مقالة منهجية

التصوير اللحظي للعدوى البكتيرية في نموذج الفأر باستخدام التلألؤ الحيوي

يناير 30, 2026

في هذه المقالة

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المصدر: فالنتاين، م. إ.، وآخرون، توليد طفرات حذف الجينات داخل الإطار في سودوموناس aeruginosa واختبار تخفيف الضراوة في نموذج فأر بسيط للعدوى. J. Vis. Exp. (2020)

يوضح هذا الفيديو استخدام نهج تصوير قائم على التلألؤ الحيوي لمراقبة العدوى البكتيرية في نموذج فأر حي. يتيح التصوير المتوهج البيولوجي والأشعة السينية التصوير في الوقت الحقيقي وتحديد مواقع تشريحية للعدوى المنتشرة في جميع أنحاء المضيف.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت مراجعة جميع الإجراءات المتعلقة بنماذج من قبل لجنة رعاية المؤسسية المحلية ومجلس مراجعة الطب البيطري في JoVE.

تصور العدوى بالإضاءة الحيوية

  1. لرؤية تقدم العدوى، يتم إدخال أوبيرون متوهج حيوي كروموسومي (luxCDABE) في سلالات Pseudomonas aeruginosa PGN5 وVE2 التي تم اختبارها. تم تطوير البلازميدات والبروتوكول المستخدم لوضع علامات على هذه السلالات في مختبر شفايزر وقد لا يكون متوافقا مع جميع الأنواع/السلالات البكتيرية. ومن المهم أن تصور العدوى اختياري؛ لذا، لا يكون إدخال هذا الأوبرون جينوميا ضروريا لإجراء دراسة الوفيات.
  2. جهز وتحقق من الإجهادات. بالإضافة إلى ذلك، تحقق من وجود التوهج الحيوي في السلالات الموسومة في كل خطوة تحقق.
  3. بعد تحضير السلالات، حقن في مجموعات من 10 بالسلالات المضيئة الحيوية وفقا للخطوات السابقة.
  4. صور كل 3 ساعات لمدة 24 ساعة باستخدام نظام تصوير قادر على التلألؤ الحيوي.
    1. أولا، جهز المصور عن طريق ضبط معلمات الكاميرا وتسخين المسرح للحيوانات. ثم اضبط تدفق الأكسجين إلى 1.5 لتر في الدقيقة (أو اتبع توصيات الشركة المصنعة).
    2. بعد تثبيت جهاز التصوير والمرحلة، ضع فأرا واحدا في غرفة التخدير مباشرة بعد الحقن وأعط 3.5٪ إيزوفلوران في الحجرة مع تدفقO 2 لمدة حوالي 4 دقائق. قد تختلف طرق التخدير حسب الحجرة و/أو العامل المخدر المستخدم؛ اتبع توصيات الشركة المصنعة. حدد التخدير المناسب من خلال اختبار الانسحاب الانعكاسي.
    3. انقل الفأرة إلى مرحلة تثبيت درجة الحرارة. ضع الفأر على ظهره مع مد ذراعيه ووضع مخروط أنف لإعطاء إيزوفلوران بنسبة 2.5٪ طوال عملية التصوير.
    4. أغلق الباب والتقط صورا مضيئة حيويا وأشعة سينية للفأرة.
    5. عند الانتهاء من التصوير، أعد الفأرة إلى قفصها وراقبها. يجب أن يستعيد الفأر وعيه خلال 3-5 دقائق.
    6. استمر في تصوير الفأرة كل 3 ساعات لمدة 24 ساعة، وفي كل مرة باستخدام فأرة مختلفة من كل مجموعة. لا تعيد تصوير الفأر خلال 24 ساعة بسبب احتمال حدوث آثار جانبية من إعادة التعرض للتخدير. يجب أن يتلقى فأر واحد جرعة واحدة فقط من التخدير كل 24-36 ساعة. نظف منصة التصوير بعد تصوير كل فأرة. قم بإيقاف تشغيل جهاز التصوير بين نقاط زمنية التصوير.
      ملاحظة: التلألؤ البيولوجي سيتلاشى بغض النظر عن السلالة التي يتم حقنها. تختلف شدة وطول عمر التوهج الحيوي حسب عوامل عديدة، منها عدد البكتيريا المحقونة، سلالة الفأر، السلالة البكتيرية، وغيرها.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
حوض أكيو للحمام الجاف الرقميلابنتNC0205808عبر فيشر ساينتيفك
حاضنة مجلس الوزراءVWR1540 
إيزوثيزيا إيزوفلورانهنري شاين لصحة29405 
نظام التصوير داخل الجسم الحي IVIS Lumina XRMS Series IIIبيركنز وإلمرCLS136340 
جهاز الكهروبراتور الميكرونبضيبيوراد1652100 
بريزم 7جراف باد https://www.graphpad.com/scientific-software/prism/
مقياس الطيف الفوتومتري سمارت سبيك بلسبيو-راد170-2525أو الطريقة/البائع المفضل
مرشحات نظام التخدير XAF-8بيركنز وإلمر118999 
نظام تخدير الغاز XGI 8علوم الحياة الكاليبر/زينوجين  

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Bioluminescence ImagingBacterial InfectionMouse ModelX ray ImagingReal time MonitoringInfection SpreadAnesthetized MouseImaging ChamberLuciferase ExpressionInfection Localization

مقالات ذات صلة