Method Article

A Perifusion جزيرة متعدد حدودي النظام داخل جهاز ميكروفلويديك Perifusion

DOI:

10.3791/1649

January 26th, 2010

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ووضعت جزيرة perifusion ميكروفلويديك الجهاز لتقييم افراز الانسولين من الجزر الحيوية متعددة ومضان التصوير المتزامن لتدفق الكالسيوم والتغيرات المحتملة الميتوكوندريا.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ووضعت جزيرة perifusion ميكروفلويديك الجهاز لتقييم افراز الانسولين من الجزر الحيوية متعددة ومضان التصوير المتزامن لتدفق الكالسيوم والتغيرات المحتملة الميتوكوندريا. الجهاز يتكون من ثلاث طبقات : الطبقة الأولى تحتوي على مجموعة من الآبار الميكروسكيل (500 و 150 ميكرومتر قطرها ميكرون العمق) التي تساعد على شل الجزر في حين تتعرض لتدفق وزيادة المساحة المكشوفة من الجزر ، والثاني يحتوي على طبقة دائرية perifusion غرفة (3 ملم العميق ، 7 مم) ، وطبقة ثالثة تحتوي على مدخل القناة لخلط أن المشجعين من قبل حقنها في غرفة perifusion (2 ملم في العرض ، 19 ملم في الطول ، و 500 ميكرومتر في الطول) لتحسين كفاءة خلط قبل دخول غرفة perifusion. إنشاء تدرجات مختلفة بما في ذلك الجلوكوز على شكل جرس الخطية ، والأشكال المربعة ويمكن أيضا أن تنشأ في شبكة perifusion ميكروفلويديك وتظاهر هو.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ألف التصنيع الدقيق من 3 طبقات الجهاز perifusion ميكروفلويديك

حسنا أسفل ماجستير البروتوكول (150 ميكرون الآبار العميقة)

  1. تنظيف الرقاقة باستخدام شفرة حلاقة اذا لزم الامر. نظيفة مع الأسيتون والميثانول ، ومعهد الإدارة العامة. تنفيذ المعاملة البلازما في 50 واط لمدة 30 ثانية.
  2. تدور SU8 - 100 @ 2000 دورة في الدقيقة. [الخطوة 1 : 500 دورة في الدقيقة ، 10 ثانية و 100 دورة في الدقيقة / ثانية ، الخطوة 2 : 2000 دورة في الدقيقة ، 30 ثانية ، و 300 دورة في الدقيقة / ق].
    [ملاحظة : لا تحمل الرقاقة مع ملاقط بعد الغزل SU8]
  3. خبز لينة الرقاقة عند 65 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة وعند 95 درجة مئوية لمدة 50 دقيقة.
  4. يتعرض الرقاقة للأشعة فوق البنفسجية من خلال قناع المطلوب. الجرعة عن 150 ميكرومتر ارتفاع 650 ميغا جول / سم 2.
  5. بعد التعرض خبز الرقاقة عند 65 درجة مئوية لمدة 1 دقيقة وعلى 95 درجة مئوية لمدة 12 دقيقة.
  6. تطوير رقاقة في SU8 المطور لمدة 15 دقيقة.

بروتوكول متناهية ماجستير (500 ميكرون الآبار العميقة)

  1. تنظيف الرقاقة باستخدام شفرة حلاقة اذا لزم الامر. نظيفة مع الأسيتون والميثانول ، ومعهد الإدارة العامة. تنفيذ المعاملة البلازما في 50 واط لمدة 30 ثانية.
  2. تدور SU8 - 2150 @ 1000 دورة في الدقيقة. [الخطوة 1 : 500 دورة في الدقيقة ، 10 ثانية و 100 دورة في الدقيقة / ثانية ، الخطوة 2 : 1000 دورة في الدقيقة ، 30 ثانية ، و 300 دورة في الدقيقة / ق].
  3. لينة خبز الرقاقة عند 65 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة وعند 95 درجة. مئوية لمدة 2 ساعة ودقيقة و 30
  4. يتعرض الرقاقة للأشعة فوق البنفسجية من خلال قناع المطلوب. جرعة التعرض لارتفاع 650 ميكرون هو 685 ميغا جول / سم 2.
  5. بعد التعرض خبز الرقاقة عند 65 درجة مئوية لمدة 5 دقائق وعلى 95 درجة مئوية لمدة 35 دقيقة.
  6. تطوير رقاقة في SU8 المطور لمدة 20-30 دقيقة.

PDMS حل إعداد

  1. مستعدة Polydimethylsiloxane (PDMS) حل عن طريق خلط دقيق 10 أجزاء من المطاط الصناعي السيليكون مع 1 جزء من وكيل علاج لعدة Sylgard القياسية 184.
  2. تتم إزالة فقاعات ولدت في حل PDMS أثناء عملية الخلط باستخدام مجفف فراغ.
  3. هو الاستغناء ببطء فقاعة خالية حل PDMS على وسادة SU8 طبق بيتري فارغة للطبقة ثالثة.
  4. يتم تعيين درجة حرارة لوحة الساخن الى 75 درجة مئوية غير مملح وPDMS وعند هذه الدرجة لمدة 2 ساعة
  5. واللكم مداخل ومنافذ الصرف والآبار خارج باستخدام ثقب الناخس الحجم المناسب.
  6. مستعبدين طبقات معا على شريحة زجاجية (حجم 0.1 ملم) باستخدام جهاز البلازما المحمولة.

باء الإعداد التجريبي

  1. تدفق الايثانول 70 ٪ من خلال الجهاز الصغير لتعقيم. DI تدفق المياه لغسل والايثانول. يروي BSA 50 مل من 0.5 ٪ من خلال جهاز لمنع امتصاص الأنسولين غير محددة على الجدران متناهية.
  2. التدرج المنحدر الجلوكوز والتدرجات الأخرى ذات الصلة التي تم إنشاؤها بواسطة برنامج LABVIEW الذي يتصل مع المحقنة يتم اختبار المضخات للتأكد من التدرجات مستقرة.
  3. وحضنت 25-30 الفئران الجزر مع Fura-2/AM ميكرومتر 5 (مؤشر الكالسيوم وتحقيقات الجزيئية ، كاليفورنيا) ، و 2.5 ميكرومتر رودامين 123 (Rh123 ، وهو مؤشر إمكانات الميتوكوندريا ، سيغما ، MO) لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية في كريبس ، رينغر العازلة (KRB) التي تحتوي على السكر في 2 ملي
  4. وpipetted بعناية الجزر الفئران في الجهاز perifusion ميكروفلويديك من خلال مدخل الميناء.
  5. شبكة ميكروفلويديك ثم يتم الإعداد من خلال ربط مدخل إلى مضخات الحقن باستخدام أنابيب Tygon وY - موصل ومنفذا لجمع الكسور. الجهاز يجلس على مرحلة التسخين (37 درجة مئوية) على المجهر ويتم تسخين الأنابيب مدخل على موقد للحفاظ على درجة حرارة الغرفة والحل عند 37 درجة مئوية.
  6. مباشرة بعد الإعداد ، وperifused الجزر تحتوي على الفئران مع KRB 2 ملي الجلوكوز لمدة 10 دقيقة ثم منحدر الجلوكوز (2mm و25mM) لمدة 25 دقيقة.
  7. يتم جمع الوقت الفاصل بين الصور وحلل كل ليالي 15 بواسطة برنامج SimplePCI. وتجمع أيضا perifusate كل دقيقة باستخدام جزء من هواة جمع وتحليل افراز الانسولين باستخدام ELISA عدة.

ممثل النتائج

وكانت الجزر perifused الفأر مع الانحدار الخطي للجلوكوز ملي 25/02. كما هو مبين في الشكل 1 ، وأثار تدفق الكالسيوم وإفراز الأنسولين بعد حوالي 13 دقيقة من perifusion الموافق الجلوكوز 6 ملم. وتعتبر التغيرات في إمكانات الميتوكوندريا في وقت سابق كما هو متوقع ، في حوالي 11 دقيقة. هذه البيانات يدل على الاستفادة من استخدام هذه الشبكة لتوصيف ميكروفلويديك جزيرة الفيزيولوجيا.

الكالسيوم والميتوكوندريا والأنسولين البياني. يحلل التغيرات المئوية والتركيز بمرور الوقت.
الشكل 1. الاستجابات الفسيولوجية للجزيرة تحفيز الخلية.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

النظم التقليدية perifusion جزيرة (macroscale والميكروسكيل) بعض القيود المعقدة بما في ذلك الإعداد والتصميم ، والمتطلبات التقنية العالية ، وصعوبة إنشاء المستخدم التدرجات الكيميائية المنصوص عليها في النظام. نظام perifusion ميكروفلويديك الموصوفة هنا يتغلب على هذه القيود مع هندسة بسيطة للتصميم والتصنيع. أكثر أهمية ، ويمكن أن تكون متكاملة مع نهج هذا النظام التصوير مضان التي توفر أداة فريدة لدراسة جزيرة الفيزيولوجيا. تظاهر النظام مع نسبة الإشارة ضوضاء عالية والمكانية والزمانية القرار من ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وأيد هذا العمل من قبل الجمعية الأميركية للجامعيات الزمالة الدولية لAdewola اديولا ، NIH / NCRR (U42RR023245) لخوسيه أوبرهولزر ، ومشروع السكري شيكاغو.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
60 مل محاقنBD Biosciences
Fura-2 صبغة مضانمجسات جزيئية ، Life Technologies
Rhodamine123 صبغة مضانمجسات جزيئية ، تقنيات الحياة
الجلوكوزسيجما ألدريتش
مصل الأبقار ألبومينسيجما ألدريتش
30 " أنابيب سيليكونCole-Parmer1/16 × 1/8in
1.5 مل أنابيب Eppendorfموصلات Fisher Scientific
YCole-Parmer1/16 & # 8221 ؛ & 4 مم
موصلات حقنةCole-Parmerأنثى قابس لور 1/16 & # 8221 ؛
موصلات مستقيمةCole-Parmer1/16 &# 8221 ؛
موصل الكوعCole-Parmer1/16 &# 8221 ؛
هافارد مضخة حقنةهارفارد جهاز
إنترفيوژن
ساخنةPMC
ميزان الحرارةأوميغا الهندسية، Inc.
جامع الكسورجيبسون
بيبيتورفيشر مجهر الإزهار المقلوب العلمي
أوليمبوس كوربوريشنIX71
جهاز مقترنبالشحن QImagingRetiga-SRV ، سريع 1394
لوحة

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Mohammed, J. S., Wang, Y., Harvat, T. A., Oberholzer, J., Eddington, D. T. Microfluidic device for multimodal characterization of pancreatic islets. Lab Chip. 9, 97-106 (2009).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Microfluidic Perifusion DeviceInsulin Secretion AnalysisCalcium Influx ImagingMitochondrial Potential MeasurementGlucose Gradient ProfilesEyelet Immobilization WellsFluorescent Microscopy SetupFraction Collector SystemSyringe Pump ControlPDMS Device Assembly

Related Articles