تمت مراجعة جميع الإجراءات المتعلقة بالحيوانات من قبل اللجنة المؤسسية المحلية لرعاية ومجلس المراجعة البيطرية JoVE.
< p class = "jove_title" >
1. تحضير الرئة لقياس التدفق الخلوي
- في نقطة النهاية التجريبية المرغوبة ، تخدير الفأر عن طريق الحقن تحت الجلد لخليط من الكيتامين (100 مجم / كجم من وزن الجسم) والزيلازين (10 مجم / كجم من وزن الجسم) والقتل الرحيم عن طريق خلع عنق الرحم.
- انقع الذبيحة في 70٪ من الإيثانول وقم بتأمين الماوس على لوحة تشريح باستخدام شريط لاصق.
- قم بعمل شق بطني في خط الوسط واقلب الجلد برفق لكشف عضلات جدار الصدر وأعضاء البطن. ثقب الحجاب الحاجز وقطع الأضلاع بالمقص لفضح التجويف الصدري.
- قم بنقخ الرئتين 3x مع 6-8 مل من PBS المثلج من خلال البطين الأيمن باستخدام إبرة 27 جم بعد قطع فتحة صغيرة في البطين الأيسر للسماح للدم بالمغادرة. يجب تطهير الرئتين من الدم وتتحول إلى اللون الأبيض تماما.
- أخرج الرئتين وافرم الفصوص إلى قطع صغيرة باستخدام المقص. انقل قطع الرئة إلى أنبوب طرد مركزي دقيق سعة 2 مل واحتضانه في 1.5 مل من المخزن المؤقت لهضم الرئة (RPMI ، 5٪ FCS ، 150 U / mL كولاجيناز I ، و 50 U / mL DNase I).
- احتضان قطع الرئة 30-60 دقيقة عند 37 درجة مئوية ومع الاهتزاز المستمر.
- انقل تعليق الخلايا الرئوية من خلال مصفاة خلية 70 ميكرومتر إلى أنبوب سعة 50 مل. امسح المصفاة بالجزء الخلفي من حقنة معقمة سعة 10 مل واشطف المصفاة ب 15 مل من PBS مع 2٪ FCS.
- الطرد المركزي للخلايا عند 300 × جم لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية وشفط المادة الطافية. أعد تعليق الخلايا في 1 مل من محلول التحلل الأمونيوم وكلوريد البوتاسيوم (ACK) واحتضانها لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة لتحلل كريات الدم الحمراء المتبقية.
قم - بالطرد المركزي للخلايا عند 300 × جم لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية وأعد تعليق الخلايا في 1 مل من PBS مع 2٪ FCS واستمر في بروتوكول التلوين المطلوب لقياس التدفق الخلوي
ملاحظه: بدلا من ذلك ، يمكن إعادة تعليق الخلايا في RPMI التي تحتوي على 30٪ FCS و 10٪ DMSO وتجميدها باستخدام حاوية تجميد لتحليلها لاحقا.