مقالة منهجية

تلطيخ أحمر النيل من C. ايليجانس: طريقة لتصور قطرات الدهون في الثابتة

أبريل 30, 2023

في هذه المقالة

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المصدر: Escorcia, W., et al. القياس الكمي لوفرة الدهون وتقييم توزيع الدهون في Caenorhabditis elegans بواسطة Nile Red و Oil Red O Staining. J. Vis. Exp. (2018).

يصف هذا الفيديو بروتوكولا لتلطيخ الدهون في الديدان الثابتة الكاملة باستخدام صبغة النيل الأحمر. لعرض الدهون المحايدة على وجه التحديد في قلب قطرات الدهون ، قم بتصوير أطياف الانبعاث الأخضر ل C. ايليجانس الملطخة.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هذا البروتوكول هو مقتطف من Escorcia et al ، القياس الكمي لوفرة الدهون وتقييم توزيع الدهون في Caenorhabditis elegans بواسطة Nile Red and Oil Red O Staining، J. Vis. Exp. (2018).

< p class = "jove_title" >1. تلطيخ الدهون باللون الأحمر النيلي (NR)

  1. تحضير محلول مخزون 5 مجم / مل NR
    1. في زجاجة سعة 500 مل ، أضف 100 مجم من مسحوق NR إلى 200 مل من الأسيتون بنسبة 100٪.
    2. قم بتغطية الزجاجة بورق الألمنيوم لتجنب التعرض للضوء.
    3. قبل الاستخدام ، حرك المحلول لمدة 2 ساعة في الظلام.
    4. للاستخدام طويل الأمد ، قم بتخزين محلول مخزون NR في زجاجة محكمة الغلق دون أي تعرض للضوء. توسيع نطاق حل مخزون NR وفقا لاحتياجات البحث. تأكد من استخدام نفس محلول المخزون عبر تجارب تلطيخ NR للحصول على نتائج تلطيخ وتصوير متسقة.
  2. إعداد حل عمل NR
    1. لكل 1 مل من الأيزوبروبانول 40٪ (حجم / حجم) ، أضف 6 ميكرولتر من محلول مخزون NR.
    2. قم بإعداد 600 ميكرولتر من محلول عمل NR لكل عينة.
      <فئة قوية = "ملاحظة">ملاحظة: اصنع محلول عمل NR جديد قبل تلطيخها مباشرة. اعتمادا على احتياجات محلول مخزون NR ، استخدم إما أنبوبا مخروطيا متدرجا سعة 15 مل أو 50 مل.
  3. تحضير الديدان لتلوين الدهون NR
    1. تنمو الديدان إلى مرحلة L4 المبكرة عند 20 درجة مئوية على وسط نمو الديدان الخيطية (NGM) المصنفة ب OP50 E. coli المتأخر.
    2. اغسل الديدان من اللوحة ب 1 مل من محلول ملحي مخزن بالفوسفات 1x + 0.01٪ محلول Triton X-100 (PBST) وضع تعليق الدودة في أنبوب ميكرو فوج سعة 1.5 مل.
    3. قم بالطرد المركزي للديدان عند 560 × جم لمدة 1 دقيقة.
    4. أضف 100 ميكرولتر من 40٪ أيزوبروبانول إلى حبيبات الدودة واحتضانها في درجة حرارة الغرفة لمدة 3 دقائق.
    5. قم
    6. بالطرد المركزي للديدان عند 560 × جم لمدة 1 دقيقة وقم بإزالة المادة الطافية دون تعطيل حبيبات الدودة.
      <فئة قوية = "ملاحظة">ملاحظة: استخدم كميات أكبر من PBST لغسل الديدان من الألواح إذا كنت تستخدم أطباقا أكبر أو تلطيخ المزيد من الديدان لكل طبق. لا تغسل الديدان في PBST قبل أكثر من 15 دقيقة من تثبيت العينة. قم بإجراء غسلات إضافية إذا لم يتم تنظيف المادة الطافية من البكتيريا. قم بإجراء الحضانة في 40٪ من الأيزوبروبانول باستخدام المغذيات أو الروك. راقب دائما الأنابيب للتأكد من حدوث تحريض العينة الكاملة.
  4. تلطيخ الدهون ب NR
    1. في الظلام ، أضف 600 ميكرولتر من محلول عمل NR لكل عينة. اقلب الأنابيب ثلاث مرات واخلط الديدان بالكامل في محلول NR.
    2. قم بتدوير العينة في الظلام في درجة حرارة الغرفة لمدة 2 ساعة.
    3. بعد الحضانة ، قم بالطرد المركزي للديدان عند 560 × جم لمدة 1 دقيقة وقم بإزالة المادة الطافية.
    4. أضف 600 ميكرولتر من PBST واحتضن العينات في الظلام لمدة 30 دقيقة لإزالة بقعة NR الزائدة.
    5. قم بالطرد المركزي للعينات عند 560 × جم لمدة دقيقة واحدة وقم بإزالة جميع المواد الطافية باستثناء حوالي 50 ميكرولتر.
      <فئة قوية = "ملاحظة">ملاحظة: لا تتطلب حضانة NR تحريض. ترسيب الديدان أمر شائع خلال هذه الخطوة.
  5. تحضير الشرائح للتصوير المجهري
    1. أعد تعليق حبيبات الدودة في المادة الطافية المتبقية.
    2. ضع 5 ميكرولتر من تعليق الدودة على شريحة مجهرية وضع غطاء بعناية لتجنب محاصرة أي فقاعات هواء.
    3. أغلق الغطاء بطلاء الأظافر قبل تصوير الديدان.
    4. قم بإعداد شريحتين فقط في المرة الواحدة. سيضمن ذلك بقاء تصوير NR ثابتا عبر العينات. تقل جودة الصور الملطخة ب NR بعد 6 ساعات. يصعب ملاحظة قطرات الدهون المنفصلة ويزداد مضان الخلفية ، مما يتداخل مع اكتشاف إشارة NR.
  6. تصوير الديدان الملطخة ب NR
    1. قم بتصوير الديدان بتكبير 5X لالتقاط العديد من في كل مجال رؤية.
    2. قم بالتبديل إلى التكبير بمقدار 10X للحصول على تقدير أفضل للديدان الفردية.
    3. استخدم قناة FITC / GFP لتصوير الديدان الملطخة ب NR وجرب أوقات تعرض مختلفة لتحديد الظروف المثلى للقياس الكمي.
    4. احفظ الملفات بتنسيق TIF لتجنب فقدان البيانات بسبب الضغط.
      <فئة قوية = "ملاحظة">ملاحظة: تتراوح أوقات التعرض النموذجية من 100-1000 مللي ثانية. بعد أن يكون وقت التعرض الأمثل ، استخدمه لجميع العينات للحفاظ على تناسق التصوير.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

<حدود الجدول = "0" cellpadding = "0" cellpacing = "0" نمط = "العرض: 579 بكسل ؛" العرض = "580" > قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة الاسم الشركة رقم فهرسي التعليقات Imager.M2m مجهر زايس < نمط TD = "العرض: 118 بكسل ؛ "> n / a المجهر الفلوري < ارتفاع TD = "18" النمط = "الارتفاع: 19 بكسل ؛" >كاميرا ERC5s أكسيوكام غير متاح قادرة على الألوان < td height = "18" نمط = "الارتفاع: 19 بكسل ؛" > MRm الكاميرا أكسيوكام غير متاح القدرة على التألق الأحمر النيلي ثيرمو فيشر N1142 صبغة الدهون < td height = "18" النمط = "الارتفاع: 19 بكسل ؛" > كحول الأيزوبروبيل BDH BDH1133-1 ليرة لبنانية حل مثبت < td height = "18" النمط = "الارتفاع: 19 بكسل ؛" >جهاز الطرد المركزي 5430 إيبندورف 5428000015 الطرد المركزي <ارتفاع TD = "18" النمط = "الارتفاع: 19 بكسل ؛" >أنبوب دوار VWR 10136-084 المدوره

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Fluorescence MicroscopyIsopropanol FixationTriton X 100 PermeabilizationPBST WashingNeutral LipidsLipophilic DyeGreen Emission

مقالات ذات صلة