Summary
本方案描述了一种可靠而直接的培养、收集和筛选 Ditylenchus dipsaci的方法。
Abstract
植物寄生线虫（PPNs）每年破坏全球12%以上的粮食作物，相当于每年损失约1570亿美元。随着全球人口的不断增长和可耕地的有限，控制PPN侵扰对粮食生产至关重要。由于缺乏线虫选择性，对有效杀虫剂的限制越来越多，使作物产量最大化的挑战更加复杂。因此，开发新的安全化学杀线虫剂对粮食安全至关重要。在该协议中，证明了PPN物种 Ditylenchus dipsaci的 培养和收集。 D. dipsaci 既具有经济破坏性，又对大多数现代杀线虫剂具有相对抗性。目前的工作还解释了如何在筛选新型小分子杀线虫剂以及数据收集和分析方法的报告中使用这些线虫。所展示的管道每周可提供数千种化合物的通量，并且可以轻松适应与其他PPN物种（如 Pratylenchus penetrans）一起使用。本文中描述的技术可用于发现新的杀线虫剂，这些杀线虫剂反过来又可能进一步发展成高度选择性的商业产品，以安全地对抗PPN，以帮助养活日益饥饿的世界。
Introduction
据估计，植物寄生线虫（PPN）每年造成全球粮食产量损失12.3%，估计造成1570亿美元的损失1，2，3。不幸的是，控制PPN的能力正在减弱，因为有效的化学杀线虫剂已经被禁止，或者由于人类安全和环境问题而面临不断升级的限制。这主要是由于前几代农药的线虫选择性差4。在过去25年中，已经试验或引进了六种新的化学杀线虫剂5.其中一个已经在欧洲被禁止，另一个已经停止，同时正在调查其对人类健康的影响6，7。因此，迫切需要对PPN具有高选择性的新型杀线虫剂。
茎和球茎线虫Ditylenchus dipsaci（D. dipsaci）是一种具有经济影响力的PPN 4.D. dipsaci感染了30个生物种族的近500种植物物种，并针对一些农业上最重要的作物，如黑麦，燕麦，大蒜，洋葱和韭菜8，9。例如，D. dipsaci最近在安大略省和魁北克省掠夺了大蒜田，造成高达90%10，11的损失。它的地理分布几乎无处不在，包括美洲（包括加利福尼亚和佛罗里达州），欧洲，亚洲大部分地区（包括中国）和大洋洲9。D. dipsaci是一种迁移性内寄生虫，它进入叶子或伤口和透镜上的气孔，在那里它们释放酶以分解细胞壁12。再加上D. dipsaci对作物的影响，PPN造成的损害使植物容易受到继发感染11。不幸的是，与其他线虫菌株13，14相比，D. dipsaci对当前杀线虫剂表现出高耐受性水平。
该协议描述了D. dipsaci的培养，及其在小分子候选杀线虫剂的大规模筛选中的应用。简而言之，在无菌Gamborg B-5（GA）培养基15中培养的豌豆植物上维持和扩展D. dipsaci种群。在GA培养基上生长种子芽之前，必须通过一系列洗涤对种子进行灭菌，并铺在营养琼脂（NA）上以检查污染。种子灭菌对于检测可能存在的细菌和真菌污染物至关重要。然后将未受污染的种子转移到GA板中，种子芽将在那里生长以准备感染。通过将含有根组织的琼脂片转移到新鲜平板上，含有种子芽的GA板被先前培养板中的线虫感染。6-8周后，从GA培养基中提取线虫，并通过咖啡过滤器衬里的漏斗过滤到收集烧杯中。一旦收集了合适数量的线虫，线虫就可以用于各种生物测定。该协议中描述的技术在每个培养板中产生约15，000个D. dipsaci。培养D. dipsaci的替代方案已经公布了16，17。
基于先前工作18的体外小分子筛选测定也在这里描述。作为蠕虫健康的代表，在小分子暴露5天后，检查每孔20种线虫的流动性。为了更好地可视化蠕虫的移动性，添加了NaOH以增加活蠕虫的运动19，20。该协议允许中等通量筛选，并为评估小分子的线虫电位提供有价值的数据。如果使用不同的线虫收集技术16，17，则本文描述的小分子筛选方法仍然可以实现。
Protocol
用于本工作的 D. dipsaci 菌株G-137是从爱德华王子县的Fish Lake 4 Variety大蒜中收集的，由加拿大农业和农业食品公司提供。如果开始新鲜培养，请咨询Poirier等人的接种方法15。
1. D. 双蚜虫的培养
- 按照先前报告的工作准备介质和板15.
- 用23克/ L的NA（见 材料表）和超纯水制备500毫升营养琼脂（NA）培养基。使用无菌技术，将25 mL高压灭菌的NA培养基倒入20个一次性培养皿（直径100 mm x 15 mm深）中。让琼脂在室温（22°C）下凝固，盖上盖子约2小时，并放在一边供以后使用。
- 准备500 mL Gamborg B-5（GA）培养基，其中含有3.2 g / L的GA基础培养基，含有最少的有机物，20 g / L蔗糖，15g / L琼脂和蒸馏水（参见 材料表）。使用无菌技术，将50 mL高压灭菌的GA培养基倒入10个一次性培养皿（直径100 mm x 25 mm深）中。让琼脂在室温（22°C）下凝固，盖上盖子约5小时，并在室温下直立储存在无菌袋中，直到发芽转移。
注：制造多余的培养基板以防发生污染。
- 按照从以前的工作修改的方法进行种子灭菌15.
- 用搅拌棒，2个镊子，玻璃培养皿和1升蒸馏水高压灭菌一个2升烧杯。准备200 mL 95%EtOH溶液和200 mL 15%商用漂白剂溶液。
- 使用豌豆种子（见 材料表）。将150粒种子倒入无菌的2升烧杯中，在实验室工作台上的本生燃烧器火焰附近用搅拌棒搅拌。
- 向烧杯内的种子中加入200mL 95%EtOH，在搅拌板上剧烈搅拌5分钟，然后在废容器中倒出EtOH。
- 将漂白剂溶液倒入烧杯中，使种子完全浸入其中。在搅拌板上剧烈搅拌20分钟，然后将漂白剂倒入废物容器中。
- 将蒸馏水倒入烧杯中浸泡种子，并在搅拌板上剧烈搅拌20分钟。重复水洗三次，每次洗涤后倒入蒸馏水。最后一次水洗后，将灭菌的种子倒入玻璃培养皿中。
- 为了检查污染，使用灭菌镊子将6个种子转移到层流罩中每个10厘米NA板（在步骤1.1.1中制备）。将种子排列在盘子的圆周周围（丰满的种子效果最好）。将板单独包裹在实验室包装膜中，并在26°C下在黑暗中孵育3天。
注意：铺设比需要的更多的种子将允许选择性地使用未受污染的种子。
- 按照以下步骤执行芽移植。
- 在层流罩中，使用灭菌镊子在每个GA板上接种2个未受污染的种子（在步骤1.1.2中制备）。将板单独包裹在实验室包装膜中，并在室温下孵育7-10天，以使种子发芽。
- 按照从以前的工作修改的方法15进行体外饲养。
- 准备50 mL 20 g / L蔗糖溶液。过滤灭菌蔗糖溶液并放在一边。
- 在层流罩中，从现有培养板中切下一块含有根组织（〜2cm3）的琼脂。将500μL蔗糖溶液移液到新的GA板上，用豌豆幼苗，并将琼脂块放在蔗糖上。将板分别包裹在实验室包装膜中，并在室温（〜22°C）下将培养物保持在衬有铝箔的盒子中。
- 每8-9周在新鲜的GA平板上传代培养线虫以维持培养。线虫准备在〜8周后提取。
2. D. dipsaci的提取和收集
- 按照以下步骤执行 D. dipsaci 的提取。
- 高压灭菌 50 mL 烧杯、80 mm 漏斗、150 mL 蒸馏水和咖啡过滤器。将漏斗放入烧杯中，并用无菌咖啡过滤器排列漏斗。
- 在层流罩中，使用无菌手术刀将琼脂和根组织切成1 cm3 。将琼脂块转移到咖啡过滤器衬里的漏斗中，然后慢慢将蒸馏水倒在琼脂上以润湿咖啡过滤器。
- 从烧杯中取出咖啡过滤器衬里的漏斗，并用蒸馏水填充烧杯，直到更换咖啡过滤器衬里的漏斗后，水位刚好接触到过滤器的底部。
- 用铝箔覆盖咖啡过滤器衬里的漏斗和烧杯。在台面上放置过夜（16小时），让蠕虫通过咖啡过滤器进入收集烧杯。
注意：当用解剖显微镜检查时，当蠕虫爬入琼脂时，线虫培养板已准备好提取。通常，平板在初始接种后6-8周准备提取。
- 进行 D. dipsaci的收集。
注意：第二天， D. dipsaci 蠕虫将沉降到烧杯的底部。- 取出咖啡过滤器衬里的漏斗，并从收集烧杯中吸取顶部40mL水;确保不会破坏已定居的蠕虫。使用10 mL塑料血清学移液器，将剩余的液体收集到15 mL锥形离心管中。
注意：该集合可以直接用于测定。如果在24小时内不使用，请置于4°C。蠕虫可以在4°C下放置3天，对移动性没有明显影响。移除漏斗可能会干扰收集烧杯中的蠕虫。在收集之前，让它们沉降到底部。
- 取出咖啡过滤器衬里的漏斗，并从收集烧杯中吸取顶部40mL水;确保不会破坏已定居的蠕虫。使用10 mL塑料血清学移液器，将剩余的液体收集到15 mL锥形离心管中。
3. 体外 小分子筛选
- 按照以下步骤准备测定板。
- 将高压灭菌的蒸馏水倒入无菌槽中，并使用多通道移液器将40μL蒸馏水从槽中分配到平底96孔板的每个孔中。
- 准备固定工具并添加化学品
- 在实验室工作台上的本生燃烧器火焰附近设置销钉托盘（参见 材料表）。将以下物质加入连续的销钉托盘中：25 mL 针清洁液、35 mL 50% DMSO（水中）、45 mL 蒸馏水、55 mL 70% EtOH 和 65 mL 95% EtOH。在每个纸盒前放置一张吸墨纸
- 通过在清洁溶液中插入针脚并在溶液中上下移动针脚三次（3x）来清洁固定工具。在该协议中，“3x”和“10x”被定义为在溶液中分别向上和向下移动引脚器三次或十次。吸墨纸上的针脚。再次重复此过程。
- 接下来，在蒸馏水中冲洗针脚3次，然后吸干针脚。再次重复该过程。
- 最后，在95%EtOH中冲洗针脚3倍，然后印迹针脚。再重复一次。点燃销钉，让乙醇蒸发。
- 通过将3x固定到化学板中，然后将10X针转移到测定板中，将96孔化学储备板中的化学物质添加到测定板中。在清洁液前的纸张上吸墨。
- 通过按以下顺序洗涤来清洁板之间的固定工具，在印迹纸上进行两次印迹：在50%DMSO中3倍（一次），在蒸馏水中3倍（一次），在75%EtOH中清洗3倍（一次），在95%EtOH中3倍（两次）。点燃销钉，让乙醇蒸发。
- 完成所有固定后，重复步骤 3.2.2。
注意：筛选以60μM的最终浓度进行。
- 添加蠕虫
- 通过首先重悬，然后使用低保留尖端移液5μL到载玻片上进行观察，从收集中计数线虫的数量。使用解剖显微镜计数5μL中的线虫数量。
- 使用无菌蒸馏水将浓度调节至2个蠕虫/μL。使用多通道移液器和槽，向96孔板的每个孔中加入10μL（约20个蠕虫）。
注意：使用所述培养和收集方法，每个培养板将收集约15，000 个D. dipsaci 线虫。每口井使用20个蠕虫，因为少量的蠕虫有助于移动和不移动的蠕虫的清晰可视化和核算。
- 使用无菌蒸馏水将浓度调节至2个蠕虫/μL。使用多通道移液器和槽，向96孔板的每个孔中加入10μL（约20个蠕虫）。
- 将板密封在实验室包装膜中，并用湿纸巾包裹。放入盒子中并固定在20°C振荡培养箱中粘性垫上，以200rpm的速度振荡。通过添加额外的湿纸巾来确保板在盒子中稳定，以确保板的移动最小。
- 通过首先重悬，然后使用低保留尖端移液5μL到载玻片上进行观察，从收集中计数线虫的数量。使用解剖显微镜计数5μL中的线虫数量。
4. 数据收集和分析
- 在第5天在解剖显微镜下观察板。计算DMSO溶剂对照和药物处理孔中的移动数和 D. dipsaci 的总数。
- 如果蠕虫相对不动，则向孔中加入2μL的1M NaOH至40mM的最终浓度以刺激运动19，20。
注意：添加NaOH后，蠕虫会立即移动，需要在5分钟内查看。移动蠕虫的数量和蠕虫的总数将用于计算移动蠕虫的比例。测定的长度可能会根据筛选的目的而变化。
- 如果蠕虫相对不动，则向孔中加入2μL的1M NaOH至40mM的最终浓度以刺激运动19，20。
- 计算移动蠕虫的比例。在 D. dipsaci 筛选中，可重复产生0%移动蠕虫的孔被归类为强命中。
注意：避免在解剖显微镜的载物台上长时间暴露板，因为光源可以加热板并诱导对生物测定的可变影响。
Representative Results
独立复制显示可重复的命中
为了说明重复筛之间的预期变异，从最近筛分的三个代表性板中绘制了样品迁移率的均值和变异（图1）。在三个不同的日子里进行了三次屏幕的重复。所有三个板都具有阴性（仅溶剂）对照（较暗的条形），并且集合内的样品含有已建立的杀线虫剂。其余的化合物来自Roy实验室目前正在表征的定制库。与具有相同分子的 秀丽隐杆线虫 （SC，JK，PJR，未发表的结果）进行的类似筛选相比， D. dipsaci 的命中率显着降低，并且许多药板没有活性（图1A）。一些板具有完全可重复的命中（图1B，C），而其他板的活性各不相同（图1C）。相对于筛选的其他物种（未显示）， D. dipsaci 在对化合物的反应中表现出较小的变异性。无论如何，重复被认为是识别可重复命中所必需的。
杀线虫剂在固定Ditylenchus dipsaci的能力上有所不同
在针对D. dipsaci测试的七种表征的杀线虫剂中，只有Fluopyram在本文所述的测定中表现出强大的活性（图1C）。这与先前的工作一致，表明D. dipsaci对杀线虫剂13，14具有耐受性。Fluopyram以线虫选择性方式抑制电子传递链的复合物II，并且是一种用于控制各种PPN的商用杀线虫剂，包括Rotylenchulus reniformis和Meloidogyne incognita4，21，22。通过对D. dipsaci的剂量反应分析，更详细地研究了氟吡仑和在测试浓度（Oxamyl）23下缺乏活性的杀线虫剂之一。氟吡仑诱导对D. dipsaci迁移率的明显剂量依赖性作用，EC50为9.3μM（8.2至10.5μM之间的95%置信区间）（图2A，B）。该结果基于Storelli等人发表的体外结果，202013。奥沙米对浓度高达120μM的迁移率没有显着影响（p = 0.3632，未成对的t检验）（图2C，D）。
氢氧化钠提高测定灵敏度
与秀 丽隐杆线虫 在液体培养物18中近乎连续的游泳活动相比， D. dipsaci 动物的移动性显着降低。这在培养物16中的寄生线虫中并不少见。为了帮助区分“静息”蠕虫和病态蠕虫，在测定终点使用40mM的NaOH来刺激那些有能力的个体的运动（图3）19，20。该技术允许清楚地识别固定蠕虫的小分子，因为阴性对照孔中的所有蠕虫都会移动并在屏幕中产生非常低的假阳性背景。
图 1：屏幕输出示例。 对所示三个板中的每一个中的小分子（60μM）进行三个带有 D. dipsaci 的生物重复（开放圆圈）。所有三个板都具有0.6%的DMSO纯溶剂对照（较暗的条形）。除非使用溶剂对照或已知的杀线虫剂另有说明，否则三个板的孔含有从供应商处购买的相对未表征的药物样化合物（参见Burns等人，2015）18。（A）来自小分子库的96孔板缺乏 任何具有可观察到的生物活性的分子。（B）来自小分子库的96孔板具有单个分子，可重复地破坏 D. dipsaci 迁移率。（C）含有表征的杀线虫剂氟吡仑（fluo），iprodione（ipro），阿维菌素（abam），氟砜（flue），硫沙扎芬（tiox），氧戊基（oxam）和wact-11的96孔药板。误差线表示均值的标准误差。 请点击此处查看此图的大图。
图2：使用迁移率测定的阳性和阴性结果的示例。 （A）在加入NaOH之前5天后 暴露于 氟吡仑浓度增加后的末端表型的示例。（B）暴露于指示浓度的氟吡仑5天后 D. dipsaci 运动的剂量反应分析。（C，D）与A，B相同，除了噁嗪。每张图显示两天进行的试验，每天三次重复。每个图形的 y 轴表示每个孔中蠕虫的移动分数，计算为相对于孔中动物总数移动的动物数量。两个图形上的误差线表示均值的标准误差。比例尺代表 1 毫米。 请点击此处查看此图的大图。
图3：加入40 mM NaOH后D. dipsaci的迁移率。共孵育5天后，在仅溶剂对照（A），硫沙扎芬（B）或氟吡仑（C）存在下，NaOH添加到D. dipsaci样品中的作用。比例尺代表 1 毫米。请点击此处查看此图的大图。
Discussion
关键步骤
尽管协议很简单，但协议中有一些关键步骤值得额外关注，以最大限度地提高成功的可能性。首先，过度漂白种子会破坏它们的生长。因此，将种子在漂白溶液中的时间限制在20分钟或更短的时间内至关重要。其次，正如Storelli等人先前指出的那样，当在4°C下储存时，线虫的表观健康状况随时间而降低16。在收集线虫后不久使用线虫可以提供额外的信心，可以达到最佳的筛选条件。如果需要长期储存，请确保管盖不紧，以允许氧气交换。第三，确保豌豆在建议的时间内在NA板上生长，使实验者能够判断哪些种子被污染。第四，在添加线虫之前，在GA平板上过度生长豌豆会减弱感染并降低线虫产量。最后，许多难以控制的因素都会影响筛查结果。因此，必须在不同的日期进行多个独立的重复筛选，理想情况下是从不同的培养板收集的PPN，以确保结果的可重复性。
方法限制
该协议的局限性在于它无法同步收集的蠕虫的发育阶段，其范围从幼年到成虫。因此，任何屏幕显示的强烈命中都可能在多个阶段有效。然而，该协议增加了忽略有效阶段特定命中的风险。第二个考虑因素是 ，体外 筛选应被视为杀线虫剂发现管道的第一步;土壤检测是测试命中可转化性的管道的绝佳补充。
协议的意义和应用
这里描述的协议简单且易于复制。此外，该协议已成功应用于实验室中的其他PPN，包括 Pratylenchus penetrans，只需进行轻微的修改。制定新的、安全的PPN控制措施对于确保全球粮食安全至关重要。对于像 D. dipsaci 这样的物种尤其如此，它们通常对各种目前可接受的化学杀线虫剂13，14具有耐受性。因此，这里概述的协议有可能在全球范围内对人类健康做出重要贡献。
Disclosures
作者声明没有利益冲突。
Acknowledgments
作者感谢Qing Yu博士（加拿大农业和农业食品）提供了 Ditylenchus dipsaci 文化并就培养方法提供了建议;Benjamin Mimee博士（加拿大农业和农业食品部）和Nathalie Dauphinais（加拿大农业和农业食品部）就植物寄生线虫的 体外 培养提供建议;Andrew Burns博士和Sean Harrington博士就项目和手稿提供有用的建议。JK是NSERC Alexander Graham Bell加拿大研究生。PJR 由 CIHR 项目赠款 （313296） 提供支持。PJR是加拿大化学遗传学研究主席（Tier 1）。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 15 mL tube | Sarstedt | 62.554.205 | |
| 2 forceps | Almedic | 7747-A10-108 | |
| 2L beaker | Pyrex | CLS10002L | |
| 50mL beaker | Pyrex | CLS100050 | |
| 96 well plate | Sarstedt | 83.3924 | |
| aluminium foil | Alcan Plus | ||
| bacteriological agar | BioShop | AGR001.5 | |
| coffee filter | No name brand | 716 | |
| commercial bleach 6% | Lavo Pro 6 | DIN102358107 | |
| disposable petri dishes (10cm x 1.5cm) | Fisherbrand | FB0875712 | |
| disposable petri dishes (10cm x 2.5cm) | Sigma-Aldrich | Z358762 | |
| dissecting scope | Leica | Leica MZ75 | |
| DMSO | Sigma-Aldrich | 472301-500ML | |
| Funnel | VWR | 414004-270 | |
| Gamborg B5 | Sigma-Aldrich | G5893-10L | |
| glass petri dish | VWR | 75845-546 | |
| glass slide | MAGNA | 60-1200 | |
| Lint-Free Blotting Paper | V&P Scientific | VP 522-100 | |
| Low retention pipette tips (200uL) | LABFORCE | 1159M44 | |
| mutlichannel pipette | Eppendorf research plus | 3125000036 | |
| NaOH | Sigma-Aldrich | S8045-500G | |
| nutrient agar | Sigma-Aldrich | 70148-100G | |
| parafilm | Bemis | PM-996 | |
| pea seeds | Ontario Seed Company | D-1995-250G | |
| pin cleaning solutions | V&P Scientific | VP110A | |
| pinner | V&P Scientific | VP381N | |
| pinner rinse trays | V&P Scientific | VP 421 | |
| reagent reservoir with lid for multichannel pipettes | Sigma-Aldrich | BR703459 | |
| shaking incubator | New Brunswick Scientific | I26 | |
| sterile surgical blade | MAGNA | sb21-100-a | |
| stir bar | Fisherbrand | 2109 - 1451359 | |
| sucrose | BioShop | SUC507.1 |
References
- Sasser, J. N., Freckman, D. W. A. world perspective on nematology: the role of the society. Vistas on nematology. , Hyattsville: Society of Nematologists Inc. 7-14 (1987).
- Abad, P., et al. Genome sequence of the metazoan plant parasitic nematode Meloidogyne incognita. Nature Biotechnology. 26 (8), 909-915 (2008).
- Auwal, M., Hassan, T. H. P., Hongli, S., Jingwu, Z. Nematodes threats to global food security. Acta Agriculturae Scandinavica, Section B - Soil & Plant Science. 63 (5), 420-425 (2013).
- Chen, Z. X., Chen, S. Y., Dickson, D. W. Nematicides: Past and present uses. Nematology Vol 2, Nematode Management and Utilization. , CABI Publishing. 1179-1200 (2004).
- Desaeger, J., Wram, C., Zasada, I. New reduced-risk agricultural nematicides - and review. Journal of nematology. 52, (2020).
- Donely, N. The USA lags behind other agricultural nations in banning harmful pesticides. Environmental Health. 18 (1), 44 (2019).
- Polansek, T. Monsanto halts launch of chemical after users complain of rashes. Reuters. , (2017).
- Sturhan, D., Brzeski, M. W. Stem and bulb nematodes, Ditylenchus spp. Manual of agricultural nematology. , 423-464 (1991).
- The European and Mediterranean Plant Protection Organization (EPPO). Data Sheets on Quarantine Pests; Ditylenchus dipsaci. Prepared by CABI and EPPO for the EU under Contract 90/399003. The European and Mediterranean Plant Protection Organization (EPPO). , (2021).
- Quebec (Canada), Agriculture, Pêcherie et Alimentation Quebec. Réseau d'avertissements phytosanitaires (RAP). Avertissement Carotte, Céleri, Laitue, Oignon, Poireau [Warning carrot celery, lettuce, onion, leek]. Quebec (Canada), Agriculture, Pêcherie et Alimentation Quebec. , (2011).
- Abawi, G. S., Moktan, K. Bloat nematode problem on garlic: symptoms, distribution, and management guidelines. Department of Plant Pathology and Plant-microbe Biology, Geneva. , Cornell University. (2010).
- Taylor, R. Chapter 7. Nematodes and other worms. , Academic Press. 143-234 (2019).
- Storelli, A., Keiser, A., Eder, R., Jenni, S., Kiewnick, S. Evaluation of fluopyram for the control of Ditylenchus dipsaci in sugar beet. Journal of nematology. 52, 1-10 (2020).
- Oka, Y. Nematicidal activity of fluensulfone against some migratory nematodes under laboratory conditions. Pest Management Science. 70, 1850 (2014).
- Poirier, S., Dauphinais, N., Van Der Heyden, H., Véronneau, P. Y., Bélair, G., Gravel, V., Mimee, B. Host Range and Genetic Characterization of Ditylenchus dipsaci Populations from Eastern Canada. Plant disease. 103, 456-460 (2019).
- Storelli, A., Kiewnick, S., Daub, M., et al. Virulence and pathogenicity of four Ditylenchus dipsaci populations on sugar beet. Eur J Plant Pathol. 161, 63-71 (2021).
- Kühnhold, V., Kiewnick, S., Sikora, R. A. Development of an in vivo bioassay to identify sugar beet resistance to the stem nematode Ditylenchus dipsaci. Nematology. 8 (5), 641-645 (2006).
- Burns, A., Luciani, G., Musso, G. Caenorhabditis elegans is a useful model for anthelmintic discovery. Nat Communications. 6, (2015).
- Chen, S. Y., Dickson, D. W. A Technique for Determining Live Second-stage Juveniles of Heterodera glycines. Journal of nematology. 32, 117-121 (2000).
- Xiang, N., Lawrence, K. S. Optimization of In Vitro Techniques for Distinguishing between Live and Dead Second Stage Juveniles of Heterodera glycinesand Meloidogyne incognita. PLoS ONE. 11 (5), (2016).
- US EPA.
- US EPA.
- US EPA. Oxamyl Facts. Prevention, Pesticides and Toxic Substances. US EPA. , (2000).
