Protocol
Obtener la aprobación para el uso de muestras humanas por la junta junta de revisión ética de la investigación / institucional, y obtener el consentimiento firmado de todos los donantes humanos. El MMA también se puede realizar utilizando PBMCs de ratón de una manera similar como el ensayo humano, después de la aprobación de uso de animales de la ética. El MMA utiliza técnicas de cultivo de tejidos asépticas.
NOTA: Consulte la Figura 1.
NOTA: Aunque se recomienda el uso de una cámara de flujo laminar nivel 2 durante el ensayo para mantener una técnica aséptica, ya que el método sólo es un método de cultivo "a corto plazo", no hay tiempo suficiente para que realmente las bacterias contaminen el ensayo. Por lo tanto, si una cámara de flujo laminar nivel 2 no existe, en lugar de comprar uno sólo para este ensayo, el ensayo se podría realizar fuera de una cámara de flujo laminar, en un banco abierto. El uso de una incubadora a 37 ° con 5% de CO 2, sin embargo, no es una opción y debe ser utilizado pararesultados óptimos.
Aislamiento de células mononucleares de sangre periférica 1.
- Obtener sangre humana entera de un donante sano o de un paciente a través de la punción venosa utilizando vacutainers que contienen ácido-citrato-dextrosa anticoagulante (ACD) (amarillo-tubos superiores).
NOTA: La sangre entera se puede almacenar en ACD a temperatura ambiente (18-22 ° C) durante hasta 36 h antes de proceder al siguiente paso 11. Normalmente, 1-2 10 mL tubos vacutainer de sangre entera son suficientes para el ensayo. - Diluir la sangre completa 1: 1 v / v en caliente medio RPMI completo (RPMI-1640 suplementado con 10% de suero fetal bovino, HEPES 20 mM, y 0,01 mg / ml de gentamicina).
- Aislar las células mononucleares de sangre periférica (PBMCs) de la sangre entera diluida utilizando centrifugación en gradiente de densidad, según lo recomendado por el fabricante (Ver Lista de Materiales). La capa de sangre diluida muy lentamente sobre el gradiente de densidad (calentó a temperatura ambiente, 18-22 ° C).
NOTA: Minimizar la cantidad de mixing en la interfaz para la separación óptima de la sangre por capas cuidadosamente la mezcla de la sangre de una forma gota a gota o mediante el uso de una pipeta.- Dejar que la mezcla de sangre a la capa lentamente sobre la parte superior de la gradiente de densidad mediante la colocación de la punta de la pipeta cerca del gradiente de densidad y al permitir que la mezcla de sangre que corra por el lado del tubo muy lentamente.
- Dependiendo de la escala del experimento, la capa de 10 ml de mezcla de sangre en la parte superior de 3 ml de gradiente de densidad (en un tubo de 15 ml) o capa de 35 ml de mezcla de sangre en la parte superior de 15 ml de gradiente de densidad (en un 50-ml tubo). Típicamente, 10 ml de sangre completa produce 10 millones de PBMCs, con alguna variación de donante a donante.
NOTA: Es muy importante que no hay mezcla de la mezcla de sangre con el gradiente de densidad. La mezcla de sangre debe capa sobre el gradiente de densidad y aumentando lentamente hasta que toda la sangre es en la parte superior del gradiente de densidad. - Se centrifuga la mezcla en capas a 700 xg durante 30 min sin frenos. el centrifuged mezcla debe separarse en 5 capas (de arriba a abajo): plasma, capa leucocitaria (que contiene PBMC), material de gradiente de densidad, granulocitos y eritrocitos.
- Retirar y desechar la mayoría de la plasma y recuperar cuidadosamente el contenido de la capa leucocitaria (PBMC) en un nuevo tubo de 15 ml usando una pipeta Pasteur y un bulbo de succión.
NOTA: La eliminación de la capa de la capa leucocitaria se hace efectiva mediante la aplicación de succión en la pipeta Pasteur mientras se realiza un movimiento circular alrededor del exterior de la capa, con la punta de la pipeta contra el tubo.
- Lavar las PBMCs aisladas tres veces en pH 7,3 solución salina tamponada con fosfato (PBS) por centrifugación a 350 xg durante 10 min (con frenos completos) entre lavados. Reconstituir el sedimento de PBMC en medio completo RPMI. Dependiendo del tamaño de la pastilla, 3-7 ml de medio es suficiente.
- Contar el CMSP usando azul tripán y un hemocitómetro. Sólo contar esas células que no están manchados por el azul de tripano. Reconstitute las PBMC a 1.750.000 células / ml en medio RPMI completo.
- Seed 400 l (700.000 células) en cada pocillo de un porta-cámara de 8. Incubar el portaobjetos en un 37 ° C, incubadora de cultivo de tejidos totalmente humidificado (suplementado con 5% de CO 2) durante 1 h para permitir que los monocitos / macrófagos se adhieran.
2. Pre-tratamiento de monocitos Adheridos
NOTA: Este paso sólo es necesario si buscando la manera de inhibir o potenciar la fagocitosis.
- Pre-tratamiento adherido monocitos con cualquier fármaco (s) o compuesto (s) de interés. Reconstituir el fármaco (s) u otro material de ensayo a la concentración deseada con medio completo RPMI.
NOTA: Por ejemplo, 200 mg / ml de IVIG se usa típicamente para producir una inhibición del 95 a 100% de la fagocitosis utilizando monocitos humanos. - Aspirar y descartar el sobrenadante que contiene las células no adherentes de la corredera 8-cámara después de la 1 h de incubación (después del paso 1.6). Reemplazarlo con 400l de un fármaco u otro tratamiento y se incuba durante 1 hora a 37 ° C.
- Al aspirar y sustitución de las soluciones en el portaobjetos de 8 cámaras, asegúrese de controlar el flujo de los fluidos de manera que las células débilmente adheridas no se despegan. Además, trabajar con sólo 2-3 pocillos vacíos a la vez y evitar el secado de los pozos.
NOTA: Por lo general, cada tratamiento se realiza por triplicado técnicas.
- Al aspirar y sustitución de las soluciones en el portaobjetos de 8 cámaras, asegúrese de controlar el flujo de los fluidos de manera que las células débilmente adheridas no se despegan. Además, trabajar con sólo 2-3 pocillos vacíos a la vez y evitar el secado de los pozos.
3. La opsonización de R 2 R 2 Glóbulos Rojos
NOTA: El R2 R2 utiliza aquí se obtienen de la Colección Centro de Sangre (Canadian Blood Services), pero también están disponibles en el mercado. 2 RBCs opsonizado R 2 R se utilizan como un control positivo para la fagocitosis mediada por FcyR. Naïve R 2 R 2 se debe almacenar en solución de Alsever (para prolongar la vida útil) a 4 ° C durante un máximo de 1 mes. solución de Alsever se hace en la casa y consta de 0,8% W / v de ácido cítrico v de citrato trisódico (dihidrato), 1.9% w / v de dextrosa, 0,42% w / v de cloruro de sodio, y 0,05% w / (monohidrato). Si R 2 R 2 células no están disponibles, otras células phenotyped-Rh, tales como R 1 R 2, R 1 R 1, R 1 R, o R 2 r, se puede utilizar.
- Lavar R2 R2 (CDE / CDE) de glóbulos rojos en PBS con un total de tres veces usando centrifugación a 350 xg durante 5 minutos cada uno.
NOTA: La cantidad de glóbulos rojos necesarios depende del tamaño experimental y puede ser calculado de nuevo. Siempre lave una cantidad en exceso de los glóbulos rojos, ya que los glóbulos rojos se pierden durante cada lavado debido a la lisis o durante la eliminación del sobrenadante. Por ejemplo, en un experimento con 5 tratamientos y 2 controles, todos llevados a cabo por triplicado técnicos, hay un total de 21 pozos. 21 pozos con 400 mezcla de l / pocillo de 1,25% RBC indica que 105 l de empaquetado, opsonizado se necesitan RBC. 200 l de RBC se debe lavar inicialmente y 150 & #181; L debe opsonizado para asegurar que hay una cantidad adecuada de glóbulos rojos para la etapa de la fagocitosis. - Opsonizar el lavado R 2 R 2 pellet con 1: 1 de anticuerpos / v policlonales v anti-D a partir de suero humano y se incuba durante 1 h a 37 ° C, con mezclado intermitente.
NOTA: Si los anticuerpos policlonales anti-D no están disponibles, es posible usar anticuerpos monoclonales anti-D, que están disponibles comercialmente, o anti-D que se utiliza normalmente para Rh profilaxis inmune, que puede obtenerse de bancos de sangre o transfusión servicios. pruebas de optimización debe llevarse a cabo al principio, al establecer el ensayo, y cuando vaya a cambiar un montón de anticuerpos policlonales un-titularon o cambiar a un anticuerpo monoclonal. Esto es para identificar la concentración óptima o volumen de anti-D requerida para una prueba de antiglobulina (IAT) resultado de entre 3+ y 4+ y un resultado de la fagocitosis de entre 70 a 90 eritrocitos fagocitados por 100 monocitos contados. - Lavar el opsonized R 2 R 2 un total de tres veces en PBS mediante centrifugación a 350 xg durante 5 min cada uno.
NOTA: opsonización exitosa de R 2 R 2 se puede confirmar mediante la realización de un IAT indirecta. Brevemente, se añaden secundarias anticuerpos anti-humanos policlonales para unirse a anticuerpos de opsonización primarias en superficies de glóbulos rojos, y la señal amplificada se pueden observar en la forma de la hemaglutinación. Un protocolo detallado fabricante se puede encontrar en el archivo de materiales suplementarios. - Reconstituir el lavado R 2 R 2 pellet al 1,25% v / v utilizando un medio completo RPMI.
NOTA: El exceso de R opsonizado 2 R 2 se puede almacenar en solución de Alsever a 4 ° C durante un máximo de una semana.
4. La fagocitosis mediada por el receptor Fc
- Aspirar el fármaco o sobrenadante del medio de la corredera 8-cámara y añadir 400 l de la 1,25% v / v R 2 R 2 mezcla. Incubar a 37 ° C durante 2 h.
- En popaer 2 h de incubación, retirar las cámaras que utilizan los adaptadores del fabricante. Frote el exceso de R2 R2 en una toalla de papel. Asegúrese de que la corredera no se seque.
- Llenar un vaso de precipitados de 100 ml con PBS. Sumergir y lavar el carro moviendo lentamente la corredera hacia atrás y hacia adelante (en torno al 30-40 trazos) para eliminar la mayor parte de la ONU-fagocitados R2 R2.
- Retire el portaobjetos del PBS. Frote el exceso de PBS usando una toalla de papel o tejido y seque al aire la diapositiva.
- Fijar el portaobjetos se secaron al aire en metanol al 100% durante 45 s. A continuación, seque al aire la corredera fija.
NOTA: Las diapositivas se pueden solucionar con otro método que es más compatible para la tinción de aguas abajo, tales como la mancha Grünwald-Giemsa 21 o la mancha de Wright-Giemsa 22. - Montar el porta por la en-casa-hecho de montaje Elvanol medio (u otro medio de montaje disponible en el mercado) y añadir cubreobjetos.
NOTA: Elvanol medio de montaje se compone de 15% w / v poresina de alcohol lyvinyl y 30% v / v de glicerina en PBS. La mezcla se calienta hasta que toda la resina se haya disuelto y la glicerina es homogéneamente mezclado. Esto puede ser sustituido por otro medio de montaje disponible en el mercado. - Deje que el montaje se seque durante la noche antes de la cuantificación.
5. La cuantificación de la fagocitosis
- Utilizando un microscopio de contraste de fase y una lente objetivo de 40X, cuantificar manualmente la cantidad de eventos fagocíticas contando al menos 200 monocitos y el número de fagocitados R 2 R 2 dentro de estos monocitos. Tener un contador en cada mano para cuantificar simultáneamente el número de monocitos y el número de fagocitados R 2 R 2.
- Obtener el índice fagocítico promedio dividiendo el número de fagocitados R 2 R 2 por el número de monocitos y multiplicando por 100. expresar los datos como la media (promedio) de índice fagocítico ± el error estándar de la media (SEM).
Representative Results
Siguiendo los pasos cruciales en la figura 1 y el procedimiento descrito anteriormente, el MMA se puede realizar de forma reproducible. IVIG fue usado como un ejemplo para la inhibición de la fagocitosis en la Figura 2. IVIG se sabe que se unen y bloquear los receptores Fc, inhibiendo así el resultado corriente abajo de la fagocitosis. Por titulación de la cantidad de IVIG utilizada, se observa una inhibición dependiente de la dosis, en la que las concentraciones por encima de 200 mg / ml dio lugar a cerca de 100% de inhibición y concentraciones por debajo de 0,5 g / ml no inhibió en absoluto (Figura 2A). Cuando los índices fagocíticas se transforman y se normalizaron con el control positivo R 2 R 2 como 0% de inhibición, una curva de inhibición con una CI 50 de 3 mg / ml se puede determinar (Figura 2B).
Además de realizar el ensayo de manera consistente, quantificación del ensayo a veces puede ser difícil. La Figura 3 es una colección de imágenes de microscopía de contraste de fase de varios toboganes de MMA. Con la experiencia microscopía, se puede distinguir un monocito de un RBC contaminante (Figura 3D), o una vacuola de un RBC fagocitado (Figura 3B). Densos racimos de células y / o escombros deben evitarse durante la cuantificación (Figuras 3E y F). También, uno debe evitar el exceso de opsonizantes el R 2 R 2 RBC, lo que llevaría a la fagocitosis mayor que overcrowds el interior de monocitos e interfiere con la cuantificación exacta (Figura 3C).
Figura 1. Diagrama esquemático de la MMA. Una pintura paso a paso de los pasos cruciales en la MMA: el aislamiento de PBMC de sangre completa, la alimentación de la monocyt adheridoí con opsonizado R2 R2, y el lavado de los portaobjetos de cámara. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 2. intravenosa IgG (IVIG) inhibe la fagocitosis in vitro utilizando el MMA. IVIG es conocida para inhibir la fagocitosis y se utiliza como un control de inhibición en el MMA humano. (A) La titulación de IVIG resultó en una inhibición dependiente de la dosis de la fagocitosis en comparación con los no tratados R 2 R 2 de control. Los resultados muestran la media ± el error estándar de la media (SEM) de n = 3 experimentos. El análisis estadístico se realizó mediante la t de Student-test: ** *** p≤0.01 y p≤0.001. (B) La inhibición de la curva de IVIG con una CI 50 of 3 mg / ml (línea de puntos). Los resultados muestran los datos normalizados a no tratada R 2 R (0% de inhibición) 2; media ± SEM de n = 3 experimentos. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 3. Imágenes de microscopía de contraste de fase de diapositivas de muestra con una lupa de 40X. (A) El tobogán perfecto en el que los monocitos fagocitados 1-2 R2 R2 en promedio (flechas negras con un brillo distintivo de halo), con muy pocos contaminantes, no-fagocitado R2 R2 en el fondo (flechas blancas). Vacuolas (B) Como se muestra en esta diapositiva, monocitos veces han agrandado (flechas blancas), que puede ser confundido con fagocitado R2 R2. (C </ strong>) Cuando R2 R2 han sido sobre-opsonizado, más de 4-5 fagocitado R 2 R 2 por monocitos (flechas negras) rinde precisa contar difícil, ya que el R2 R2 se llena dentro de los monocitos y células distinta límites no se pueden distinguir. (D) el lavado inadecuado de la corredera conduce a la abundante R2 R2 contaminación (flechas blancas), que podría confundirse con los glóbulos rojos adheridos. (E) A veces, los monocitos y los glóbulos rojos contaminantes pueden formar racimos. Clusters también indican la contaminación bacteriana, que debe ser evitado. (F) Los monocitos pueden formar agregados más grandes, que deben ser evitados durante la cuantificación. El uso de la selección al azar de los campos para ver, el panel A es lo que se observa por lo general si el MMA se ha realizado correctamente. La barra de escala es de 20 micras. Por favor, haga clic aquípara ver una versión más grande de esta figura.
Discussion
La MMA es una técnica laboriosa que requiere experiencia tanto en el cultivo de tejidos y la microscopía. Hay varios pasos críticos para asegurar el éxito: 1) generación de la monocapa de monocitos; 2) la opsonización de los glóbulos rojos, y 3) la cuantificación manual. La monocapa de monocitos no se adhiere muy fuertemente a la diapositiva cámara, por lo que el pH fisiológico debe mantenerse durante todo el ensayo de 11 y un número adecuado de PBMCs se debe sembrar. pipeteo vigoroso, lo que podría molestar a las células adheridas, deben ser evitados. Un enfoque es eliminar siempre y añadir soluciones de la misma esquina de la cámara y para asegurar que el movimiento es lento y constante. Del mismo modo, durante la última etapa de lavado para eliminar el exceso de glóbulos rojos, el movimiento debe ser lenta y constante. Esto asegura una mínima perturbación a la monocapa mientras que todavía la eliminación de la mayoría de los glóbulos rojos de la ONU-fagocitados. lavado inadecuado dará lugar a un alto fondo de los glóbulos rojos contaminantes, lo que hace qua Manualntification difícil. En segundo lugar, los R 2 R 2 RBCs deben ser suficientemente opsonizadas para obtener un índice de fagocitosis promedio de 80 a 120 para el control de la fagocitosis. Esta gama fagocítica deseada establece un equilibrio entre la facilidad de recuento (por ejemplo, los monocitos con más de 5 fagocitados RBCs son difíciles de cuantificar con precisión) y el mantenimiento de una cantidad adecuada de la fagocitosis para el análisis estadístico. El grado de opsonización puede ser confirmada por un IAT, y se necesita una lectura entre 3+ a 4+. El R 2 R 2 RBCs deben desecharse cuando hay exceso de lisis durante el lavado, cuando el sobrenadante se vuelve rojo oscuro, o cuando una disminución significativa en la fagocitosis se observa en los experimentos debido al envejecimiento de las células en almacenamiento. Por último, la cuantificación manual mediante el microscopio puede ser difícil, especialmente cuando se comparan los recuentos entre el personal del laboratorio y entre los experimentos. Examinando el mismo campo en cada pocillo, o simplemente contando más células, Un recuento más consistente se puede obtener. Se recomienda la formación de lado a lado con un técnico con experiencia y el uso de un conjunto designado de diapositivas de formación.
Una crítica importante de la MMA es la subjetividad de la etapa de cuantificación manual. Sin embargo, con una formación adecuada, la consistencia se puede obtener a través de diferentes contadores. Otra limitación es la intrínsecas diferencias donante-donante en monocitos y capacidades fagocíticas en R 2 R 2 de superficie los niveles de expresión del antígeno, que es una fuente de variación de los datos cuando se trata de muestras humanas.
Otras técnicas alternativas están disponibles para el examen de la fagocitosis mediada por FcyR. La mayoría de los kits comerciales utilizan salida fluorescente para controlar la fagocitosis (por ejemplo, biopartículas, la proteína de fluorescencia sensible al pH, o perlas de látex fluorescentes marcadas con IgG). El uso de la salida fluorescente sí ofrece una cuantificación más objetiva, pero también se necesita para conSider la disponibilidad, el coste, y la formación asociada con el uso de un microscopio de fluorescencia o un citómetro de flujo, así como la dependencia subsiguiente a kits disponibles en el mercado.
Por último, este ensayo puede ser modificado dependiendo de la pregunta de investigación. Por ejemplo, cuando se prueba la inhibición de la fagocitosis de drogas, ya sea monocitos pueden ser tratados previamente o co-incubaron tanto con las drogas y los glóbulos rojos opsonizadas (es decir, un ensayo de competición). La señalización aguas abajo de anticuerpos de diferentes subtipos, anticuerpos quiméricos, o construcciones recombinantes también se puede probar. Con los recientes avances en el desarrollo de un análisis de sangre de antígeno nula universal de 24, el MMA se podría utilizar en las pantallas iniciales de estos glóbulos rojos antígeno nula con diversos anticuerpos para evaluar si efectivamente existe una eficacia baja en el desencadenamiento de la fagocitosis.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Acid citrate dextrose (ACD) vacutainers | BD | REF364606 | |
| RPMI 1640 | Sigma | R8758 | |
| HEPES | Bioshop | HEP003.100 | |
| Fetal bovine serum | Multicell | 080150 | |
| Gentamicin | Gibco | 15710-64 | |
| Ficoll-Paque PLUS | GE | 17-1440-03 | https://www.gelifesciences.com/ |
| Phosphate buffered saline | Sigma | D8537 | |
| 8-chamber slides | Lab-Tek-ll | 154534 | |
| R2R2 (cDE/cDE) red blood cells | Canadian Blood Services | Commercially available (e.g., http://www.bio-rad.com/en-ca/product/reagent-red-blood-cells) | |
| Polyclonal anti-D from human serum | Gamma Biologics | DIN 02247724 | Can be substituted with commercially available monoclonal anti-D or with Rh immune globulin |
| 100% methanol | Caledon | 6700-1-42 | |
| Polyvinyl alcohol resin | Sigma | P8136 | Can be substituted with commercially available mount |
| UltraPure glycerine | Invitrogen | 15514-011 | |
| Cover slips | VWR | 48366 067 | |
| Novaclone anti-IgG | Immucorgamma | 5461023 | Optional for IAT (http://www.fda.gov/downloads/biologicsbloodvaccines/.../ucm081743.pdf) |
References
- Hunt, J. S., Beck, M. L., Hardman, J. T., Tegtmeier, G. E., Bayer, W. L. Characterization of human erythrocyte alloantibodies by IgG subclass and monocyte interaction. Am J Clin Pathol. 74 (3), 259-264 (1980).
- Schanfield, M. S., Stevens, J. O., Bauman, D. The detection of clinically significant erythrocyte alloantibodies using a human mononuclear phagocyte assay. Transfusion. 21 (5), 571-576 (1981).
- Branch, D. R., Gallagher, M. T., Mison, A. P., Sysiokian, A. L., Petz, L. D. In vitro determination of red cell alloantibody significance using an assay of monocyte-macrophage interaction with sensitized erythrocytes. Br J Haematol. 56 (1), 19-29 (1984).
- Hunt, J. S., Beck, M. L., Wood, G. W. Monocyte-mediated erythrocyte destruction. A comparative study of current methods. Transfusion. 21 (6), 735-738 (1981).
- Noumsi, G. T., Billingsley, K. L., Moulds, J. M. Successful transfusion of antigen positive blood to alloimmunised patients using a monocyte monolayer assay. Transfus Med. 25 (2), 92-100 (2015).
- Moulds, J. M. Introduction to antibodies and complement. Transf Apher Sci. 40 (3), 185-188 (2009).
- Grandstaff Moulds, M. K.
- Hendrickson, J. E., Tormey, C. A., Shaz, B. H. Red blood cell alloimmunization mitigation strategies. Transfus Med Rev. 28 (3), 137-144 (2014).
- Hamilton, J. R. Common and frequently encountered antibodies. Transfus Apher Sci. 40 (3), 189-194 (2009).
- Kenna, M. A., Cooper, R. A., Schrieber, A. D. Effect of papain on the interaction between human monocytes, erythrocytes and IgG. Blood. 46 (2), 245-252 (1975).
- Tong, T. N., et al. Optimal conditions for the performance of a monocyte monolayer assay. Transfusion. , Epub ahead of print (2016).
- Gray, S. J., Sterling, K. The tagging of red cells and plasma proteins with radioactive chromium. J Clin Invest. 29 (12), 1604-1613 (1950).
- Mollison, P. L., Veall, N. The use of the isotope 51Cr as a label for red cells. Br J Haematol. 1 (1), 62-74 (1955).
- Sebring, E. S., Polesky, H. F. Detection of fetal hemorrhage in Rh immune globulin candidates. A rosetting technique using enzyme-treated Rh2Rh2 indicator erythrocytes. Transfusion. 22 (6), 468-471 (1982).
- Downing, I., Templeton, J. G., Mitchell, R., Fraser, R. H. A chemiluminescence assay for erythrophagocytosis. J Biolumin Chemilumin. 5 (4), 243-250 (1990).
- Fabron, A. Jr, et al. Application of noninvasive phagocytic cellular assays using autologous monocytes to assess red cell alloantibodies in sickle cell patients. Transfus Apher Sci. 31 (1), 29-35 (2004).
- Michelis, F. V., et al. Acute hemolysis after intravenous immunoglobulin amid host factors of ABO-mismatched bone marrow transplantation, inflammation, and activated mononuclear phagocytes. Transfusion. 54 (3), 681-690 (2014).
- Rampersad, G. C., et al. Chemical compounds that target thiol-disulfide groups on mononuclear phagocytes inhibit immune mediated phagocytosis of red blood cells. Transfusion. 45 (3), 384-393 (2005).
- Purohit, M. K., et al. Structure-activity relationships of pyrazole derivatives as potential therapeutics for immune thrombocytopenias. Bioorg Med Chem. 22 (9), 2739-2752 (2014).
- Neschadim, A., Kotra, L. P., Branch, D. R. Small molecule phagocytosis inhibitors for immune cytopenias. Autoimmun Rev. 15 (8), 843-847 (2016).
- Fitzer-Attas, C. J., et al. Fcgamma receptor-mediated phagocytosis in macrophages lacking the Src family tyrosine kinases Hck, Fgr, and Lyn. J. Exp Med. 191 (4), 669-682 (2000).
- Allhorn, M., et al. The IgG-specific endoglycosidase EndoS inhibits both cellular and complement-mediated autoimmune hemolysis. Blood. 115 (24), 5080-5088 (2010).
- Li, L., et al. Inhibition of phagocytic recognition of anti-D opsonized Rh D+ RBC by polymer-mediate immunocamouflage. Am J Hematol. 90 (12), 1165-1170 (2015).
- Kwan, D. H., et al. Toward efficient enzymes for the generation of universal blood through structure-guided directed evolution. J Am Chem Soc. 137 (17), 5695-5705 (2015).
