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Biology

Évaluation systématique de spécimens de crânes de mammifères pour la pathologie dentaire et de l’articulation temporo-mandibulaire

Published: August 22, 2022 doi: 10.3791/64223

Summary

Le présent protocole décrit les techniques d’évaluation systématique des échantillons de crâne afin de caractériser les variations anatomiques et développementales et les anomalies des dents, les maladies parodontales, les maladies endodontales et les pathologies de l’articulation temporo-mandibulaire.

Abstract

Les spécimens de crânes de musée représentent un moyen non invasif, informatif et facilement accessible d’étudier les lésions de l’articulation temporo-mandibulaire (ATM), la pathologie dentaire et les variations anatomiques chez de nombreuses espèces de mammifères. L’étude des dents et des mâchoires d’un éventail d’espèces peut présenter un défi nécessitant une attention aux détails et une compréhension de l’anatomie normale d’une espèce. Dans le présent article, un protocole systématique et précis d’examen des spécimens de crâne est discuté qui a été appliqué à une variété de mammifères pour définir les maladies caractéristiques dans la région oromaxillo-faciale. La procédure décrite est à la fois précise, reproductible et adaptable aux formes et à l’anatomie très différentes du crâne et des dents d’une espèce à l’autre. Plus précisément, les échantillons sont examinés pour les dents manquantes, les maladies parodontales, les maladies endodontales, la pathologie de l’ATM et les variations anatomiques. Les résultats de la recherche sur les spécimens de musée peuvent refléter l’histoire naturelle, la santé et l’état pathologique des individus et des espèces. De plus, ces données peuvent éclairer les efforts de recherche écologique et de conservation, ainsi que les soins aux individus captifs.

Introduction

Le développement des mâchoires et des dents marque un moment critique dans l’évolution et le développement des vertébrés. Alors que les mâchoires se sont initialement développées dans le cadre d’un mécanisme de respiration chez les espèces aquatiques et marines, les dents offraient une nouvelle façon d’appréhender et de traiter les proies 1,2. Depuis le développement des mâchoires et des dents, les organismes ont évolué d’innombrables variations anatomiques qui correspondent à leur fonction et reflètent le rôle écologique auquel ils appartiennent. En raison de leur nature minéralisée, les dents et les crânes représentent une abondance d’informations qui persistent dans l’environnement et les archives fossiles et peuvent offrir une myriade d’informations sur l’écologie, l’état de santé et le comportement des individus et, par extension, des espèces.

L’acquisition d’informations relatives aux dents et aux mâchoires des animaux et la caractérisation de la forme et de la pathologie présente de nombreux avantages. La reconnaissance des processus pathologiques courants peut améliorer les efforts de conservation des espèces sauvages et optimiser les soins aux animaux captifs 3,4,5. Par exemple, l’information recueillie à partir de spécimens de crânes de musée a été utilisée pour faire des inférences sur l’exposition du phoque gris de la Baltique (Halichoerus grypus) et des phoques communs (Phoca vitulina) aux polluants environnementaux tels que les organochlorés au fil du temps6,7, bien qu’une relation causale entre les lésions orofaciales et les polluants n’ait pas été confirmée. En outre, les maladies de la cavité buccale sont parmi les maladies les plus répandues chez les espèces domestiques, et la compréhension de l’état de santé buccodentaire des espèces sauvages peut faire progresser la médecine clinique et la gestion des espèces domestiques 8,9.

Comme les animaux ont développé une telle variation de la forme craniofaciale normale et de la dentition, il peut être difficile de caractériser et de comparer ces aspects entre les espèces. Comprendre l’écologie et le comportement naturel d’un organisme, ainsi que son environnement typique, est impératif avant de tenter d’examiner son crâne. Cela entraînera la formation de questions et d’hypothèses sur la dentition d’une espèce particulière et enrichira inévitablement les conclusions de l’analyse des données. Par exemple, il est essentiel de reconnaître que le régime alimentaire typique de la loutre de mer du Sud (Enhydra lutris nereis) comprend des mollusques à carapace dure, des crustacés et des échinodermes pour contextualiser le degré et l’effet de l’attrition et/ou de l’abrasion des dents10,11. Bien que l’on puisse supposer la probabilité qu’un individu d’une espèce développe certaines maladies dentaires, il est essentiel de disposer d’un protocole systématique, précis et reproductible pour évaluer la pathologie dentaire. Cela devrait inclure une évaluation de l’occlusion, des résultats anatomiques et développementaux, de la maladie parodontale, des résultats endodontaux et de la pathologie de l’articulation temporo-mandibulaire (ATM). L’élaboration d’un tel protocole avec une analyse statistique similaire permettra une comparaison détaillée des maladies dentaires et de l’ATM d’une espèce à l’autre. Une méthode systématique a été utilisée pour caractériser la pathologie des articulations dentaires et temporo-mandibulaires chez de nombreuses espèces de mammifères et s’est avérée transposable à des organismes de formes diverses 11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22, 23,24.

Pour comparer les données futures sur d’autres espèces, il est important d’avoir une méthode acceptée pour évaluer les maladies des dents et des mâchoires qui peut être appliquée à une variété d’espèces. Cet article vise à détailler une approche standardisée et organisée pour évaluer la pathologie dentaire et ATM des échantillons de crâne.

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Protocol

La présente étude a été menée à l’aide de spécimens du Département d’ornithologie et de mammalogie de l’Académie des sciences de Californie à San Francisco, du Museum of Vertebrate Zoology de l’Université de Californie à Berkeley et du Museum of the North de l’Université de l’Alaska à Fairbanks. L’autorisation d’examiner des spécimens de crânes et de publier des œuvres à partir des données a été obtenue auprès des musées qui possèdent et gèrent chaque collection.

1. Sélection des spécimens et documentation

  1. Documenter les renseignements sur les spécimens, y compris les numéros d’identification, l’espèce, le sexe et le lieu d’origine.
    REMARQUE : Le nombre de spécimens conservés dans une collection donnée, ainsi que les détails des spécimens, peuvent être disponibles via la solution de gestion collaborative des collections Arctos (voir le tableau des matériaux). Aux fins de la présente étude, on a pris en compte les crânes de l’éléphant de mer du Nord (Mirounga angustirostris), du lynx roux de Californie (Lynx rufus californicus), du renard gris (Urocyon cinereoargenteus), de l’otarie à fourrure du Nord (Callorhinus ursinus), de la loutre de mer du Sud (Enhydra lutris nereis), du lion de montagne de Californie (Couguar Puma conolor) et du renard nain (Vulpes macrotis).
  2. Examinez le crâne pour vérifier l’exhaustivité des structures anatomiques. N’incluez pas de crânes gravement fragmentés de sorte que les structures anatomiques normales soient méconnaissables sans reconstruction approfondie.
  3. Si possible, estimer l’âge de l’échantillon au moment du décès en fonction de la fermeture des sutures crâniennes. Consultez la documentation pertinente pour connaître le moment de la fermeture de la suture crânienne, car cela varie pour chaque espèce cible.
  4. Remplacez les dents lâches par leurs alvéoles correspondantes. Utiliser les descriptions anatomiques publiées des espèces étudiées pour aider à reconnaître le type de dent de chaque dent lâche 25,26,27,28,29,30.

2. Résultats anatomiques et développementaux

  1. Inspectez successivement chaque quadrant dentaire et notez la présence ou l’absence de dents.
  2. Classer la perte de chaque dent comme congénitalement absente par rapport à la perte de dents acquises par rapport à l’absence artificielle. Examinez la zone de la dent manquante pour une marge osseuse lisse (congénitale), une alvéole vide avec un os alvéolaire de remodelage (acquis) ou une alvéole vide mais fortement soulignée (artificielle).
  3. Documentez toute dent caduque persistante ou toute dent surnuméraire (figure 1).
  4. Examinez la forme de chaque couronne dentaire et toute structure racinaire visible. Documentez le nombre de racines en examinant les dents détachées de leurs alvéoles.
    REMARQUE : Pour les dents qui ne peuvent pas être retirées de leur alvéole, les racines surnuméraires peuvent être identifiées par une protubérance supplémentaire, habituellement sur la face palatine ou linguale de la dent, ou par radiographies dentaires (Figure 2).
  5. Documenter la présence d’une hypoplasie de l’émail, caractérisée par un amincissement ou l’absence de la couche d’émail blanche réfléchissante de la dent, révélant la surface plus rugueuse de la dentine jaune beige.

3. État parodontal

  1. Utilisez une sonde parodontale en métal ou en plastique et un explorateur (voir le tableau des matériaux) pour déterminer la texture de l’os alvéolaire afin de déceler la présence de parodontite31.
    NOTE: Il n’y a pas de tissus mous, donc la gingivite ne peut pas être diagnostiquée, mais une vascularisation accrue, comme en témoigne un plus grand nombre de foramina vasculaires, indique une parodontite précoce (Figure 3).
  2. Testez la présence d’une implication ou d’une exposition à la furcation en essayant d’insérer la sonde parodontale entre les racines de chaque dent à racines multiples. Selon le nombre de racines, plusieurs zones peuvent être nécessaires pour tester la furcation.
  3. Utiliser un protocole normalisé pour identifier les stades de l’aggravation progressive de la parodontite (tableau 1)32.

4. Dents fracturées et lésions périapicales

  1. Examiner chaque dent à la recherche d’une fracture, indiquée par la perte de substance dentaire avec des arêtes vives (figure 4).
  2. Déterminez si chaque fracture est compliquée ou non compliquée en essayant d’insérer l’explorateur dans la chambre pulpaire à partir du site fracturé. Les fractures compliquées sont indiquées par la pointe de l’explorateur tombant dans la chambre pulpaire.
  3. Consigner chaque type de fracture en fonction d’un système de classification normalisé (tableau 2)33.
  4. Examiner les dents à la recherche de signes de lésions périapicales, caractérisées par une expansion de l’os alvéolaire dans la région de l’apex de la racine de la dent avec des signes de vascularisation accrue (Figure 5). La fenestration au-dessus de l’agrandissement peut être présente ou non.

5. Attrition/abrasion

  1. Examiner chaque dent pour détecter l’attrition ou l’abrasion, indiquée par la perte de substance dentaire d’aspect lisse et vitreux et de bords arrondis (figure 6).
  2. Utilisez l’explorateur pour déterminer l’exposition de la chambre de pâte à partir de la région abrasée en essayant d’insérer l’embout de l’explorateur dans la chambre à pâte.
  3. Classer le degré d’attrition/abrasion de chaque dent à l’aide d’un système de classification normalisé (tableau 3)11.
    REMARQUE : Certaines espèces peuvent être plus sensibles à l’attrition ou à l’abrasion que d’autres en raison de leur comportement naturel. Par conséquent, la mise en scène de la gravité de l’attrition/abrasion peut être indiquée, ou le simple fait d’enregistrer la présence ou l’absence d’attrition/abrasion peut suffire.

6. Pathologie de l’articulation temporo-mandibulaire

  1. Inspecter les composantes osseuses de l’ATM, y compris la tête de la mandibule du processus condylien et la fosse mandibulaire de la partie pavimenteuse de l’os temporal, à la recherche de signes de pathologie de l’articulation temporo-mandibulaire, en excluant les artefacts tels que les traumatismes post-mortem (p. ex. « dommages au tiroir » ou artefacts de préparation)31 (figure 6).
  2. Inspecter indépendamment la tête mandibulaire et la fosse des deux côtés et utiliser un système de notation semi-quantitatif pour l’arthrose (OA) pour classer les lésions associées à chaque os (tableau 4)34.

7. Traumatisme

  1. Examinez le crâne à la recherche de tout signe de blessure traumatique.
    NOTE: La lésion traumatique chronique peut être différenciée de la lésion traumatique aiguë en fonction de la netteté des bords de la fracture et de toute preuve de remodelage osseux. Notez également que certaines espèces sauvages sont sujettes à des blessures par balle et que des blessures d’entrée / sortie peuvent être reconnues, ainsi que des restes de projectiles.

8. Vérification d’autres paramètres

  1. Selon l’espèce, examinez le crâne à la recherche d’anomalies supplémentaires.
  2. Vérifiez la résorption dentaire ou la perte de tissu dur dentaire due à la destruction odontoplaste idiopathique, qui est le plus souvent observée chez les félidés et peut être diagnostiquée radiographiquement par une perte de radiodensité avec ou sans perte de l’espace des ligaments parodontaux 19,21,35.
    REMARQUE: Les lésions de résorption dentaire peuvent également être ressenties avec un explorateur dentaire comme une rugosité dans la région cervicale de la dent, mais une confirmation radiographique est nécessaire pour le diagnostic.
  3. Vérifiez l’échinocrome, coloration violet foncé des tissus durs du crâne, car la consommation de certaines espèces d’échinodermes pigmentés peut être observée chez les loutres11.
  4. Vérifiez les caries dentaires, qui sont des caries de la surface de la dent liées au métabolisme des glucides alimentaires des bactéries acidogènes36.
    NOTE: Les lésions carieuses peuvent être découvertes en sondant la surface occlusale des dents avec une sonde dentaire pour révéler des piqûres ou des irrégularités17,18.
  5. Documenter les signes d’ostéomyélite ou de néoplasie, caractérisés par des lésions osseuses productives/destructrices irrégulières37. Consigner ces données de manière descriptive et inclure des mesures objectives de toute lésion.

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Representative Results

Le protocole actuel aboutit à une combinaison de données objectives et semi-subjectives, et le résultat positif dépend de l’évaluation précise et reproductible des échantillons. Plusieurs observateurs connaissant l’anatomie normale de l’espèce cible et comprenant la pathologie dentaire et maxillo-faciale générale doivent idéalement être présents pour évaluer chaque échantillon afin de minimiser systématiquement les biais. L’évaluation de chaque spécimen doit être discutée et un consensus doit être obtenu. Aucun seuil pour le nombre de spécimens n’a été suggéré pour assurer un échantillon représentatif, mais les études publiées ont inclus 76 à 1 205 individus11,20. De plus, un échantillon exempt de toute pathologie détectable ou d’une maladie minimale ou d’une variation anatomique doit être trouvé et documenté pour servir de norme de comparaison (figure 7). En outre, un résultat positif dépend de la différenciation de la pathologie des dommages artificiels. Souvent, les spécimens peuvent subir des dommages artificiels pendant le traitement ou le stockage. Pour cette raison, pour une collecte de données précise, le chercheur doit se familiariser avec l’anatomie générale et la physiopathologie de la région maxillo-faciale pour comprendre les preuves de véritables processus de maladies chroniques et aiguës. S’il existe des preuves à l’appui qu’une découverte est artificielle, comme des preuves d’altération post-mortem d’outils humains ou de blessures aux dents ou aux structures qui seraient biomécaniquement impossibles dans la vie, ces résultats ne doivent pas être enregistrés comme une véritable pathologie. Si des radiographies sont utilisées pour l’évaluation des échantillons, des vues radiographiques appropriées doivent être obtenues pour la qualité diagnostique38,39. Enfin, les anomalies pathologiques et anatomiques doivent être documentées par des descriptions précises et/ou des photographies haute résolution.

Les résultats peuvent ne pas être représentatifs si l’anatomie normale est interprétée comme une pathologie ou si les données sont notées comme ayant un degré élevé de variation entre les observateurs. Les spécimens doivent être examinés avec soin afin de préserver leur qualité aussi diligemment que possible afin de permettre une évaluation répétée précise à l’avenir, si nécessaire. De plus, si une tenue méticuleuse des dossiers n’est pas tenue, des anomalies pathologiques ou anatomiques peuvent être attribuées à des spécimens incorrects, et les conclusions tirées des corrélations tirées des données seront d’une exactitude douteuse.

Les données doivent être analysées statistiquement pour déterminer s’il existe des différences dans la fréquence des anomalies associées à l’âge de la personne au moment du décès et au sexe. La fréquence des anomalies dentaires peut être comparée entre différentes sous-espèces, emplacements géographiques et points temporels historiques. Enfin, les données peuvent être comparées aux données publiées précédemment sur des espèces de différents genres.

Le protocole actuel s’est avéré être un moyen efficace de caractériser les anomalies dentaires et de l’ATM chez diverses espèces 11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22,23,24 . La présentation des résultats des futurs rapports doit suivre un schéma similaire à celui des manuscrits précédents afin de maintenir l’exhaustivité et de pouvoir comparer facilement les résultats.

Figure 1
Figure 1 : Dents caduques persistantes chez l’éléphant de mer du Nord (Mirounga angustirostris). On voit les dents cornéennes mandibulaires droites à feuilles caduques persistantes des première, deuxième et troisième dents prémolaires (flèches) mésiales aux dents successeurs permanentes correspondantes. Cette figure a été modifiée à partir d’Abbott et al.12. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 2
Figure 2 : Racines surnuméraires du lynx roux de Californie (Lynx rufus californicus). (A) Radiographique et (B) aspect grossier d’une troisième dent prémolaire maxillaire gauche avec une racine supplémentaire (fléchée). Ce chiffre a été modifié à partir d’Aghashani et al.19. Barre d’échelle = 5 mm. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 3
Figure 3 : Stades de la parodontite chez le renard gris (Urocyon cinereoargenteus). (A) Stade 2 associé à la quatrième dent prémolaire maxillaire droite, caractérisé par une vascularisation accrue de l’os alvéolaire (flèche). (B) Stade 3 associé à la deuxième dent prémolaire mandibulaire droite, caractérisé par une perte osseuse modérée et une atteinte de furcation (flèche). (C) Stade 4 associé aux dents prémolaires maxillaires gauches, caractérisé par une perte osseuse alvéolaire sévère (flèches). Cette figure a été modifiée à partir d’Evenhuis et al.22. Barre d’échelle = 1 cm. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 4
Figure 4 : Dents fracturées chez l’otarie à fourrure du Nord (Callorhinus ursinus). Fractures radiculaires des troisième et quatrième dents prémolaires mandibulaires droites (flèches blanches) et parodontite de stade 2 autour de la première molaire mandibulaire droite (flèche noire)13. Barre d’échelle = 1 cm. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 5
Figure 5 : Lésions périapicales chez la loutre du phoque austral (Enhydra lutris nereis). Maladie périapicale associée à des fractures compliquées de la racine du collet de la quatrième prémolaire mandibulaire droite et des première et deuxième molaires chez un spécimen femelle adulte. Cette figure a été modifiée à partir de Winer et al.24. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 6
Figure 6 : Arthrose de l’ATM chez le lion de montagne de Californie (Puma concolor couguar). (A) Image de la surface articulaire irrégulière, de l’exposition osseuse sous-chondrale et de la porosité des processus condyliens mandibulaires (flèches ouvertes). (B) L’ATM droite ne présente pas de prolifération périarticulaire significative au processus rétroarticulaire. (C) L’ATM gauche présente une prolifération osseuse périarticulaire au niveau du processus rétroarticulaire (flèches fermées), encerclant partiellement la tête mandibulaire, entraînant une ankylose partielle. Ce chiffre a été modifié à partir d’Aghashani et al.21. Barre d’échelle = 1 cm. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 7
Figure 7 : Dentition normale du renard nain (Vulpes macrotis). (A) Vue latérale droite. (B) Vue rostrale. (C) Vue ventrale du maxillaire (à gauche) et vue dorsale des mandibules (à droite). Cette figure a été modifiée à partir de Yanagisawa et al.23. Barre d’échelle = 1 cm. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Degré de parodontite Caractéristiques cliniques
Parodontite de stade 2 Signes d’une vascularisation accrue au niveau de la marge alvéolaire (foramina vasculaire plus proéminent et texture légèrement plus rugueuse de l’os de la marge alvéolaire)
Parodontite stade 3 Arrondi de la marge alvéolaire; perte osseuse horizontale ou verticale modérée
Parodontite stade 4 Élargissement de l’espace parodontal; perte osseuse horizontale ou verticale sévère; dent mobile dans l’alvéole; exposition à la furcation

Tableau 1 : Résumé des caractéristiques cliniques des stades progressifs de la parodontite.

Fracture Type Description
Fracture de l’émail Une fracture de l’éclat ou une fissure de l’émail seulement.
Fracture de la couronne non compliquée Une fracture impliquant l’émail et la dentine, mais n’exposant pas la pulpe.
Fracture compliquée de la couronne Une fracture impliquant l’émail et la dentine, avec exposition à la pulpe.
Fracture couronne-racine non compliquée Une fracture impliquant l’émail, la dentine et le cément, mais n’exposant pas la pulpe.
Fracture complexe couronne-racine Une fracture impliquant l’émail, la dentine et le cément, avec exposition à la pulpe.
Fracture radiculaire Une fracture affectant la dentine, le cément et la pulpe.

Tableau 2 : Résumé des caractéristiques cliniques des types de fractures dentaires.

Stade d’attrition/abrasion Description
Étape d’attrition/abrasion 1 Usure légère de l’émail, sans exposition à la dentine
Étape d’attrition/abrasion 2 Exposition de la dentine à l’extrémité cuspale, sans formation de dentine tertiaire
Étape d’attrition/abrasion 3 Exposition de la dentine à l’extrémité cuspale, avec formation de dentine tertiaire
Étape d’attrition/abrasion 4 Exposition à la cavité pulpaire secondaire à l’attrition/abrasion

Tableau 3 : Résumé des caractéristiques cliniques de l’attrition et de l’abrasion dentaires.

Gravité de l’arthrose Caractéristiques cliniques
OA légère Il n’existe aucune preuve de lésions précoces de formation de nouveaux os périarticulaires / ostéophytes avec peu ou pas de changements osseux sous-chondrals.
OA modéré Il y a une formation de nouvel os périarticulaire et / ou des changements osseux sous-chondrals sont plus prononcés.
Arthrose sévère Tous les signes décrits précédemment sont présents et plus prononcés, ou si une lyse osseuse sous-chondrale est présente. Une ankylose partielle ou complète peut être observée.

Tableau 4 : Résumé des caractéristiques cliniques de l’arthrose de l’ATM.

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Discussion

L’anatomie des dents et des mâchoires est un exemple par excellence d’évolution divergente et reflète fidèlement l’histoire naturelle, le comportement et l’état de santé d’une espèce. La santé buccodentaire d’une personne peut jouer directement dans sa survie et sa forme physique. La présente étude décrit une manière systématique, reproductible et détaillée d’évaluer la santé dentaire et les anomalies de l’ATM des spécimens de musée qui peuvent refléter une pathologie dans les populations vivantes.

Bien que les maladies dentaires touchent universellement les mammifères d’une grande variété de genres, ce sujet reste sous-exploré. Comprendre les troubles dentaires et craniofaciaux chez les espèces sauvages, captives et domestiques a des implications pour les efforts de conservation, l’élevage zoologique, la santé des animaux de compagnie et l’industrie liée aux animaux 3,32,33,40,41. Par conséquent, les études sur les maladies dentaires pourraient être essentielles pour améliorer et comprendre la santé animale dans son ensemble.

Les étapes critiques de l’algorithme d’évaluation actuel comprennent la recherche sur le comportement naturel d’une espèce avant la collecte de données, la compréhension de l’anatomie normale de l’espèce cible et l’évaluation systématique et précise de chaque dent et point de repère anatomique. Il est également impératif de rendre compte des résultats de manière systématique et détaillée afin que des comparaisons entre espèces puissent être effectuées. Le fait de ne pas effectuer ces étapes de manière organisée peut entraîner des données manquantes ou inexactes ou une mauvaise interprétation des résultats.

Le système présenté caractérise avec succès de nombreuses espèces, mais la méthode a des limites. Tout d’abord, l’examen est effectué sur des spécimens de musée, et la qualité des spécimens dépend de leur préparation, de leur entretien et de leur méthode de stockage. Par conséquent, des artefacts peuvent survenir et pourraient être interprétés par inadvertance comme une véritable pathologie présente ante mortem. De plus, la population étudiée est inévitablement biaisée en faveur des individus trouvés dans des régions auxquelles les humains pourraient accéder facilement. De plus, des études menées de cette manière pourraient surestimer la prévalence des maladies dentaires ou des anomalies craniofaciales qui existent réellement chez une espèce. Ces anomalies pourraient réduire la condition physique d’un individu. En revanche, la conception de l’étude ne peut pas évaluer les maladies des tissus mous buccaux et faciaux. Il est également important de tenir compte de la façon dont les personnes d’une collection sont mortes et ont été recueillies, car cela peut avoir une incidence sur la fréquence observée de la pathologie. Les personnes envoyées dans des événements de chasse ou de piégeage à grande échelle peuvent présenter une prévalence accrue de fractures dentaires ou de traumatismes crâniens par rapport à la population générale22. En revanche, les populations qui ont connu des événements de mortalité aiguë ou subaiguë à grande échelle qui n’ont pas d’effet connu sur la région craniofaciale peuvent fournir une représentation plus précise des maladies dentaires et des anomalies de l’ATM à un moment donné42,43. Enfin, bien que la méthode d’étude actuelle offre une analyse complète des anomalies dentaires et de l’ATM possibles chez une espèce donnée, on ne peut conclure comment les anomalies découvertes peuvent avoir un impact sur l’aptitude d’un individu ou sur les pressions évolutives auxquelles une espèce est soumise.

En conclusion, un examen systématique des spécimens de musée s’est avéré efficace pour caractériser les anomalies dentaires, les maladies dentaires, l’ATM et la pathologie craniofaciale chez de nombreuses espèces. Les méthodes actuelles offrent un moyen non invasif de collecte de données qui peut refléter le potentiel de maladie dans les populations sauvages. La poursuite de la recherche sur la pathologie dentaire des espèces sauvages et captives est nécessaire pour comprendre l’état de santé et la niche biologique de ces espèces et offrir des moyens fondés sur des données probantes d’optimiser la gestion.

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Disclosures

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.

Acknowledgments

Les auteurs remercient le Département d’ornithologie et de mammalogie de l’Académie des sciences de Californie à San Francisco, le Museum of Vertebrate Zoology de l’Université de Californie à Berkeley et le Museum of the North de l’Université de l’Alaska à Fairbanks d’avoir mis leurs collections à disposition pour cette recherche.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Arctos Collaborative Collection Management Solution https://arctosdb.org
Disposible Nitrile Gloves
Double-Ended Dental Explorer/Probe, #2 Handle Hu Friedy 541-5860
High resolution digital camera
Light source
Magnifying glass (Optional)
Surgical Magnification Loupes (Optional) Surgitel EVC00TTL

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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rétractation No. 186
Évaluation systématique de spécimens de crânes de mammifères pour la pathologie dentaire et de l’articulation temporo-mandibulaire
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Evenhuis, J., Arzi, B., Verstraete, F. J. M. Systematic Assessment of Mammalian Skull Specimens for Dental and Temporomandibular Joint Pathology. J. Vis. Exp. (186), e64223, doi:10.3791/64223 (2022).

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