o tecido eo osso.
- Repetir para a placa zigomática no outro lado do nariz.
5. Orbit remoção óssea
- Do ponto de vista ventral, quebrar o osso palantine entre os molares do nariz.
- Utilizar a alveolótomo para quebrar as três molares e da maxila de cada lado do nariz.
- Quebrar e remover quaisquer pedaços grossos restantes do osso ventral e posterior aos cornetos em cada lado do nariz.
6. Remoção etmóide
- Quebrar qualquer parte do osso etmóide salientes caudal aos cornetos. Isso é necessário para evitar a perda de tecido concha ao remover partes finas do osso etmóide cobrindo os cornetos.
- Para o lado direito do nariz, coloque as pinça fina na borda anterior do osso etmóide e remova-o suavemente. Se uma parte do osso permanece, repita esse procedimento até que todos osfino que cobre o osso das conchas foi removido. Os cornetos não precisa de ser retirada a maior parte das preparações. Em ratos idosos, a placa cribriforme torna-se frágil. Se cryosectioning do tecido nasal é necessário, remover pequenos pedaços da placa com uma pinça fina para reduzir o dano potencial causado pelo osso.
- Repetir passo 6.2) para o lado esquerdo do nariz.
- Remova todos os fragmentos de ossos restantes antes do corte. Nota: em animais com mais de um ano de idade, a região póstero do osso septo é um pouco espessa e difícil. Pode-se remover esta parte usando uma pinça fina. Inserir a ponta do fórceps para ambos os lados do osso para separar a porção dorsal do osso do septo e o forro de tecido epitelial. Use uma pinça para pegar o osso e manter o espécime. Use um outro par de fórceps para quebrar a parte superior óssea da parte inferior do septo cartilaginoso e removê-lo suavemente.
- Configure a bomba de vácuo aspirador.
- Coloque o nariz em um molde de incorporação. Submergir o nariz na mídia outubro
- Usar um vácuo para remover as bolhas de ar aprisionadas no interior do tecido do nariz. Este processo leva até 5 min.
- Depois de remover as bolhas de ar, definido o tecido na orientação desejada.
- Congelar a outubro e de tecido no molde usando gelo seco. O tecido pode, então, ser incorporado cryosectioned imediatamente ou armazenada a -80 ° C para uso futuro.
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Representative Results
Usando esse método, podemos obter de forma confiável tecido nasal quase inteiramente intactas. Figura 2A mostra uma imagem de amostra nasal adulto de uma cabeça paraformaldeído fixo. Neste modelo, todas as quatro sub-órgãos sensoriais olfactivos, incluindo a, órgão MOE do septo, o gânglio Grüneberg e VNO, estão intactas. Além disso, o epitélio respiratório e tecidos subepiteliais, tais como glândulas e vasos, são preservados. Nós utilizamos com sucesso este método de uma série de estudos em que se investigou a morfologia, a distribuição, a inervação do nervo, e a expressão dos marcadores de células em várias populações de células sensoriais especializados 16,17,36-38.
A figura 2B mostra uma amostra com o cérebro, bolbos olfactivos, e nariz juntos. Esta preparação prolongado é especialmente útil em estudos que requerem ligação entre os sistemas nervoso central e periférico olfactivos. Nós preparamos este espécime, removendo os ossos do crânio surrounding cérebro antes da remoção dos ossos faciais. Nosso método estendido permite aos investigadores para realizar experimentos sobre o sistema olfativo periférico e central em uma única preparação.
O tecido nasal mostrado na Figura 2 pode ser utilizado para a observação de toda a montagem, bem como para a preparação de secções de tecido. Figura 3A mostra uma secção de corte horizontal através de ambas as regiões de MOE e respiratória. Figura 3B mostra uma secção coronal cortado pelo meio do MOE. Nós manchou as seções com vermelho neutro para uma melhor visualização de vários tipos de estruturas epiteliais e submucosa em diferentes localizações anatômicas. Estes resultados demonstram que nossa técnica preserva até mesmo a delicada estrutura da concha MOE e organização anatômica do nariz, que permitem investigação abrangente e comparativa das alterações morfológicas e funcionais nasais em condições normais e patológicas.
Figura 2. Isolado nasal e tecido cerebral A:.. Vista dorsal do tecido nariz intacto dissecado usando o nosso método de desossa B:. Vista dorsal de um nariz e do cérebro com conexões neurais entre os sistemas olfativos central e periférica intacta Clique aqui para ver a figura maior .
Figura 3. Seções de tecidos nasais A:.. Uma seção horizontal mostrando epitélio olfativo e respiratórias, bem como outras estruturas nasais B: Secção coronal através do cornetos of a MOE no posterior do nariz. Ambas as seções foram 14 m de espessura e coradas com vermelho neutro MOE:. Epitélio olfatório principal RE:.. Epitélio respiratório Clique aqui para ver a figura maior .
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Discussion
Aqui, demonstramos um procedimento passo-a-passo para o isolamento de tecido olfactivo e respiratório intacto a partir do nariz do rato sequencialmente remoção dos ossos ao redor, enquanto poupando o tecido abaixo. Nós mostramos que a remoção cuidadosa de osso pode preservar até os tecidos mais delicados, na sua totalidade. Também compartilhar insights sobre possíveis modificações desta técnica, em que isolar tanto o cérebro eo tecido nariz juntos para preservar a conexão do nervo. Este novo método proporciona um meio para o isolamento de tecidos olfactivos e respiratória inteiras num espécime para processamento adicional em imuno-histoquímica, hibridação in situ de ARN, e as experiências fisiológicas.
Vantagens da remoção de osso
Antes que o nosso método, os agentes de descalcificação eram normalmente utilizados para amaciar os ossos para o seccionamento do tecido e imuno-histoquímica. No entanto, dependendo do tamanho do osso e da idade dos animais, descalcificaçãopode ser um processo demorado que exige incubação tecido ósseo descalcificadores por horas ou mesmo vários dias 29,30. Os agentes vulgarmente utilizados também contêm ácidos, que podem ter efeitos sobre o tecido que podem alterar ou impedir, imunomarcação 29,30. Para combater isso, alguns pesquisadores usam o ácido etilenodiaminotetracético (EDTA) solução para seqüestrar íons de cálcio do osso 24,26-28. Este método requer também de descalcificação dias. A dissecção mostrado aqui pode ser realizada em cerca de 20-30 minutos e não exige a aplicação de quaisquer soluções químicas, que podem alterar o stainability de tecido.
O método também pode ser usado para obter tecido nasal intacto de narizes recentemente dissecados, proporcionando uma vantagem para a obtenção de tecido vivo para gravações fisiológicas. Por exemplo, as fatias de nariz são geralmente usados para o Ca 2 + imagiologia de ORS e células de suporte no epitélio olfactivo 31,32. Estas fatias tem de serpreparada a partir de ratos neonatais antes dos ossos nos tecidos circundantes endurecidos. No entanto, as amostras não são neonatal idênticos aos adultos porque o epitélio olfactivo continua o desenvolvimento e a maturação pós-natal. Utilizando este método, os pesquisadores podem obter tecido olfativo intacto de ratos mais velhos do que as idades neonatais. Isto apresenta uma vantagem significativa, especialmente em estudos de alterações dependentes da idade.
Modificações e resolução de problemas
Nós mostramos uma seqüência eficaz para remover os ossos ao redor. No entanto, há outras sequências de remoção óssea para obter tecidos nasais intactas, e o procedimento passo a passo pode ser modificado dependendo das necessidades individuais do investigador e os tecidos de maior interesse. Por exemplo, se o órgão vomeronasal for necessário, o osso vômer deve ser removido no início do procedimento, uma vez que há mais do osso cobertas as áreas de agarrar para manter o tecido no local desejado durante a remoção. Por adapting o procedimento para cada aplicação, os tecidos de interesse são mais susceptíveis de se manter intacto durante o processamento. Os ossos nasais também tendem a ser difíceis de remover, tal como o tecido que se agarra abaixo dos ossos e, muitas vezes, lágrima como os ossos são retiradas. Além abanar os ossos nasais como mostrado no vídeo, pequenas pinças pode ser inserido suavemente entre o osso nasal e do tecido subjacente para ajudar a mover o tecido para baixo e para fora a partir dos ossos durante a remoção.
A dissecação também varia ligeiramente, dependendo da idade dos ratos. Em ratos jovens, os ossos tendem a ser mais suaves, enquanto que os ossos dos ratinhos mais velhos são mais frágeis e fundidos com os ossos fortemente vizinhas em algumas regiões. Osso de baixa densidade é mais fácil de separar e remover em pedaços pequenos do que osso mais duro. Esta diferença pode ser facilmente superado usando uma pinça para marcar ou arranhão nas ligações entre os ossos para ajudar na sua separação e remoção limpa. Em animais mais velhos, o póstero região do septo é um pouco grosso e duro e deve ser removido antes de cryosectioning. A porção óssea do septo pode ser removido como descrito no procedimento 6.4. Embora existam pequenas diferenças na dissecação de ratos mais velhos e mais jovens, a idade não é um fator limitante. Em nossos estudos, nós preparamos com sucesso tecidos nasais intactas de ratos que variam de 14 dias a dois anos de idade.
Não há nenhuma diferença significativa entre os passos de dissecação utilizadas para o nariz fixador fixa e para o nariz fresco, embora o tecido fresco é mais suave e requer manipulação mais cuidadosa. Em ambas as preparações, mantendo o tecido humedecido durante a dissecção é importante. Não é necessário para executar a dissecção do tecido fresco em salina tamponada, no entanto, mergulhando periodicamente o tecido em solução de Tyrode ou gotejamento da solução sobre o tecido, enquanto dissecação é crítica, uma vez que irá manter o tecido humedecido e nutrientes fornecidos para manter a sua vESPONSABILIDADE.
O processo aqui apresentado pode ser ainda modificada para incluir a remoção de osso que deixa tanto o cérebro intacto e do nariz num espécime (Figura 2B). Esta modificação evita as conexões nervosas entre o cérebro eo nariz que passam através da placa cribiforme. Mais habilidade técnica e tempo são necessários para este dissecação que o nariz sozinho. No entanto, preservando as ligações a partir da periferia para o cérebro permite mais diversas aplicações deste método.
Limitações
Nós temos utilizado este método para preparar tecidos nasais para um certo número de estudos, incluindo o imuno-histoquímica e de ARNm de rotulagem em análise de hibridação in situ e foram rotulados com sucesso muitas proteínas em vias de sinalização, os marcadores de células coradas em diferentes populações de células, e examinou as características morfológicas e da distribuição de células através da cavidade nasal 16,17,36-39. Nós não explimitações erience em cryosectioning e imunomarcação. Para os estudos que requerem cryosectioning da preparação prolongada que mantém o cérebro e tecido nasal conectada em um único espécime, recomendamos o uso de camundongos com idade inferior a quatro meses desde que em ratos mais velhos da placa cribriforme frágil pode criar danos nos tecidos durante o corte. No entanto, para o tecido fresco destinado a registros eletrofisiológicos, os tecidos medial entre conchas não são facilmente acessíveis em toda a preparação de montagem. A remoção de pequenos pedaços de tecido ou a divisão em regiões discretas podem superar o problema. Porque convencional electro-olfactogram é feito na superfície medial do endo-cornetos 25,33,34, a nossa preparação do tecido pode permitir gravações de outras regiões com pouca manipulação.
Aplicações além de imuno-histoquímica
Existem muitas aplicações do procedimento para aqueles que dominam a técnica. Possível applicatíons incluem estudos zonais nos tecidos olfativos e respiratória, que, utilizando outros métodos, tem sido difícil obter intacto e em sua configuração anatómica original. Os aplicativos também existe para eletrofisiologia, permitindo em simultâneo múltiplas gravações integrais, tecidos frescos. Algumas destas aplicações, que são difíceis de realizar, utilizando técnicas existentes, são possibilitadas pelo nosso método desossamento. Além disso, este protocolo pode igualmente ser adaptado para estudos bioquímicos, genómico, e que necessitam de proteómica recolha de amostra consistente em várias regiões de comparação crítica.
Em resumo, temos desenvolvido um procedimento para acessar de forma rápida e confiável tecidos olfativos e respiratórios no nariz do mouse, removendo os ossos ao redor. Este método possui vantagens significativas sobre as técnicas vulgarmente utilizadas, tais como a descalcificação. Além disso, o nosso método não requer nenhum tratamento químico e, portanto, os tecidos não estão limitados à utilização em immunohistochemistry experiências, mas também pode ser aplicável para a hibridação in situ e os estudos fisiológicos. Assim, o nosso método é a forma mais rápida e direta para preparar o nariz do rato para posterior processamento. Esperamos que o nosso método vai facilitar estudos olfativos e respiratórias em regiões nasais.
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Disclosures
Os autores declaram que não têm interesses financeiros concorrentes.
Acknowledgments
Este trabalho foi apoiado por bolsas de investigação (NIH / NIDCD 009269, 012831 e ARRA administrativos suplemento NIH) para Weihong Lin. Agradecemos especialmente Mr. Tim Ford em UMBC por sua assistência técnica na filmagem e processamento. Gostaríamos também de agradecer ao Dr. Daphne Blumberg, Ms. Chere Petty em UMBC eo Sr. Nicholas McCollum da Olympus America Inc. por sua assistência em equipamentos de filmagem.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Dissection | |||
| Rongeur, 1.0 mm Jaw width | World Precision Instruments (WPI) | 501333 | |
| Fine forceps, Dumont 3 | WPI | 503235 | |
| Fine forceps, Dumont 55 | WPI | 14099 | |
| Fine forceps, Dumont AA | Fine Science Tools (FST) | 11210-20 | |
| Specimen forceps, Serrated | VWR | 82027-440 | |
| Operating scissors | WPI | 501753 | |
| Iris scissors, Straight | Miltex | V95-304 | |
| Dissection microscope | Olympus | SZ40 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Tissue embedding | |||
| Optimum cutting temperature (OCT) compound | Sakura Finetek | 4583 | |
| Plastic embedding mold | VWR | 15160-215 | |
| Aspirator vacuum pump | Fisher Scientific | 09-960-2 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Section staining | |||
| Neutral red | ACROS Organic | CAS 553-24-2 | Nuclei staining |
References
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