< p class = "jove_title" >1. هضم أورام البنكرياس
- ضع ورم البنكرياس المفصل أو أورام الموقع النقيلي أو أنسجة البنكرياس السليمة في PBS المثلج ، واحفظه على الثلج.
- استخدم الملقط لنقل الورم إلى طبق بتري.
- أضف 5.0 مل من وسط الهضم (2 مجم / مل كولاجيناز ، 0.025 مجم / مل DNase RPMI) في أنبوب سعة 50 مل ؛ تخزينه على الثلج لمنع بدء نشاط الإنزيم.
ملاحظه: يستخدم هذا البروتوكول الكولاجيناز من النوع الخامس ، والذي يحتوي على نشاط يبلغ ≥1 وحدة / مجم FALGPA و > 125 وحدة هضم كولاجين (CDU) / ملغ صلب. يمكن تخزين الكولاجيناز و DNase عند -20 درجة مئوية وإذابتها على الجليد قبل الاستخدام. عندما يتم إذابة كلاهما تماما في RPMI معقم ، يمكن تمريرهما عبر مرشح 0.2 ميكرومتر لإزالة الملوثات. يجب إذابة الكولاجيناز تماما قبل الترشيح لتجنب فقدان المواد.
- خذ كمية صغيرة من هذا المحلول لتغطية الورم على طبق بتري.
- استخدم مشرطا معقما وملقطا لتقطيع الورم إلى قطع صغيرة يقل طولها عن 3 مم تقريبا.
- اكشط قطع الورم في الأنبوب واقلب الأنبوب برفق حتى تغمر جميع القطع في وسط الهضم. يحفظ على الثلج إذا كانت هناك حاجة إلى تحضير عينات أخرى من الورم دفعة واحدة.
- انقله إلى جهاز الاهتزاز لمدة 20 دقيقة عند 37 درجة مئوية. تأكد من أن جميع قطع الورم مغمورة وليست ملتصقة بحافة الأنبوب. إذا لم يكن الاهتزاز ممكنا ، فقم بتدوير العينة كل 5 دقائق للمساعدة في الهضم.
< p class = "jove_title" >2. تحضير معلق خلية واحدة من الورم المهضوم
- مباشرة بعد خطوة الهضم ، ضع الأنبوب على الجليد لإبطاء نشاط الإنزيم.
- أضف EDTA لتحقيق تركيز نهائي يبلغ 20 ملي مولار وقم بخلط عينة دوامة لفترة وجيزة. سيؤدي ذلك إلى إبطاء نشاط الإنزيم.
- افتح الأنبوب واشطف أي هضم ورم من غطاء الأنبوب بوسط RPMI جديد.
- قم بإعداد مصفاة 70 ميكرومتر (يمكن تغيير حجم المصفاة حسب الرغبة) على أنبوب مفتوح سعة 50 مل ، على الثلج.
- بلل الفلتر مسبقا بمتوسط.
- أعد تعليق الخلايا المهضومة واغسل جوانب الأنبوب باستخدام شريط سعة 25 مل أو أكبر. الفتحة الأوسع للشريط مهمة للسماح للهضم السميك بالمرور بسهولة.
- انقل كل الملخص باستخدام شريط سعة 25 مل إلى المصفاة.
- اهرسي الورم أعلى الفلتر باستخدام مكبس حقنة سعة 1 مل. اهرسها مباشرة لأعلى ولأسفل لتقليل إجهاد القص للخلايا.
- اغسل الخلايا باستمرار من خلال المصفاة باستخدام RPMI. تأكد من الغسيل بقوة كافية لدفع الخلايا من خلالها.
- إذا كانت لا تزال هناك مادة للهرس ، لكن RPMI يتوقف عن التدفق ، فستكون المصفاة مشبعة. لذلك ، انقل العينة إلى مرشح جديد وتابع.
ملاحظه: في النهاية ، ستبقى مكونات المصفوفة خارج الخلية فقط في المرشح ، ويجب أن تكون جميع الخلايا المفردة قد مرت من خلالها.
- جهاز الطرد المركزي للأنبوب لمدة 5 دقائق عند 300 × جم و 4 درجات مئوية.
- أعد تعليق حبيبات الخلية بعناية في RPMI كامل وقم بالمرور مباشرة عبر مرشح آخر لإزالة أي مصفوفة خارج الخلية أو كتل خلايا كبيرة لا يمكن إعادة تعليقها بشكل كاف.
- في هذه المرحلة ، إذا لم تكن هناك حاجة إلى تحفيز ، فقم بتلطيخ الخلايا المعزولة على الفور لتحليل قياس التدفق الخلوي عن طريق تخطي الطرد المركزي للوحة لمدة 5 دقائق عند 300 × جم و 4 درجات مئوية. قم بإزالة المادة الطافية عن طريق تحريك اللوحة رأسا على عقب في حركة حادة واحدة. بدلا من ذلك ، قم بتعليقها في وسط التجميد (10٪ DMSO في FBS) وتخزينها عند -80 درجة مئوية متبوعا بتخزين طويل الأجل في النيتروجين السائل.
ملاحظه: يمكن أن تسمح خطوة التجميد بتنقية الخلايا المناعية في وقت لاحق. ومع ذلك ، قد يتطلب القياس الكمي للمجموعات الفرعية للخلايا المناعية تحسينا للتأكد من أن أعداد الخلايا والنمط الظاهري لا يتأثران بعملية التجميد / الذوبان. من الأفضل إجراء تحفيز الخلايا التائية خارج الجسم الحي على عينات الورم الطازجة. في هذه المرحلة ، يمكن تنقية العينة بشكل أكبر عن طريق إزالة الخلايا الميتة القائمة على الخرزة أو فحوصات تخصيب الخلايا المناعية إذا لزم الأمر.
< p class = "jove_title" >3. تحضير الخلايا للتحفيز
خارج الجسم الحي
- عد الخلايا لتحقيق تركيز 2 × 106/100 ميكرولتر في وسط كامل (RPMI 10٪ FBS ، 1X بنسلين و 1X ستربتومايسين).
ملاحظه: يضمن العدد الكبير من إجمالي الخلايا المطلية أنه سيكون هناك خلايا تائية كافية داخل هذه العينة لتحليلها. ومع ذلك ، يمكن زيادة الرقم أو تقليله اعتمادا على توافر العينة والطبيعة النادرة للمجموعات الفرعية للخلايا التائية ذات الأهمية.
- صفيحة 100 ميكرولتر من الخلايا في صفيحة 96 بئر ذات قاع U.
- أضف 100 ميكرولتر من الوسط الكامل الذي يحتوي على 2x تحضير من PMA / الأيونوميسين (لتحقيق تركيز نهائي 0.081 ميكرومتر و 1.34 ميكرومتر ، على التوالي ، على النحو الموصى به من قبل الشركة المصنعة).
ملاحظه: في حالة قياس التحلل / إفراز الخلايا ، قم أيضا بتضمين CD107a المترافق بالفلورسنت المضاد للفأر في الوسائط. يجب أيضا إجراء عينة تحكم لا تحتوي على CD107a.
- ضعها في حاضنة 37 درجة مئوية مع 5٪ ثاني أكسيد الكربون2 لمدة 1 ساعة.
- أضف 20 ميكرولتر من 10x مستحضر من brefeldin A و monensin (لتحقيق تركيز نهائي 1.06 ميكرومتر و 2.0 ميكرومتر ، على التوالي (على النحو الموصى به من قبل الشركة المصنعة) في وسائط كاملة.
ملاحظه: Brefeldin A و monensin هي مثبطات لنقل البروتين وبالتالي تمنع إطلاق السيتوكينات خارج الخلية ، وما إلى ذلك مما يسمح باكتشافها عن طريق قياس التدفق الخلوي. إذا كان قياس إطلاق السيتوكين في المادة الطافية بواسطة ELISA أو طرق مماثلة - فيمكن تخطي هذه الخطوة.
- ضع اللوحة في حاضنة 37 درجة مئوية مع 5٪ ثاني أكسيد الكربون2 لمدة 4 ساعات أخرى.