$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. السلالات البكتيرية وبروتوكولات الاستزراع مستعمرات
- البكتيريا على ألواح أجار مكملة بوسائط النمو المناسبة. في هذا التقرير ، يتم استزراع Bacillus subtilis (سلالة 1A1135 ، مركز المخزون الجيني Bacillus) على ATGN (0.079 M KH2PO4 ، 0.015 M (NH4) 2SO4 ، 0.6 mM MgSO4 ·7H2O ، 0.06 mM CaCl2 · 2 H2O ، 0.0071 mM MnSO4 · H2O ، 0.125 م FeSO4 · 7 H2O ، 28 ملي مولار جلوكوز ، درجة الحموضة: 7 ± 0.2 ، 15 جم / لتر أجار) ألواح أجار مكملة ب 100 ميكروغرام / مل سبيكتينومايسين والإشريكية القولونية (سلالة 25922 ، ATCC) على ألواح أجار ATGN مكملة ب 100 ميكروغرام / مل أمبيسلين.
ملاحظة: التقارير السابقة عن تغليف الهيدروجيل وإطلاقه باستخدام هذه المواد بدلا من ذلك تستخدم خلايا A. tumefaciens C58 - اختر المستعمرات المرغوبة من ألواح أجار ATGN وابدأ المزارع بين عشية وضحاها. بالنسبة للإشريكية القولونية و B. subtilis السلالات المستخدمة هنا ، يتم الاستزراع عند 37 درجة مئوية أثناء الاهتزاز عند 215 دورة في الدقيقة في وسط سائل ATGN لمدة 24 ساعة. قم بتخزين مزارع الخلايا في 50٪ جلسرين عند -80 درجة مئوية حتى الاستخدام المستقبلي.
- اختر مستعمرات كلتا السلالتين من مخزون الجلسرين باستخدام حلقات تلقيح معقمة واحتضانها في وسائط سائلة ATGN لمدة 24 ساعة عند 37 درجة مئوية و 215 دورة في الدقيقة.
2. تحضير المواد اللازمة لتكوين هيدروجيل
- تخليق بولي (إيثيلين جلايكول) -o-nitrobenzyl diacrylate (PEG-o-NB-diacrylate) القابل للتحلل الضوئي
ملاحظة: تم وصف التوليف الداخلي ل PEG-o-NB-diacrylate جيدا وتم الإبلاغ عنه مسبقا. بدلا من ذلك ، نظرا لأن التوليف روتيني ، يمكن الاستعانة بمصادر خارجية من منشأة التخليق الكيميائي. - مخزن مؤقت متشابك
- خذ وصفة الوسط المحدد للسلالة البكتيرية وقم بإعداد الوسائط بالعناصر الغذائية 2x. أضف الفوسفات ، على سبيل المثال ، NaH2PO4 ، إلى التركيز النهائي المتوسط إلى 100 مليمتر. ثم اضبط قيمة الأس الهيدروجيني إلى 8 باستخدام 5 M هيدروكسيد الصوديوم (aq).
قم - بتعقيم المحلول العازل وتخزينه عند -20 درجة مئوية حتى الاستخدام الآخر.
ملاحظة: اترك أي معادن انتقالية موجودة في الوسائط ، لأن هذه المعادن تحفز أكسدة الثيول إلى ثاني كبريتيد.
- محلول PEG-o-NB diacrylate
- لكل ملغ من مسحوق aliquot PEG-o-NB-diacrylate (الوزن الجزيئي 3،400 Da) ، أضف 3.08 ميكرولتر من الماء عالي النقاء للوصول إلى تركيز 49 ملي مولار من PEG-o-NB-diacrylate (تركيز 98 ملي مولار).
قم - بتدوير المحلول حتى يمتزج جيدا وقم بتخزين هذا المحلول عند -20 درجة مئوية حتى الاستخدام الآخر.
- محلول PEG-thiol ذو 4 أذرع
- لتحضير PEG-thiol رباعي الأذرع (10,000 Da الوزن الجزيئي) ، أضف 4 ميكرولتر من الماء عالي النقاء لكل مسحوق ملغ للوصول إلى تركيز 20 ملي مولار (80 ملي مولار من تركيز الثيول).
- قم بتدوير هذا المحلول حتى يتم خلطه جيدا وقم بتخزين هذا المحلول عند -20 درجة مئوية حتى الاستخدام الآخر.
5. تصنيع مصفوفات السيليكون ميكروويل طلاء
- الباريلين: استخدم البروتوكول القياسي الموصوف في المقالات البحثية السابقة لطلاء رقائق السيليكون بالباريلين.
- التصنيع المجهر: اتبع البروتوكول الموضح في الأدبيات لتصميم وتصنيع مصفوفة microwell (الشكل 1).
ملاحظة: تم تطبيق تقنيات الطباعة الحجرية الضوئية القياسية لتصنيع مصفوفات الميكروويات على رقائق السيليكون المطلية بالباريلين.
7. تكوين الهيدروجيل على مصفوفات الميكروويل
- بذر البكتيريا في مصفوفات microwell
ملاحظة: 700 ميكرولتر من 0.1 OD600 (كثافة بصرية بطول موجي 600 نانومتر) تم زرع معلقات الخلايا فوق ركائز مصفوفة microwell ، وتم تطبيق طريقة رفع الباريلين لإزالة الخلايا من الخلفية. - قم بإعداد محلول سلائف الهيدروجيل عن طريق إضافة 5.6 ميكرولتر من PEG-o-NB-diacrylate مع 12.5 ميكرولتر من محلول ملحي مخزن بالفوسفات 8 وخلطه مع 6.9 ميكرولتر من محلول PEG thiol رباعي الأذرع.
- ماصة 12.5 ميكرولتر من محلول السليفة على شريحة زجاجية مشبعة بالفلور غير متفاعلة ووضع فواصل فولاذية 38 ميكرومتر (انظر جدول المواد) على جانبين متقابلين من ركيزة مصفوفة الآبار الدقيقة الملقحة بالخلايا.
- اقلب الشريحة الزجاجية المشبعة بالفلور مع قطرة محلول السليفة وضع القطرة في منتصف ركيزة الميكروويل. ثم احتضن لمدة 25 دقيقة في درجة حرارة الغرفة (RT) لتكوين هيدروجيل.
- قم بإزالة الشريحة الزجاجية برفق من ركيزة microwell. يجب أن يظل غشاء الهيدروجيل متصلا بركيزة الميكروويل.