Actina Co-sedimentación de ensayo, pues el análisis de proteína de unión a la F-actina

1. Preparación de la actina

La fuente de la actina utilizada en este ensayo no era muscular plaquetas humanas (β-actina) obtenidos a partir del citoesqueleto Inc. alícuotas de archivo de 10 mg / ml se mantienen en el congelador -70 º C. Para el ensayo, la actina se diluye a 0,4 mg / ml en un tampón que contenía 5 mM Tris pH 8, 0,2 mM CaCl _2, 0,2 mM ATP y 0,5 mM de TDT, se centrifuga a 20.000 g durante 10 minutos a 4 º C. El sobrenadante, que es la actina monomérica está listo para ser polimerizado. Polimerización de la actina es inducida por la adición de KCl 50 mM, 1 mM ATP y 2 mM de MgCl _2. La polimerización se produce a temperatura ambiente durante 1 hora.

2. Preparación de la proteína

En este ensayo, se utiliza el C-terminal de Tallin, que se ha purificado como una proteína GST-etiquetados. La proteína que se utiliza en el ensayo se somete a una centrifugación de alta velocidad para pre-clara de los agregados antes de la incubación con F-actina.
La proteína se hace girar a 100.000 g en una ultracentrífuga Beckman durante 20 minutos a 22 º C.

3. Actina-proteína de incubación

La cantidad de actina y las proteínas en un ensayo puede variar. En este ejemplo estamos utilizando actina en exceso. Normalmente, una relación molar se calcula, por ejemplo. una relación de 4:1 molar de actina a la proteína.

En el siguiente ensayo, el volumen final de reacción es de 150 l. Búfer en el que se incuban las proteínas y F-actina dependerá de la proteína a ser probado y en las condiciones requeridas. En este ejemplo, se utiliza un tampón que contiene 10 mM Tris pH 7,0, 1 mM ATP, 0,2 mM DTT, 1 mM EGTA, 0,1 mM CaCl ₂ y 2 mM de MgCl _2. La proteína y el F-actina se incuban en el buffer durante 1 hora a temperatura ambiente.

4. La sedimentación de la F-actina

Después de la incubación, las muestras se centrifugaron a 100.000 g a 22 º C. Utilizamos una ultracentrífuga Beckman en el video. El rotor se retira cuidadosamente para no molestar a los pellets.

5. El análisis de proteínas co-sedimentación con F-actina

Los sobrenadantes se retira cuidadosamente con la pipeta en un tubo eppendorf y 5 X Laemmli SDS-PAGE muestra de amortiguación, se añade. Un volumen adecuado de 1 x tampón de muestra Laemmli SDS-PAGE se añade al resto de pellets, una pipeta de arriba a abajo, y trasladado a nuevos tubos eppendorf. Las cantidades relativas de proteína en los sedimentos y sobrenadantes son analizados después de su separación por SDS-PAGE y tinción con azul de Coomassie del gel o Western Blot.

Con el fin de determinar la especificidad de la interacción con la proteína actina, la actina dependiente de la concentración de co-sedimentación se puede realizar. Para este tipo de experimento, una cantidad fija de la proteína y una serie de cantidades cada vez mayores de la actina se incuban, y el análisis se lleva a cabo como se describió anteriormente.

Actina co-sedimentación es un simple ensayo in vitro para analizar las proteínas de unión a specfic F-actina. En este vídeo, que muestran un ejemplo de cómo un sencillo actina co-sedimentación puede llevarse a cabo. Se muestra cómo preparar la F-actina, preparar la proteína a ser probado y el procedimiento de la actina co-sedimentación. Una serie de puntos deben ser considerados en el ejercicio de actina sedimentación co-ensayos. Por ejemplo, los componentes del tampón de incubación puede variar en función de la proteína a ser probado y el pH, la temperatura y la concentración de sal puede afectar la unión de F-actina. Hemos demostrado un enlace simple de F-actina, sin embargo este tipo de ensayo puede ser elaborado y utilizado para determinar la especificidad de unión de un dominio de la proteína y proteína para la F-actina.