مقالة منهجية

التهجين الفلوري في الموقع لبكتيريا الأمعاء في مقاطع أمعاء الفئران

يناير 30, 2026

في هذه المقالة

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المصدر: نغ، ك. م.، تروبيني، سي. تصور تفاعلات ميكروبيوم الأمعاء مع المضيف عبر التهجين الفلوري في الموقع ، تلوين الليكتين، والتصوير. J. Vis. Exp. (2021).

يوضح هذا الفيديو عملية التهجين بالفلورة في الموقع (FISH) لتلوين ميكروبيوتا الأمعاء داخل أنسجة أمعاء الفئران عن طريق تهجين المجسات الفلورية مع حمض الريبونوكلييك البكتيري (rRNA) وصبغ هياكل المضيف للتحليل المجهري.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت مراجعة جميع الإجراءات المتعلقة بعينات والموافقة عليها من قبل لجنة مراجعة أخلاقيات المختصة

  1. التلوين البكتيري باستخدام FISH (التهجين بالفلورة في الموقع)
    1. استخدم حاصر سائل أو قلم PAP (قلم حاجز كاره للماء) للحد من مساحة تمدد السائل عن طريق تدوير منطقة كل جزء من الأنسجة. تأكد من أن الحبر لا يلامس القسم نفسه. أنشئ دائرة قريبة قدر الإمكان من كل جزء من النسيج دون ملامسة النسيج لتقليل مساحة السطح التي تحتاج إلى تغطيتها بمحلول التهجين.
    2. جهز محلول التهجين: لكل 50 ميكرولتر من محلول التهجين المسخن مسبقا، أضف مسبار 0.5 ميكروغرام (مثلا، 0.5 ميكرولتر من 1 ميكروغرام/ميكرولتر). قم بعمل محلول التهجين على الأقسام الموجودة في الشريحة (~20 ميكرولتر/مقطع، حسب حجم المقطع/الدائرة). حماية محلول التهجين والشرائح من الضوء من هذه النقطة فصاعدا أثناء خطوات الحضانة والتخزين.
    3. تأكد من أن حجم السائل المستخدم يغطي القسم بالكامل عند تغطيته بغطاء بلاستيكي مرن. حضن السلايد في غرفة رطبة لتقليل التبخر. أنشئ غرفة رطبة تحتوي على صندوق ماصات مع مناديل أو مناديل ورقية في الأسفل تم نقعها بمحلول هجين زائد أو محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS) لتوفير الرطوبة. حضن الأقسام عند 45-50 درجة مئوية، حسب مجموعة المجسات، لمدة >3 ساعات.
    4. تسخين مخزن الغسيل FISH: 20 مللي مول Tris-HCl، درجة حموضة 7.4؛ من 0.9 متر NaCl إلى 50 درجة مئوية خلال فترة الحضانة. جهز كمية كافية من حاجز الغسيل لتغطية الشرائح في جرة كوبلن.
    5. أزيل أغطية البلاستيك؛ حضن الشرائح في مخزن غسيل FISH داخل جرة كوبلين، كلاهما مسخن مسبقا إلى 50°C. ضع جرة Coplin مرة أخرى في فرن 50°C لمدة 10-20 دقيقة. للحصول على عينات سميكة، أزل الغطاء من علبة كوبلين بإضافة الطبقة الحازمة وإزالة الغطاء بلطف لتجنب تلطيخ الشريحة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
جرة كوبلينفيشر08-813E 
زجاج الغطاء، 22 × 22 مم، لا #1VWRCA48366-227-1 
DAPIسيغما-ألدرتشD9542تم تعليق القرص إلى 5 ملغ/مل
صندوق نصيحة الماصة الفارغ  لإذابة البرافين
مجسات FISH   
حل التهجين FISH----درجة حموضة ثلاثية إلى HCl 20 مللي ميل 7.4، 0.9 مل مل، حمض الكربون الطبيعي، 0.01٪ (بدون النفط) SDS في المياه الخالية من النوكليز. إضافة اختيارية من 5–50٪ فوراميد (v/v)
مخزن غسل الأسماك----20 مللي مولار تريس–HCl pH 7.4، 0.9 M NaCl
ليكتين Ulex Europaeus Agglutinin (UEA-1) الموسوم بالفلوريةمختبرات فيكتورFL-1061 (موسوم بالفلورسين) أو RL-1062-2 (موسوم بالرودامين)يضع UEA-1 علامات على الجليكانات المفرطة، لذا فهو غير مناسب للفئران الخالية من الجراثيم أو لعينات من مضيفين يعانون من نقص في فوكوسيلترانسفيراز 2 (FUT2).
الملقط   
غطاء بلاستيكي مرن من HybriSlip، 22 × 22 مم × 0.25 ممسيغما ألدريتشGBL722222لخطوات تهجين FISH، يمكن استبدال أغطية الزجاج
قلم ImmEdge للحاجز الكاره للماء PAPمختبرات فيكتورH-4000 
كيموايبس   
حاويات تخزين العينات متعددة الأغراض، 473 ملفيشر14-955-117Aيمكنك استبداله بوعاء زجاجي أو بولي إيثيلين من اختيارك. الميثاكارن غير متوافق مع البوليسترين أو المعادن.
طلاء الأظافرعلوم المجهر الإلكتروني72180أي طلاء أظافر يجب أن يكون مناسبا
الفرن  النطاق المطلوب: 45-60 درجة مئوية
PBS، محلول ملحي مخزن بالفوسفات (محلول 10x)فيشرBP3991قم بتخفيف العدد إلى 1x للبروتوكول
كلوريد الصوديومفيشرS271 
محلول هيدروكلوريد تريزما، 1M Tris-HCl، درجة حموضة 7.4سيغما-ألدرتشT2663-1L 
الماء، خالي من النوكليازفيشرBP2484100 

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

16S rRNA FISH

مقالات ذات صلة