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Developmental Biology

体外测定菌落为表征的三效祖细胞从成人胰腺小鼠隔离

Published: June 10, 2016 doi: 10.3791/54016
* These authors contributed equally

Summary

体外集落测定法来检测自我更新和从成年鼠胰腺分离的祖细胞的分化被设计的。在这些测定中,胰祖细胞产生细胞集落在3维空间中含有甲基纤维素半固体培养基。用于处理单个细胞和单独的菌落的特征的协议进行了描述。

Abstract

茎和从成人胰腺祖细胞可以是治疗性的β样细胞为1型糖尿病治疗的患者的潜在来源。然而,它仍然是未知在成人胰腺中是否存在干细胞和祖细胞。使用CRE-LOX在成年小鼠世系追踪研究策略已经初见成效,无论是支持或反驳,β细胞可以从管道,那里的成人胰腺祖细胞可能存在于假定的位置而产生的想法。 这些体内 CRE-LOX谱系追踪方法,但是,不能回答的自我更新和多谱系分化两个必要定义一个干细胞的标准的问题。要开始解决这个技术差距,我们发明了胰腺祖细胞的三维殖民地化验。我们最初公布后不久,其他实验室自主研发的类似,但不完全相同,方法调用的类器官检测。相比于类器官测定中,我们的方法是采用甲基纤维素,其形成粘性溶液,允许在低浓度包含细胞外基质蛋白。含甲基纤维素的测定法允许容易检测和祖细胞的单细胞水平,当祖细胞构成的小亚群这是至关重要的分析,因为对于许多成人器官的干细胞的情况下。一起,从几个实验室结果表明小鼠胰腺祖细胞样细胞的体外的自我更新和多谱系分化。目前的协议描述了两个基于甲基纤维素集落实验表征小鼠胰腺祖细胞;一个含有鼠细胞外基质蛋白的市售制剂和其它人工细胞外基质蛋白已知为层粘连蛋白水凝胶。这里示出的技术是:1)的胰腺解离和CD133 +的Sox9 / EGFP的排序从成年小鼠+导管细胞,2)在S的单细胞操作orted细胞,3)单菌落分析使用微流体的qRT-PCR和整体卡口免疫染色,和4)主菌落解离成单细胞悬液,并重新电镀到次级菌落测定以评估自我更新或分化。

Introduction

胰腺是由三个主要的细胞谱系;腺泡细胞分泌消化酶,导管分泌粘蛋白,抵御病原体和运输消化酶肠道,内分泌细胞分泌的激素,包括胰岛素和胰高血糖素,即保持血糖平衡。在胰腺的胚胎发育,早期导管细胞能够在成年动物1,2的胰腺引起三个谱系三效祖细胞的来源。因为成人干细胞和祖细胞,如骨髓干细胞,已成功地用于治疗各种疾病3,有在成人胰腺找到干细胞和祖细胞的强烈的兴趣。如果隔离和成人胰腺干细胞和祖细胞的操纵是可能的,这些细胞可用于治疗疾病,例如1型糖尿病,其中所述胰岛素分泌细胞是由自身免疫破坏。

使用体内 CRE-LOX谱系追踪技术,稻田和同事表明,标记有标记物,碳酸酐酶II成年鼠导管细胞,会引起所有三个胰腺谱系4。然而,使用其他导管标记物,如HNF1B 5和Sox9的2,可以得出结论,导管细胞不是在成年小鼠的β细胞的主要来源。

几年前,提出的是,上述讨论的原因,可能是由于缺乏,在字段6,7,的可以用于测量的自我更新和多谱系分化两个标准需要适当的分析工具定义的干细胞。提到体内 CRE-LOX谱系追踪技术以上可为在群体水平的祖后代关系的证据。然而,这一谱系追踪技术在其权力仅限于辨别是否单系祖细胞可以自我更新和分化成多种谱系。因为如果几个单效祖细胞,每一个不同的分化潜能,一起分析,它们可共同出现有多谱系分化能力的单细胞分析是重要的。此外,干细胞是通常成人器官的次要人口。一个次要的细胞群的活动可以由主要的人口被屏蔽。因此,从人群研究的否定结​​果并不一定表示不存在的干细胞。最后,CRE-LOX谱系追踪目前不允许自我更新的测量。

开始解决在胰腺祖细胞生物学,细胞集落领域的技术间隙7-11或类器官12-15 方法和设备表 )的市售制剂,以及另一个包含层粘连蛋白的水凝胶,限定人造的ECM蛋白7-11。祖细胞在含有半固体培养基的甲基纤维素进行混合。甲基纤维素是从木纤维制得的生物惰性和粘性材料,并已在造血细胞集落测定法16被经常使用。半固体培养基中含有甲基纤维素,限制了单一祖细胞的运动,使得它们不能重新聚集。然而,该介质是足够软以允许祖细胞生长和分化成在三维空间中的细胞的集落。继血液学家的传统,这是能够引起细胞集落胰腺祖细胞为:NAmed的胰腺细胞集落形成单位(PCFU)。 PCFUs,在小鼠含ECM-集落培养生长时,引起了被命名为“环”殖民地7囊性殖民地。在添加的Wnt激动剂,R-spondin1,成鼠含ECM-文化,一些环殖民地变成“密”殖民地7。在本文中,这两种类型的小鼠的ECM培养中生长的菌落被统称为“环/密”菌落。当戒指/高密度菌落分离成单细胞悬液,重新接种到含有层粘连蛋白凝胶文化,“内分泌/腺泡”菌落形成7。

使用单个菌落分析,发现大多数环/密集和内分泌/腺泡殖民地,无论是从成人(2-4个月大)7,11或青年(1周龄)9鼠胰腺,表达所有三个系标记。这表明大多数始发PCFUs的是三效。在小鼠含ECM-集落培养,成年鼠PCFUs有力地自我更新和扩大了11周约50万次文化7。鼠的ECM优先支持导管细胞过度内分泌和腺泡谱系的分化,而 ​​在层粘连蛋白的水凝胶的情况下,被鼓励鼠PCFUs优先分化成内分泌和腺泡细胞和少这样的导管谱系7,9,11。重要的是,胰岛素+胰高血糖素-单-激素细胞在层粘连蛋白凝胶培养产生并且响应分泌胰岛素对葡萄糖刺激体外 7,9,提示功能成熟。三谱系分化潜能7,9和个人PCFUs的自我更新11由单细胞显微操作, 证实,培养每孔一个细胞集落形成。总之,这些结果提供的证据表明有自我更新,三正POTENT,祖细胞样细胞在出生后小鼠胰腺,显示在三维培养的活动。

本文中描述的鼠PCFU测定是从现有集落检测设计用于从小鼠胚胎干细胞(mESCs)17分化的祖细胞。该协议是在另一个朱庇特出版物18记载的细节。培养组件和执行成人PCFUs鼠含ECM集落测定法所需的技术是一样的MESC衍生的祖细胞17,18。因此,测定的这些方面将不在这里重复;代替下列程序将得到解决:1)成人胰腺分离和分拣CD133 + Sox9的/ EGFP +导管细胞,从成年小鼠7,2)的分选的细胞的单细胞操纵,3)单菌落丰富PCFUs分析使用微流体的qRT-PCR和整体卡口免疫染色,和4)科勒尼的离解s转换单细胞悬浮液,重新电镀成鼠细胞外基质或层粘连蛋白的水凝胶菌落测定。

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Protocol

伦理声明:我们坚持开展研究,以确保质量和结果的完整性广泛接受的道德标准。动物实验是根据在市灵批准的机构动物护理和使用委员会的协议进行的。

1.成年鼠胰腺准备单细胞悬液

注意:在现有的出版物7,11,CD-1或B6背景的小鼠使用;这两个背景产生了相似的结果。转基因小鼠线(指定的Sox9 / EGFP)与增强型绿色荧光蛋白通过Sox9的基因位点19,20驱动的,是在CD-1后台创建。

  1. 安乐死用气体CO 2的1-2分钟,或直至呼吸停止3-5成年小鼠。接下来,执行对每只小鼠颈椎脱位。
  2. 解剖和准备胰腺。
    注:安乐死后尽快解剖老鼠。这是很重要的,以避免由于胰腺自身消化以事后的变化。
    1. 使使用剪刀鼠标的腹壁的中线垂直切口和打开腹腔。查找健脾和使用镊子轻轻提起。切脾并用剪刀胰腺的脾叶之间的结缔组织。
      1. 重复这个做法对胰腺十二指肠和胃瓣。放置胰腺组织中含有的冷Dulbecco改良的磷酸盐缓冲液(DPBS),0.1%牛血清白蛋白(BSA),以及青霉素和链霉素冰培养皿(P / S;完成指定为PBS / BSA溶液)。
    2. 使用细尖镊子解剖显微镜下去掉从胰腺脂肪组织。
      注意:这是对在下面的步骤中分离的胰腺细胞的健康至关重要。
      1. (可选)检查绿色荧光胰腺使用488-509 nm激发,以确保荧光体视显微镜下EGFP表达。
    3. 在组织培养罩,冲洗组织依次三次在3座100 25mm培养皿含有10ml冷PBS / BSA的。
  3. 生成组织的小块。
    1. 转移解剖胰腺到干燥无菌培养皿以除去尽可能多的PBS / BSA作为可能的,并且将它们传送到另一干培养皿在冰上。
    2. 通过加入2微升DNA酶I原液(1万单位[MU] / ml)的每1ml的PBS / BSA制备含有DNA酶I的PBS / BSA中。
      注意:此溶液被指定的PBS / BSA / DNA酶I.请〜200毫升该溶液中的一次,这将涉及一个分类实验。
    3. 使用弹簧剪刀2-3分钟,或直至组织为细片剁碎的胰腺。加2-3冷PBS / BSA / DNA酶I毫升在培养皿中止他们的组织片。
    4. 转移组织块到50ml锥形管在冰上用10毫升吸管。使总体积至10ml,用PBS / BS回收尽可能多的组织尽可能经过A / DNA酶湖
  4. 消化胰腺饮片成多为单细胞。
    1. 在350-450微升添加胶原酶B(100mg / ml的股票)/ 10毫升的组织片段和孵育在37℃下将组织在水浴8分钟,漩每3-4分钟。使用10毫升注射器用16个半ģ针起草并随后喷组织溶液向下在RT 50毫升管的壁。重复此七次。
      注:使用足够的力量打破了细胞簇,但避免产生气泡,可能会杀死细胞。
    2. 返回管至水浴,在37 °℃,8分钟和纷飞每隔3-4分钟混匀。注射器组织上下七次,如上所述,并将其放置在干培养皿所述组织液的样品(10微升)。观察下一个倒,相差的组织液,用10倍物镜光学显微镜。预计单个细胞和一些小型ÇELL集群存在。
    3. 处理冰上细胞上减缓或阻止胶原酶的活性这一点。我使用P1000移液器调整在4℃下的体积,使用冷的PBS / BSA / DNA酶I.离心机将细胞在400×g离心5分钟50毫升,和重悬在5ml冷的PBS / BSA / DNA酶的。
  5. 过滤器的收益率单细胞悬浮液和清洗。
    1. 通过一个70微米尼龙网过滤器杯,然后通过40微米尼龙网过滤器杯过滤细胞。
    2. 悬浮细胞在5毫升冷PBS / BSA / DNA酶我和计数细胞。
      注:对于2-4个月大的B6或CD-1小鼠中,每个胰腺可能产生〜5或10万个细胞,分别。这些数字可能不同实验者而异。如果过度的细胞碎片在计数发现,使体积至50ml用冷PBS / BSA / DNA酶I和离心将细胞在400×g离心5分钟,4℃。
    3. 调整细胞悬浮液的体积,以2×10的浓度使用冷PBS / BSA / DNA酶一7细胞/ ml

2.排序细胞对胰腺癌丰富菌落形成先觉

注:从B6小鼠,CD133 +而不是CD133 -细胞富集PCFUs 7,9,11。 CD133 +细胞代表总数的〜13%分离的胰腺细胞被应用于11毕竟门参数。从CD-1小鼠,CD133 + Sox9的-EGFP +细胞通常代表总的胰腺细胞的〜4%,和该细胞群体富集PCFUs 7。在CD133 + Sox9的/ EGFP +细胞分选这里描述。

  1. 染色游离胰腺β细胞。
    1. 拦截整个胰腺单细胞悬液通过温育用抗小鼠CD16 / 32的单细胞悬浮液以10微克/毫升的最终浓度在冰上5分钟,以减少非特异性结合。
    2. 除去1×10 6个细胞的等分试样(50µ升)与在5微克/毫升的最终浓度的同种型对照抗体,生物素缀合的大鼠IgG1染色,20分钟在冰上,漩每5-7分钟。
    3. 除去1×10 6个细胞(50微升)的等分试样,并保持在冰上作为未染色的对照。
    4. 染色细胞的其余部分用生物素缀合的抗小鼠CD133的第一抗体,以5微克/毫升的最终浓度,20分钟在冰上,漩每5-7分钟。
  2. 洗涤细胞。
    1. 通过在4℃下使体积至1ml用PBS / BSA / DNA酶I和离心机在400×g离心5分钟洗同种型对照和初级抗体染色的样品。重复此清洗步骤。
    2. 重悬在PBS / BSA / DNA酶I同种型对照和初级抗体染色的样品,因此最终浓度为2×10 7个细胞/ ml。
  3. 在2&#染色同型控制和初级抗体染色样品链霉亲(STV)标记的别藻蓝蛋白(APC)181克/毫升的最终浓度。孵育15分钟在冰上,漩每5-7分钟。
  4. 洗涤细胞和4',6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)染色。
    1. 用PBS / BSA / DNA酶I洗同种型对照和初级抗体染色的样品的两倍,如在步骤2.2。重悬在PBS / BSA / DNA酶I将细胞用DAPI(0.2微克/毫升的最终浓度)。同种型对照样品的最终体积应为0.5毫升
      注:确保主抗体染色样品的最终密度是适合使用的分拣机。 5×10 6个细胞的浓度/ ml的常规用于排序。
    2. 调整未染色细胞的0.5毫升的PBS / BSA / PS / DNA酶I.体积排序前过滤通过20微米网状所有细胞,并保持细胞在冰上在暗处。
  5. 细胞分选。
    1. 使用80微米或更大的喷嘴进行排序。
      注:鼠胰腺内分泌细胞很容易出现生理上的压力。何wever,鼠PCFUs不出现而引起的穿过分类器7的应力的影响。
    2. 获取分拣机上的细胞事件和分析参数。门的细胞前向和侧向散射区域,以排除细胞碎片7。门正向和侧向散射宽度以排除细胞双峰。门排除DAPI +死细胞7。选择选通根据来自同种型的对照细胞的值( 图1)的绿色荧光蛋白和CD133-APC信号参数。
    3. 收集分选的细胞成含有1.5的10ml DMEM / F12培养基补充有5%胎牛血清(FCS)的5毫升聚苯乙烯管。离心机在400 xg离心排序种群为任一的DMEM / F12或PBS / BSA / DNA酶的在小体积5分钟,重悬(〜200微升)我补充有5%FCS中。使细胞保持在冰上直到使用。
  6. 算从分拣机获得的CD133 + Sox9的-EGFP +细胞的数目。以一个10微升细胞样品和计数细胞用血细胞计数器测定细胞密度。
    推荐使用血球计,因为从分拣机机计数往往不可靠:注意。

3.板块的排序细胞进入细胞集落培养含鼠细胞外基质蛋白

注:请参照详细的协议单元的电镀进鼠含ECM-殖民地法在另一朱庇特公布18。

  1. 准备培养基。
    1. 制备含有DMEM / F12培养基,1%(重量/体积)的甲基纤维素,5%(V / V)的鼠细胞外基质的蛋白质,50%的培养基(体积/体积)从MESC衍生胰腺细胞样细胞的条件培养基,5% (v / v)FCS,10毫摩尔/升烟酰胺,10纳克/ ml人重组激活素B,0.1 nmol / L的艾塞那肽-4,和1ng / ml的血管内皮生长因子-A。用于产生条件培养基的方法是18别处详细描述。
    2. 750毫微克/毫升RSPO-1添加到该介质如果密集落形成是期望的。
    3. 孵育鼠细胞外基质蛋白质培养在37℃和5%CO 2的3周。

4.文化在1细胞每孔的排序细胞

注:以下步骤适用于使用手和嘴移液器的单细胞操纵。另一种方法是购买一个显微。一个典型的显微包括用操纵杆操作,机动平台,倒置显微镜。

  1. 准备玻璃巴斯德移液器。
    1. 使用本生灯,绘制出巴斯德玻璃吸管的尖端细点(〜30微米的开口)。玻璃巴斯德移液管应具有棉塞以创建一个屏障,从操作者的气流。
    2. 高压釜在121℃的火烧玻璃巴斯德移液管进行20分钟的灭菌。
  2. 准备96孔板文化。
    1. 准备冷半固体培养基一致ING到先前描述的方案18。
    2. 分配所述介质进入以100μl的低结合平底96孔板的内孔/孔用1ml注射器。填充外井用无菌水,以保持湿度。
    3. 广场上冰的培养皿中,直到使用。
  3. 准备排序细胞。
    1. 添加〜从分拣机收集到含10%FCS和1%甲基纤维素的5毫升聚苯乙烯管的DMEM / F12 / PS 2.5 ml终体积6000的细胞。剧烈摇晃的​​成分混合。等待5分钟或直到气泡浮到管的顶端。这一步骤并不需要在冰上进行。
    2. 用1ml注射器用18个半ģ针分配所述细胞溶液到两张35 mm培养皿1毫升/皿。
    3. 轻摇手工的菜流传于盘中的电池解决方案。不允许半固体培养基中在井卡恩的余量达到35mm培养皿的边缘,因为单个细胞OT明确使用倒置显微镜进行观察。
  4. 准备工作区围绕一个显微镜。
    1. 使含有DMEM / F-12培养基和1%甲基纤维素而没有任何细胞的溶液('无细胞'中),并分配所述溶液(每皿1毫升)(如在4.3.2中描述)到两张35毫米的培养皿中。
    2. 清洁和擦拭周围用70%的酒精溶液倒置相差显微镜的工作区。
  5. 组装与嘴部的移液器。
    1. 挑选在步骤4.1准备的无菌玻璃巴斯德吸管。 1毫升塑料枪头的大端附着到玻璃巴斯德吸管的顶端。 1毫升的塑料枪头的小端连接到一个薄壁的橡胶管的一端,和吹口的管的另一端。使用用于拾取同一组的多个小区在同一玻璃吸管。
    2. 制定,由口吸入,小体积(〜10至50微升)“无细胞”半固体溶液在步骤4.4.1与玻璃巴斯德吸管制成。
      注意:在玻璃巴斯德移液管的窄开口的半固体溶液产生流动阻力,并提供一屏障,以防止被拾起细胞的污染。
  6. 选择一个单细胞。
    1. 将包含在显微镜舞台上的排序细胞35毫米盘并取下盖子。
    2. 发现用10X物镜和聚焦在合适细胞的细胞中挑选出来的。
    3. 发现和枪头的开口放置感兴趣的细胞旁。通过口施加吸力。
      注:细胞的运动应该是相当缓慢的,所以不存在的过程以后过程中丢失的细胞的风险。进入吸管的开口单元的运动应该是可见的。如果流移动过快,具有较窄的开口改变到吸管。
  7. 存款单细胞到文化嘛。
    1. 一旦该细胞是在吸液管,用舌头通过阻断口形件的开口以停止流动。从半固体培养基吸尖端,以确保半固体介质停止流动之前短暂停顿。
    2. 放置吸管尖成井在步骤4.2中制备的96孔板中。轻轻吹嘴部推动细胞慢慢地。标记井的细胞被沉积后,为了避免两个小区镀入井中。
  8. 确保单个细胞在文化很好地。
    1. 将枪头在“无芯”步骤中4.4.1准备。同时观察尖端的显微镜下的开口,压出剩余的半固体溶液。期望无细胞流出吸管尖。
    2. 仔细检查,发现在文化以及那​​里的单细胞植入的位置。
  9. 培养在5%的单电池在37℃ CO 2达到3周。

5.从半固体培养微流控定量RT-PCR分析挑选单个菌落

注:三个星期后镀排序CD133 + Sox9的/ EGFP +细胞进入鼠含有ECM集落测定法中,环或密集菌落形成7( 图2)。当振铃/密菌落离解成单细胞悬浮液,并重新接种到层粘连蛋白凝胶培养,被后产生内分泌/腺泡菌落大约一周7( 图2)。确定每个集落的细胞系组成,微流体定量RT-PCR分析被用于检测系标记7的表达。对于预扩增,集落是在含有TaqMan探针混合,反应缓冲液,和的SuperScript III 21主混合物混合。的48.48阵列芯片随后用于微流体PCR反应21。

  1. 制备预扩增PCR混合含有48探头。
    1. 吸取1.5μl,以1.5毫升管各的TaqMan探针(20倍的股票)的。添加78微升TE缓冲液中以调节音量,以150微升。
  2. 从制造商21以下协议准备主结构。
  3. 将9微升混合液到每个0.2毫升薄壁反应管适合PCR和重复此步骤达48管。
  4. 匹克从半固体培养单菌落。
    注:环/密克隆比内分泌/腺泡菌落较大,直径从50〜400微米9,11。因此,单环/密菌落使用与该被弯曲成弯曲形状的10微升枪头配备一个P10移液器拾取。采摘小内分泌/腺泡集落( 图2),请参阅步骤4。
    1. 找到的在高倍率下( 例如 ,20X物镜)利益群体,缩小放大率,而aspiratË殖民地。 (可选的)取菌落的相位对比图像在此步骤以记录菌落的可见特性。
    2. 转移菌落到含有9微升主结构的PCR管。
    3. 选择下一个殖民地。在总额高达45殖民地政策有可能根据PCR运行进行分析,留下3点的控制。
  5. RNA提取和cDNA合成用预扩增。
    1. 大力进行热反应前VORTEX样品。
    2. 根据制造商的说明21执行热循环的反应。戒指/密克隆需要14个周期,内分泌/腺泡殖民地需要16-20个周期,单细胞需要22个周期。
      注意:预扩增的cDNA可以存储在之前的微流体PCR分析-20℃。
  6. 运行随后的PCR反应中,使用微流体芯片,根据制造商的说明21。
  1. 嘉实和修复殖民地。
    1. 拿起殖民地在显微镜下,在步骤4或5.4,并将其添加到4%多聚甲醛溶液。孵育O / N在4℃轻轻摇动。
    2. 洗净用PBS殖民地两次,在室温10-30分钟。与石蜡密封1.5毫升管存储固定殖民地在4℃。
  2. 染色与抗体的殖民地。
    1. 转移的菌落到96孔黑色板的一个孔与含有200微升封闭缓冲液(5%驴和/或山羊血清,0.1%的Triton X-100在1×PBS中)一个透明底部。孵育O / N在4℃轻轻摇动。
    2. 稀释一级抗体对预先确定的浓度:用封闭缓冲液( 例如 ,1 500为仓鼠抗粘蛋白1抗体)。转移菌落到一个干净的孔用200μl初级抗体,并轻轻摇动孵育O / N在4℃。 W¯¯用PBS含有0.1%Tween 20的转移的菌落到一个新的井用200μl1×PBS中的/ 0.1%吐温20 10分钟在RT每次洗涤灰分菌落3次。
    3. 稀释二级抗体,以预先确定的浓度( 例如 ,1:2,000山羊抗亚美尼亚仓鼠抗体)使用封闭缓冲液。保持在黑暗中的溶液。转移菌落清洁含有200微升的二级抗体的孔中,并在室温下孵育2小时。用PBS洗菌落3次/ 0.1%吐温20,如在步骤6.2.2。
  3. 反染色菌落DAPI和可视化与激光共聚焦显微镜。
    1. 转移到菌落井含300nM的DAPI PBS并在室温下孵育5分钟。
    2. 转移DAPI染色殖民地35毫米的玻璃底培养皿可视化。广场上的殖民地,以防止水分蒸发的顶部盖玻片。
    3. 使用共聚焦显微镜捕捉图像。为了形象化DAPI stainin克,使用730-950纳米双光子激发波长。使用氩激光以458纳米的波长来激发与519和561纳米的发射波长的荧光染料。使用一个氦氖激光器的波长633nm具有665nm的发射波长来激发荧光染料。

7.分离并重新盘主环/密集殖民地变成次要殖民地化验

注意:所有程序应当在无菌条件下进行。避免冷休克的细胞在此过程中尽可能多地,例如将细胞在冰上或洗涤细胞用冷PBS / BSA中。这种做法减少再镀细胞的活力。

  1. 准备解决方案。
    1. 预温水洗涤缓冲液(DMEM / F12; P / S; 0.1%BSA)在37℃水浴中。
    2. 预温96孔板(平底;低结合)在37℃培养箱。加入100μl100%FCS的在板的一个孔与100μl的0.25%胰蛋白酶-EDTA溶液添加到第二好。
  2. 收集殖民地。
    1. 挑选和池共使用10微升枪头原代培养物20个或更多环/密菌落,如在步骤5.4中描述。
    2. 放置菌落在温暖(至少RT)洗涤缓冲液(〜1000微升)在1.5ml管中并旋转,在400×g离心5分钟。去除上清。
  3. 离解成菌落单细胞悬液使用胰蛋白酶。
    1. 传输剩余量(20微升或更小),它包含菌落到包含暖胰蛋白酶溶液(在7.1制备)的井。
    2. 孵育所述板在37℃培养箱(未水浴)1.5分钟。取出板和吸管殖民地几次。在37℃下再1.5分钟。
    3. 取出板和吸管上下几次,打破了殖民地。检查在显微镜下看能否克隆已主要分散成单细胞悬液。避免殖民地的过度消化。
  4. 停止添加FCS的胰蛋白酶反应。
    1. 转移100μl的温暖的FCS到包含细胞的孔。移液器上下几次。转移细胞到含1000微升温水洗涤缓冲液1.5 ml的管中。离心在400×g离心在RT 5分钟。
    2. 用温缓冲液洗两次。
    3. 重新悬浮细胞在〜200μl的缓冲液或培养基。
  5. 算使用血细胞计数器单元的数目。保持细胞悬浮液在RT。
  6. 重板解离细胞到含或鼠ECM蛋白(5%体积/体积)或层粘连蛋白的水凝胶(100微克/毫升)次级菌落测定并用5%的CO 2孵育细胞在37℃。
    注:对于重新电镀细胞进入小鼠细胞外基质蛋白,使用每孔和文化2,500-5,000细胞2-3周。对于重新进入pating层粘连蛋白凝胶文化,用每孔和文化10,000-25,000细胞7-12天。

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Representative Results

成人胰腺祖细胞可以通过荧光激活细胞分选( 图1)来富集。这里使用的Sox9的/ EGFP转基因小鼠线作为GENSAT脑图谱项目19的结果被首先产生,并且EGFP报告是含有细菌人工染色体的控制下〜75 kb的上游和〜150 kb的Sox9的20的下游序列。在这些小鼠中,EGFP高效和特异性22标签胰管。胰腺采购和离解成单细胞悬浮液,并与生物素缀合的抗CD133抗体,接着用与STV-APC缀合的二抗染色染色。将得到的细胞通过用适当的门控参数( 图1)流式细胞术分析。使用不同的门控参数获得的细胞可被分类,并接种到含甲基纤维素集落测定法集落形成。在以前的研究中,有人指出,菌落形成能力在排序CD133 +的Sox9 / EGFP +导管细胞7只发现。

形成在含甲基纤维素集落试验中菌落根据其形态分类,如使用一个倒置,相位相反,光学显微镜( 图2)观察到的。接着,个别菌落手工采摘和分析由微流体的qRT-PCR分析基因表达( 图3)或通过整个安装免疫染色用于蛋白质表达( 图4)。在已发表 ​​的研究7,9,11,人们发现许多单个菌落表示管道(粘蛋白1),腺泡(淀粉酶)和内分泌(胰岛素)细胞谱系标记物,这表明这些菌落多数起始PCFUs的是三效。三种细胞谱系的在各菌落的比例然而,是由种类和存在于含甲基纤维素集落测定法-7,9- ECM蛋白的浓度的影响。鼠细胞外基质蛋白刺激PCFUs的自我更新和导管细胞分化而粘连凝胶优先支持的内分泌和腺泡细胞谱系7,9,11的分化。

图1
图1. 流式细胞仪从表示两个导管细胞标志物,包含Sox9的基因位点驱动的EGFP记者被用来CD133和Sox9的。Sox9的/ EGFP转基因小鼠染色模式成年小鼠分离的胰腺细胞的分析 。一位代表分选门(红色框)胰腺癌CD133 +的Sox9 / EGFP +细胞所示。 CD133 +的Sox9 / EGFP +细胞富集PCFUs 7。LES / ftp_upload / 54016 / 54016fig1large.jpg“目标=”_空白“>点击此处查看该图的放大版本。

图2
在含有甲基纤维素集落测定法产生 图2 的菌落具有不同形态。环的代表性显微照片,从通过可见光照射的相位差显微镜密集和内分泌/腺泡菌落被示出。当新鲜排序PCFUs铺板到含有小鼠ECM蛋白并培养3周7培养基中产生环和密菌落。内分泌/腺泡菌落重新电镀离解的环或密集落细胞向培养基中含有层粘连蛋白的水凝胶,并培养7〜1周后形成的。对于环和密克隆比例尺= 100微米。对于远藤/腺泡殖民地= 25μ比例尺;:M 请点击此处查看该图的放大版本。

图3
在表达了导管,腺泡和内分泌细胞标志物的小鼠细胞外基质蛋白生长 图3. 单个菌落。各个环菌落微定量RT-PCR分析的代表性结果。每一列代表一个殖民地。基因的表达水平在这里表示为热图,与表示高表达和表示低表达的更冷颜色的暖色。许多单菌落的表达中的各个面板为指示管,内分泌或腺泡细胞谱系的标志物的基因中的至少一个。这些数据表明,许多个体菌落表达三谱系标记物,并表明,大多数的始发PCFUs为三效。这个数字从先前公布的数字7修改。 请点击此处查看本图的放大版本。

图4
图4. 两个环形菌落表达的导管蛋白标志物黏蛋白1的代表性结果整个安装环菌落染色,呈现出导管标记黏蛋白1(绿色)的表达。细胞核复染用DAPI(蓝色)。在这些环殖民地许多细胞表达黏蛋白1蛋白。这与微流体定量RT-PCR结果显示,在小鼠ECM蛋白生长环菌落表达mucin1和其他导管细胞标记物的高水平( 图3中温暖的颜色)是一致的。比例尺代表第50微米。 请点击此处查看该图的放大版本。

图5
图5. 胰腺细胞集落测定法自我更新和在培养单个祖细胞的多谱系分化的测量结果。代表性的工作流提出。我们的胰腺细胞集落测定法含有粘性材料,甲基纤维素,以使培养基变为半固体。半固体介质限制的运动,并阻止单祖细胞的聚集(以红色表示)。然而,该介质是足够软以允许单个祖细胞自我更新和/或分化,和长成的细胞的集落(由多个红色圆圈表示)。与此相反,单个细胞不具有集落形成的能力,<EM>即非祖细胞(蓝色表示),继续作为单细胞或培养死亡一段时间。甲基纤维素还允许在低浓度的细胞外基质蛋白,如5%的小鼠细胞外基质蛋白和100微克/毫升层粘连蛋白凝胶的包容性。 请点击此处查看该图的放大版本。

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Discussion

胰腺菌落测定和单个菌落分析这里描述通过在解密造血祖细胞的生物学在过去几十年23都发挥主要作用的含有甲基纤维素造血集落测定法启发。在这些测定法( 图5),解离胰腺细胞铺到与支持环,密集或内分泌/腺泡菌落7的形成适当的生长因子和ECM蛋白半固体培养基含有甲基纤维素。那就是能产生细胞的殖民地单祖细胞被称为PCFU。通过表征采用实时定量微-PCR和全挂载免疫单个菌落,始发PCFUs的血统潜力可以推断。我们发现大多数成人鼠PCFUs的是三效,能够在体外 7,9引起导管,腺泡和内分泌谱系的细胞。虽然MURINE细胞外基质蛋白鼓励采取管沿袭三效PCFU的分化,层粘连蛋白凝胶可强健内分泌腺泡细胞谱系分化7,9。为了评估PCFUs,环或在原代鼠细胞外基质细胞集落测定法生长的密集落的体外的自我更新能力,可解离成单细胞悬液,并重新接种到一个次级鼠的ECM集落检测7。结果发现,PCFUs扩展〜鼠细胞外基质蛋白50万次超过11周4。的关键步骤包括去除从解剖胰腺的脂肪组织,避免过度消化胶原酶胰腺细胞,并重新电镀之前最小化冷休克到离解的振铃/密集落的细胞。掌握单个细胞的显微操作可能需要一些时间;耐心和实践是必需的。

相比其他胰腺祖细胞分析,包括二维培养24时,Suspension“pancreasphere”25和类器官测定12-15,这里所描述的含甲基纤维素集落测定法的主要优点如下。首先,在加入和ECM蛋白的调谐到一个宽的浓度范围内可以容易地实现。这是因为,甲基纤维素是赋予了半固体培养基的三维性质的物质。与此相反,类器官培养方法依赖于鼠ECM蛋白,其存在于33%V / V或更高的固化。值得注意的是,小至1%的鼠细胞外基质蛋白可以抑制内分泌细胞9的分化,强调在祖细胞测定的ECM蛋白浓度的重要性。第二,菌落均匀分布在培养分布良好,可以精确地计算。第三,单菌落可以容易地精心挑选用于随后的分析。第四,含甲基纤维素半固体培养基是易于维护,并且没有介质改变培养物的过程中必需的。最后,大量的细胞(每个24孔板25,000个细胞)可以被镀在这些集落测定法检测,这使得它们有效地用于检测祖细胞的活性,即使它们的铺板的细胞之间的次要人口。

这里所描述的胰腺祖细胞的测定法是基于功能性的,而不是标记为基础,分析胰腺祖细胞。这意味着,胰腺祖细胞可以在不知道他们表达什么标志物进行研究。这一点很重要,因为没有什么特异性标志物成人胰腺祖细胞可表达知之甚少。此外,对于胚胎胰腺祖细胞标记物可能不足以用于研究成年祖细胞。通过使用功能分析,可以开始由第一确定亚群体具有PCFU活性,如CD133识别特定祖细胞标记+ </ SUP>说明这里的Sox9 / EGFP +细胞。这可以随后鉴定,使用RNA-SEQ,这被差异由含PCFU群表达的基因。候选标记然后可测试和测定法如体外和跟踪的祖细胞的分化能力的体内谱系追踪技术验证。

在体外含有甲基纤维素集落测定法的限制是三倍。首先,虽然测定通过提供ECM蛋白和生长因子,以在培养三维空间中的胰腺祖细胞模仿胰腺的体内微环境,条件是不相同的。另外, 在体内上皮细胞的结构由解离破碎成单个细胞,其可以具有重要的影响。因此,这将是重要的使用体内验证祖细胞在后续研究18。这些不确定的成分可能会影响对祖细胞的特异性生长因子的作用,并间接地需要更多的工作,以创建一个完全定义的一组培养条件。最后,世系追踪实验证明腺泡到β细胞26,27或α细胞对β细胞28转换成年小鼠体内 。这里所描述的甲基纤维素培养条件可以是特异于仅管到β细胞转换。可能需要其他未知的培养条件的非导管细胞转换为β细胞的文化。

有几个实例,其中故障处理可能是必要的。例如,如果解离细胞成群一起,使用在溶液中较高剂量DNA酶I的。 DNA酶I重要的是要防止因的DNA莫解离的胰腺细胞的缠结lecules由死细胞释放(见步骤1.3.2)。

另外,如果切碎组织坚守在10毫升吸管,百果组织成小块。 10毫升吸管的开放应该是足够宽的组织块胶原酶消化后通过。如果件卡住在10毫升吸管的尖端,这表示由弹簧剪刀组织的切碎不充分(见步骤1.3.4)。

可能出现的另一个问题是在从解离的胰腺细胞( 未分选的细胞)的小鼠ECM蛋白没有菌落生长。如果发生这种情况,千万不要尝试在胰腺分解步骤,打破所有的集群成单个细胞,因为这可能会导致过量和细胞死亡。如果有大块,管返回到37℃,几个(4)分钟,注射器7倍以下。重新检查在显微镜下细胞。胶原酶B处理的最大时间为30分钟。 ðepending所使用的胶原酶,消化的最佳时间可能有所不同(见步骤1.4.2)。

此外,在培养孔鼠细胞外基质蛋白的团块可能孵育后观察到。为了避免这种情况,应确保所有接触到鼠细胞外基质蛋白接触培养组件都保持在冰上冷,以避免在37℃(见步骤3)培养之前过早凝固。

此外,它可能是在一个时间拾起一个小区到玻璃巴斯德吸管困难。解决的办法是减少镀在半固体培养基,以确保细胞具有从其它细胞足够距离的新鲜分选的细胞的密度。这将避免在同一时间捡多个小区。此外,最好是在附近放置半固体培养基的底部显微镜的焦点,因为它更容易用手拿起单个细胞平面附近没有微机械手(见步骤4.6.2)。

此外,也可能是不明确的单细胞操作是否成功。一个解决方案是实际实验前练习单细胞显微操作。一旦进入细胞在玻璃巴斯德吸管拾起,细胞转移到含有1ml的1%甲基纤维素溶液没有细胞在35毫米培养皿中('无细胞“在步骤4.4.1培养基中制备)。可视化和放置在焦点的巴斯德吸管在显微镜下的前端的开口,并推动细胞慢慢。期望单细胞慢慢出现围绕吸管尖,然后移动到“无细胞”培养基(见步骤4.8.2)。

最后,可以从分离主环/密克隆二次文化没有发生菌落生长。为了排除故障,保证从初级分离克隆细胞被保存在RT电镀纳入中学的文化了。对于鼠ECM蛋白培养,加最后18混合,从而最大限度地减少细胞低温,这可能会杀了从初级殖民地获得的游离细胞之前曝光的含有冷培养基管细胞。但是,细胞的再镀覆成层粘连蛋白的水凝胶并不需要前37℃孵育(见步骤7)在冰上进行。

总之,二含甲基-集落测定法已被用于从成年7,11和产后年轻小鼠9,10的胰腺表征祖细胞样细胞,以及来自年轻小鼠10的肝脏。未来的应用程序将在从尸体胰腺器官人集落形成祖细胞的鉴定和表征被引导。

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Disclosures

作者什么都没有透露。

Acknowledgments

我们感谢布朗露西和亚历山大Spalla从流式细胞仪分析的核心希望之城协助分拣。这项工作部分由健康(NIH)全国学院授予R01DK081587和R01DK099734到HTK,并U01DK089533以ADR,并通过国家科学基金会资助NSF-DMR-1206121和加州再生医学研究所授予RB5-07398到DAT支持受支持从约瑟夫·雅各布斯J.研究所分子工程医学在加州理工学院DAT,和来自奥克斯纳德基金会和埃拉·菲茨杰拉德基金会HTK也表示感谢。

资金来源:这项工作部分由健康(NIH)全国学院授予的支持和R01DK081587向R01DK099734 HTK,并U01DK089533以ADR,并通过国家科学基金会资助NSF-DMR-1206121和加州再生医学研究所授予RB5-07398到DAT由约瑟夫·雅各布斯杂志支持研究所分子工程医学在加州理工学院DAT,和来自奥克斯纳德基金会和埃拉·菲茨杰拉德基金会HTK也表示感谢。研究本出版物中报道包含在流式细胞仪分析的核心和光学显微镜数码影像下奖号P30CA33572卫生的国家机构的美国国家癌症研究所支持的核心完成的工作。

研究赞助商:主办单位并未参与研究设计,收集,分析或数据的解释。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Murine ECM proteins (Matrigel) Becton Dickson (Franklin Lakes, NJ, USA) 354230 Stock kept at -20 °C
Laminin Hydrogel Provided by David Tirrell (Pasadena, CA USA) Stock kept at -20 °C
Methylcellulose Shinetsu Chemical (Tokyo, Japan) 1,500 centipoise (dynamic viscosity unit equal to 15 g/cm/sec) (high viscosity)
Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline Mediatech (Manassas, VA, USA) 21-031-CV
Phosphate Buffered Saline Gibco (Grand Island, NY, USA) 15070-063
50 ml Flacon Conical vial Corning Inc. (Corning, NY, USA) 352070
100 mm x 20 mm Suspension culture dish Corning Inc. (Corning, NY, USA) 430591
Bovine Serum Albumin Sigma (St. Louis, MO, USA) A8412
Penicillin/Streptomycin Gibco (Grand Island, NY, USA) 15070-063
DNase1 Calbiochem (Darmstadt, Germany) 260913
Collagenase B Roche (CH-4070, Basel, Schweiz, Switzerland) 11088831001 Stock kept at -20 °C
Anti-mouse CD16/32 Biolegend (San Diego, CA, USA) 101310 low endotoxin, azide free
PE-Cy7 Rat IgG2a κ Isotype Control Biolegend (San Diego, CA, USA) 400522
Rat IgG1 κ Isotype Control eBioscience (San Diego, CA, USA) 13-4301-82
Anti-CD133-Biotin eBioscience (San Diego, CA, USA) 13-1331-82
Anti-CD71-PE-Cy7 Biolegend (San Diego, CA, USA) 113812
Streptavidin-Allophycocyanin Biolegend (San Diego, CA, USA) 405207
4',6-Diamidino-2-phenylindole Invitrogen (Waltham, MA,  USA) 3571 Stock kept at -20 °C
Anti-mucin 1 Thermo Fisher Scientific (Waltham, MA USA) HM-1630-P1
Dylight 649 Goat anti-Armenian Hamster Jackson Immuno (West Grove, PA, USA) 127-495-160
Dulbecco's Modified Eagle Medium: Nutrient Mixture F-12 Mediatech(Manassas, VA, USA) 10-092-CV
Fetal Bovine Serum Tissure Culture Biologicals (Long Beach, CA, USA) 101 Stock kept at -20 °C
Tris Ethylenediaminetetraacetic acid TEKnova (Hollister, CA, USA) T0221
Rneasy Micro Kit Qiagen (Venlo, Netherlands) 74004
QuantiTec Reverse Transcription Kit Qiagen (Venlo, Netherlands) 205310
CellsDirect One-Step qRT-PCR Kit Ambion/Invitrogen(Grand Island, NY, USA) 11753-100
Paraformaldehyde Santa Cruz Bio (Santa Cruz, CA, USA) SC-281692
Goat serum Jackson Immuno (West Grove, PA, USA) 005-000-121 Stock kept at -20 °C
Donkey serum Jackson Immuno (West Grove, PA, USA) 0017-000-121 Stock kept at -20 °C
Triton X-100 Sigma (St. Louis, MO, USA) T9284
Trypsin Sigma (St. Louis, MO, USA) T-4799
Ethylenediaminetetraacetic acid Invitrogen (Waltham, MA,  USA) 15575-020
Trypsin-EDTA Life Technologies (Waltham, MA, USA) 25200-056
Sterile Water Gibco (Grand Island, NY, USA) 15230-147 Molecular biology grade
Pasteur Pipette Fisher Scientific (Pittsburgh, PA , USA) 13-678-8B
40 μm Filter Mesh Fisher Scientific (Pittsburgh, PA , USA) 08-771-1
70 μm filter mesh Fisher Scientific (Pittsburgh, PA , USA) 08-771-2
TC Plate 96 Well Suspension Sarstedt 83.3924 (Previously 83.1835)
1 cc Syringe Becton Dickson (Franklin Lakes, NJ, USA) 309659
10 cc Syringe Becton Dickson (Franklin Lakes, NJ, USA) 301604
48.48 Dyanmic Array Chip Fluidigm (San Francisco, CA, USA) BMK-M-48.48
Fluidigm GE 48.48 Dynamic Array Sample & Assay Loading Reagent Kit Fluidigm (San Francisco, CA, USA) 85000800
TaqMan Universal PCR Master Mix Applied Biosystems (Grand Island, NY, USA) 4304437
Polyethylene glycol sorbitan monolaurate Sigma (St. Louis, MO, USA) P7949
Glass Bottom Dish MatTek (Ashland, MA, USA) P35G-1.5-14-C 35 mm Petri dish with glass bottom
Mouth Piece/Rubber Tubing Renova Life Inc. (College Park, MD, USA) MP-SET
Nicotinamide Sigma (St. Louis, MO, USA) N0636 Stock kept at -20 °C
Vascular Endothelial Growth Factor R&D Systems (Minneapolis, MN, USA) 293-VE Stock kept at -80 °C
Activin B R&D Systems (Minneapolis, MN, USA) 659-AB Stock kept at -80 °C
Extendin 4 Sigma (St. Louis, MO, USA) E7144 Stock kept at -20 °C
Rspondin-1 R&D Systems (Minneapolis, MN, USA) 3474-RS Stock kept at -80 °C
Falcon 5 ml Polystyrene Round-Bottom Tube Corning Inc. (Corning, NY, USA) 352054
PrecisionGlide Needle 18 G x1 1/2 Becton Dickson (Franklin Lakes, NJ, USA) 305196
PrecisionGlide Needle 16 G x 1 1/2 Becton Dickson (Franklin Lakes, NJ, USA) 305198
Costar Ultra-Low Attachment Surface 24 well flat bottom plate  Corning Inc. (Corning, NY, USA) 3473
Costar 96 Black Well Plate Corning Inc. (Corning, NY, USA) 3603 Flat, clear bottom with lid.  Black polystyrene TC-treated microplates
Zeiss LSM510 META NLO Axiovert 200M Inverted Microscope Carl Zeiss AG (Oberkochen, Germany)
Biomark HD  Fluidigm (San Francisco, CA, USA)
Aria Special Order Research Product Cell Sorter Becton Dickson (Franklin Lakes, NJ, USA)
PBS/BSA 1x PBS
0.1% (wt/vol) BSA
PenStrep (49 Units/ml Penicillin, 49 μg/ml Streptomycin)
PBS/BSA/Dnase1 1x PBS
0.1% (wt/vol) BSA
PenStrep (49 Units/ml Penicillin, 49 μg/ml Streptomycin)
Dnase 1 (2,400 Units/ml per pancreas)

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References

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<em>体外</em>测定菌落为表征的三效祖细胞从成人胰腺小鼠隔离
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Tremblay, J. R., LeBon, J. M., Luo,More

Tremblay, J. R., LeBon, J. M., Luo, A., Quijano, J. C., Wedeken, L., Jou, K., Riggs, A. D., Tirrell, D. A., Ku, H. T. In Vitro Colony Assays for Characterizing Tri-potent Progenitor Cells Isolated from the Adult Murine Pancreas. J. Vis. Exp. (112), e54016, doi:10.3791/54016 (2016).

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