مقالة منهجية

أخذ عينات الدم المدارية الرجعية: طريقة لعزل الخلايا أحادية النواة من الجيوب الأنفية المدارية الرجعية للفأر

أبريل 30, 2023

في هذه المقالة

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المصدر: Mopin A. et al. بروتوكول مفصل لتوصيف خط خلية الفئران C1498 ونموذج فأر سرطان الدم المرتبط به. J. Vis. Exp. (2016)

يصف الفيديو طريقة أخذ العينات لجمع الدم المحيطي من الجيوب الأنفية المدارية الرجعية للفأر ومزيد من العزل للخلايا أحادية النواة من الدم مع الطرد المركزي المتدرج الكثافة.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
< ص الفئة = "jove_title" >1. جمع الدم المداري الرجعي

  1. قم بإجراء جمع الدم المداري الرجعي قبل القتل الرحيم مباشرة في ظروف معقمة في غطاء التدفق الصفحي وتحت مصباح التدفئة لمنع انخفاض حرارة الجسم.
  2. للتخدير ، استخدم الكيتامين بمعدل 150 مجم / كجم والزيلازين بمعدل 10 مجم / كجم. تحضير محلول التخدير عن طريق تخفيف 1.5 مل من الكيتامين و 0.5 مل من الزيلازين في 18 مل من محلول PBS.
  3. أدخل أنبوبا شعريا في القناة الإنسية للعين. يرتفع الدم من الجيب الحجاجي إلى الأنبوب الشعري. السيطرة على النزيف عن طريق الضغط برفق على العين باستخدام إسفنجة شاش معقمة.
    ملاحظه: يمكن جمع حجم من 100 إلى 200 ميكرولتر من الدم باستخدام هذه التقنية.
  4. اجمع الدم في أنبوب EDTA ، وقم بتخزين العينة على الجليد قبل عزل الخلايا أحادية النواة.
< p class = "jove_title" >2. عزل خلايا الدم أحادية النواة

  1. انقل عينة الدم (100 إلى 200 ميكرولتر ؛ تم الحصول عليها من الخطوة 1.1) إلى أنبوب طرد مركزي دقيق ، وأضف محلول PBS / 1 mM EDTA حتى يصبح حجم المحلول 500 ميكرولتر. لا تخلط الدم مع محلول الفصل.
  2. الطرد المركزي الأنابيب عند 800 × جم (بدون فرامل) لمدة 20 دقيقة في RT. بعد الطرد المركزي ، اجمع الحلقة الخلوية (الطبقة البيضاء غير الشفافة) باستخدام ماصة. نقل الخلايا إلى أنبوب الطرد المركزي الدقيق.
    ملاحظه: تحتوي الطبقة البيضاء غير الشفافة على الخلايا الليمفاوية وكذلك الخلايا الوحيدة وتظهر بين الطبقة السفلية - المحلول الفاصل - والطبقة العليا.
  3. أضف 1 مل من محلول PBS ، وقم بالطرد المركزي للأنبوب عند 350 × جم لمدة 10 دقائق.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
لم يتم الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة الاسم الشركة رقم فهرسي التعليقات كيتامين 1000 (100 مجم / مل) فيرباك 3.59713ه +12 زيلازين سيداكسيلان (20 مجم / مل) سيفا محلول PBS (تركيز 1x) ثيرموفيشر العلمي 14190 محلول EDTA فائق النقاء 0.5 متر ، درجة الحموضة 8.0 ثيرموفيشر العلمي 15575 [م] حل فصل (Pancoll Mouse) بانبيوتك P04-64100 أنبوب EDTA غرينر بيو ون 454034 ماصة باستور 150 مم (أنبوب شعري) فيشربراند 1154-6963 أنابيب قياس التدفق الخلوي (أزرق) بيكمان كولتر 2523749 أنبوب الطرد المركزي الدقيق (1.5 مل) ثيرموفيشر العلمي 05-408-129 إسفنج شاش معقم أورغو 501580 30 جرام إبرة بيكتون وديكنسون 304000 حقنة 1 مل تيرومو إس إس -01 تي شاندون سيتوسبين 3 جهاز طرد خلوي ثيرموفيشر العلمي

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Mononuclear Cell IsolationDensity Gradient CentrifugationFlow Cytometry AnalysisMouse Retro Orbital SinusEDTA AnticoagulationCapillary Blood CollectionPBS WashingFACS Buffer StainingLeukemic Cell Line C1498

مقالات ذات صلة